乳糖是牛奶的主要成分,是限制牛奶产奶量的关键因素之一,在一定范围内产奶量随着乳糖合成的增加而增加[1-3]。氨基酸(AA)是合成乳蛋白的主要前体物,在影响乳蛋白合成的同时,也对乳糖合成产生影响[4]。赖氨酸(Lys)是乳蛋白合成主要的必需氨基酸(EAA),也是奶牛的限制性氨基酸[5]。因此,深入研究Lys对乳糖合成的影响及机理,对调节乳腺内乳成分的合成和增加产奶量具有重要意义。王丽娜[6]发现以奶牛乳腺上皮细胞(BMECs)为模型,在培养基中添加EAA可同时促进了乳蛋白和乳糖的合成。云伏雨[7]研究表明,在奶牛饲粮中添加适宜水平的Lys可以提高产奶量、乳蛋白率和乳糖率。可见,Lys在一定程度上影响了乳糖的合成,但前人的研究多集中在向奶牛体内灌注Lys及体外培养添加Lys影响乳蛋白合成的方面,对体外添加Lys影响乳糖合成及其机理方面的探索研究甚少,有必要对此进行深入研究。鉴于此,本研究以BMECs为模型,研究不同浓度Lys对乳糖合成相关基因表达的影响,为进一步探讨Lys对BMECs内乳糖合成的影响机理提供理论基础。
1 材料与方法 1.1 主要试剂与仪器试验主要试剂:Ⅱ型胶原酶、DMEM/F12培养基、胰岛素转铁蛋白硒钠、胎牛血清(FBS)、0.25%胰蛋白酶/乙二胺四乙酸(EDTA),购自Gibco公司;赖氨酸(Lys,L8662)、氢化可的松、表皮生长因子、催乳素、琼脂糖,购自Sigma公司;RNAiso PLUS、PrimeScript RT Master Mix和SYBR Premix ExTaqTM Ⅱ,购自TaKaRa公司;牛D乳糖酶联免疫吸附试剂盒(EHJ-90716h),购自厦门慧嘉生物技术有限公司。
试验主要仪器:二氧化碳恒温培养箱(Forma-311,Thermo)、倒置显微镜(Olympuse,日本)、全自动酶标仪(Synergy H4 BioTek,美国)及荧光定量PCR仪(ABI-7500,美国)。
1.2 原代BMECs体外培养与试验设计在内蒙古呼和浩特市北亚清真屠宰场选取3头3~5岁经产的健康泌乳中期的高产荷斯坦奶牛乳腺组织,参考Sheng等[8]的胶原酶消化法获得和培养BMECs,当原代细胞贴壁率达到80%~90%后,用0.25%胰蛋白酶/EDTA对细胞进行纯化和传代。将第3代的BMECs按照试验要求的细胞密度接种于6孔培养板上(5×105个/孔),以含10% FBS的DMEM/F12培养基,在37 ℃、5% CO2条件下培养24 h。采用单因子随机试验设计,当细胞贴壁率达到80%~90%时,换为无血清的DMEM/F12饥饿培养基,继续培养12 h后,将细胞分为6个组,在每组中加入不同浓度的Lys工作液,使反应体系中Lys终浓度分别为0.5(对照)、1.0、2.0、4.0、8.0和16.0 mmol/L,每组6个重复,在37 ℃、5% CO2条件下培养48 h。各组DMEM/F12培养基中亮氨酸、蛋氨酸、甘氨酸、精氨酸、异亮氨酸、苯丙氨酸、苏氨酸、色氨酸和缬氨酸浓度分别为0.45、0.13、0.25、0.70、0.42、0.22、0.45、0.04和0.45 mmol/L,Lys的浓度参考高海娜等[9]和李喜艳[10]的研究结果并通过测定细胞增殖率[RGR(%)=试验组OD490/对照组OD490×100]确定。
1.3 测试指标与方法BMECs内乳糖的含量采用双抗体夹心法测定。将细胞以5×105个/孔的密度接种于6孔培养板上,按试验设计培养结束后,收集细胞培养液,按照牛D乳糖ELISA试剂盒说明书的方法步骤测定细胞培养液中乳糖含量,即根据梯度稀释法用标准品稀释液将1.8 mg/L标准品稀释成1 200、800、400、200和100 μg/L 5个浓度,每个浓度分别在酶标包被板上加2个孔(50 μL/孔),再向待测样品孔中加入40 μL样品稀释液,之后加入10 μL待测样品,用封板膜封板置于37 ℃培养箱温育30 min;温育结束后,弃液体甩干,用洗涤液清洗5次,在每孔中加入50 μL酶标试剂,温育30 min,再洗涤;每孔加入50 μL显色剂A,之后加入50 μL显色剂B,37 ℃避光显色15 min,每孔再加入50 μL终止液,以空白孔调零,用全自动酶标仪测定OD450,根据标准曲线计算样品中乳糖的含量。
