2. 国家水禽产业技术体系营养与饲料功能研究室, 青岛 266109
2. National Waterfowl Industrial Technology System Nutrition and Feed Function Laboratory, Qingdao 266109, China
铜是众多抗氧化酶的组成成分,在免疫过程中发挥着重要的作用,能够稳定细胞的通透性[1-2]。目前,为达到畜禽高速度生长目的,常在饲粮中添加高剂量的铜,导致产品铜沉积量增多,铜利用率低,且过量的铜排放到环境中造成了环境污染。为此,开展微量元素减量化使用技术研究具有重要意义。虽然在饲粮中添加高剂量的铜能够促进动物的生长,提高饲料的利用率[3];但Kumar等[4]研究表明,高剂量的铜能够导致大鼠肝脏、肾脏、大脑结构损伤,肝脏损伤尤为严重。另外缺铜能够导致动物代谢紊乱、贫血、毛发生长异常、生长和生殖障碍、心力衰竭以及肠胃疾病的发生[5]。有研究表明,断奶仔猪饲粮中添加微生物植酸酶能提高铜的生物学效率[6]。Arthington等[7]研究表明,肉牛饲粮中添加100 mg/kg有机铜能显著提高牛肝脏中铜含量。Huang等[8]研究发现,饲粮中添加有机铜能够有效降低铜的排放率。益生菌能够富集二价金属离子锌,能够完成无机锌向有机锌的转化,提高锌的生物有效性[9]。目前,对铜和枯草芽孢杆菌单一添加促进畜禽生长发育技术的研究较多,而枯草芽孢杆菌铜作为一种新型的有机铜源添加剂,其生物学功能研究还处于空白。因此,本试验通过枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠,研究其对先天性缺铜仔鼠生长发育、器官指数、铜沉积量、血清生化和抗氧化指标的影响,旨在科学评价新型添加剂枯草芽孢杆菌铜的生物利用效果,为探索铜减量化使用提供技术支撑。
1 材料与方法 1.1 试验材料和仪器枯草芽孢杆菌铜由国家水禽产业技术体系营养与饲料功能研究室提供,枯草芽孢杆菌活菌数为1.5×109 CFU/g,铜含量为2 906 mg/kg。五水硫酸铜(有效成分含量为98.5%)购自浙江新维普添加剂有限公司。
试验主要仪器:高速离心机、电子分析天平、皮尺、注射器、分光光度计、电感耦合等离子体质谱(ICP-MS)仪。
1.2 试验设计与方法试验选择108只经过自然交配5 d的清洁级SD大鼠,经过7 d适应期饲养后,进行正式试验,试验设6个组,每组18个重复,每个重复1只大鼠,单笼饲养。Ⅰ~Ⅲ组为硫酸铜组,Ⅳ~Ⅵ组为枯草芽孢杆菌铜组。经过妊娠、生仔至哺乳期结束,试验期为35 d。妊娠哺乳干预期大鼠试验分组与处理方法参照表 1进行。适应期大鼠饲喂正常饲粮,铜含量为6.00 mg/kg;正试期饲喂缺铜饲粮,铜含量为0.33 mg/kg。所有饲粮均购于南通特洛菲有限公司,按照AIN-93标准生产[10],基础饲粮组成及营养水平见表 2。
试验期间,大鼠自由摄食、饮水(去离子水),室内温度(22±2) ℃,相对湿度(55±5)%,室内通风良好。每天观察大鼠的精神状态,记录摄食量和饮水量,并且每周称量1次体重。
1.4 动物屠宰方式及取样饲养至35 d后,对大鼠禁食