BMECs内总RNA按照Trizol法提取。将细胞以5×105个/孔的密度接种于6孔培养板,按试验设计培养结束后,用酶标仪检测RNA的纯度与浓度,OD260/OD280在1.8~2.2范围内表示RNA纯度较好。RNA完整性用2%琼脂糖凝胶电泳检测。将RNA反转录成cDNA采用PrimeScript RT Master Mix试剂盒的方法进行,反转录体系为10 μL。基因表达量采用SYBR Premix Ex TaqTM Ⅱ试剂盒的方法进行测定,反应体系为20 μL。以磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)、β-肌动蛋白(β-actin)和18S核糖体RNA(18S rRNA)为管家基因,对乳糖合成相关基因α-乳清白蛋白(LALBA)、β-1, 4-半乳糖基转移酶-1(β-4GALT1)、葡萄糖转运载体蛋白1 (GLUT1)、已糖激酶Ⅰ(HKⅠ)和已糖激酶Ⅱ(HKⅡ)的相对表达量进行测定,其引物序列见表 1。实时荧光定量PCR的反应程序为:95.0 ℃预变性30 s;95.0 ℃变性5 s,60 ℃退火34 s,72 ℃延伸20 s,进行40个循环反应;95 ℃、5 s,60 ℃、30 s,95 ℃、15 s,51个循环,绘制熔解曲线。实时荧光定量PCR结果用GAPDH、β-actin和18S rRNA这3个管家基因的几何平均值进行分析,基因的相对表达量采用2-△△Ct法计算得出。
所有数据通过Excel 2010进行计算整理,采用SAS 9.0软件的方差分析(ANOVA)程序进行显著性检验,同时用回归统计程序进行一次线性与二次曲线回归分析,P<0.05表示组间的差异或回归关系显著,0.05<P<0.10表示组间的差异或回归关系趋于显著,P>0.10表示组间的差异或回归关系不显著。
2 结果表 2的结果表明,BMECs内乳糖含量随着Lys浓度的增加呈显著的二次曲线升高(P=0.016),回归方程为y=102.481 83+15.765 10x-0.885 87x2 (R2=0.777 0),x为Lys浓度,y为乳糖含量,其中以2.0~16.0 mmol/L组乳糖含量较高,趋于显著高于对照组(0.05<P<0.10),以4.0 mmol/L组最高,之后随着Lys浓度的升高促进效果减弱。随着Lys浓度的增加,GLUT1和HKⅡ基因表达量呈显著的一次线性升高(P=0.002和P=0.018),回归方程为y=0.908 21+0.077 48x(R2=0.936 0),x为Lys浓度,y为GLUT1基因表达量;y=0.741 29+0.052 45x(R2=0.787 9),x为Lys浓度,y为HKⅡ基因表达量;其中GLUT1基因表达量以4.0~16.0 mmol/L组较高,显著高于对照组(P<0.05),HKⅡ基因表达量以8.0~16.0 mmol/L组较高, 显著高于其他组(P<0.05),但1.0~2.0 mmol/L Lys显著抑制了其表达,表现出先降低后升高的变化趋势。随着Lys浓度的增加,HKⅠ基因表达量呈显著的一次线性降低(P=0.031),回归方程为y=1.086 87-0.043 21x(R2=0.727 2),x为Lys浓度,y为HKⅠ基因表达量;其中以2.0 mmol/L组最高,高于对照组,而4.0~16.0 mmol/L组低于对照组,尤以16.0 mmol/L Lys显著抑制其表达(P<0.05);LALBA和β-4GALT1基因表达量均以2.0~8.0 mmol/L组较高(P<0.05),16.0 mmol/L组高于对照组,但差异不显著(P>0.05)。
在体外研究中,乳腺组织不能通过糖异生合成葡萄糖[15],只能从血液吸收获得,因此,添加Lys对BMECs内乳糖合成的影响仅能通过调控作用来完成。本研究发现,添加Lys对乳糖含量的促进效果呈显著的二次曲线升高(回归方程中R2=0.777 0),方差分析结果显示,不同浓度Lys趋于显著地提高乳糖含量,即在适宜浓度范围内,乳糖含量随着Lys浓度的增加而增加,在4.0 mmol/L时促进效果最好,再随着浓度的进一步增加,其促进效果减弱,说明Lys对乳糖合成的促进作用呈显著的剂量依赖关系。
乳腺对葡萄糖的摄取是调控乳产量的限速步骤,GLUT1是葡萄糖转运蛋白,己糖激酶(HKs)是利用葡萄糖的限速酶,可以催化葡萄糖磷酸化生成6-磷酸葡萄糖,HKⅠ和HKⅡ是HKs在乳腺组织中发现的2种基因表达[16],并且HKⅡ的基因表达与葡萄糖摄取密切相关[17]。Fueger等[18]研究发现,HKⅡ基因过表达后促进葡萄糖吸收。本研究结果发现,Lys浓度对GLUT1与HKⅡ基因表达的促进作用呈显著的一次线性升高,8.0~16.0 mmol/L Lys显著促进GLUT1与HKⅡ基因表达,而1.0~2.0 mmol/L Lys抑制HKⅡ基因表达;Lys对HKⅠ基因表达的影响呈显著的一次线性降低,2.0 mmol/L Lys促进其表达,高剂量具有抑制作用,与赵艳丽[19]的研究结果相似,即亮氨酸可促进HKⅠ基因表达,但高剂量抑制其表达;这些结果说明,Lys可能促进葡萄糖摄取和磷酸化。结果也得出,添加Lys可趋于显著增加乳糖含量,但高剂量的促进效果减弱,可能与适宜浓度Lys促进葡萄糖摄取与磷酸化,而高剂量抑制HKⅠ基因表达有关,这进一步解释了Lys对乳糖合成的作用效果呈剂量依赖关系的原因。
乳糖合成酶由β-4GALT1及LALBA组成,LALBA是乳糖合成酶中的调节亚基,调控乳糖合成与分泌;β-4GALT1是催化亚基,只有在LALBA存在的条件下,才能发挥作用,催化UDP-半乳糖与葡糖糖以β-1, 4糖苷键形成乳糖,控制着乳糖合成效率,进而调节乳产量[20]。本研究发现,2.0~8.0 mmol/L Lys显著促进LALBA和β-4GALT1基因表达,而16.0 mmol/L Lys的促进作用减弱,与Lys促进乳糖含量的结果相吻合,因此进一步解释了BMECs内乳糖含量的增加可能与Lys促进LALBA和β-4GALT1基因表达有关。
综上所述,Lys对乳糖含量和GLUT1、HKⅠ和HKⅡ基因表达的促进作用存在剂量依赖关系,并且乳糖含量以2.0~16.0 mmol/L Lys、GLUT1基因表达量以4.0 ~16.0 mmol/L Lys、HKⅡ基因表达量以8.0~16.0 mmol/L Lys、LALBA和β-4GALT1基因表达量以2.0~8.0 mmol/L Lys的促进效果较好,但16.0 mmol/L Lys对LALBA和β-4GALT1基因表达的促进作用减弱,1.0~2.0 mmol/L Lys显著抑制HKⅡ基因表达,4.0~16.0 mmol/L Lys抑制HKⅠ基因表达。因此,Lys浓度为2.0~8.0 mmol/L时,对BMECs内乳糖合成促进效果较好。
4 结论Lys对乳糖含量和GLUT1、HKⅠ和HKⅡ基因表达量的影响呈剂量依赖关系,以浓度为2.0~8.0 mmol/L时促进效果较好,但浓度为16.0 mmol/L时抑制了HKⅠ基因表达,且减弱了对乳糖合成的促进作用。
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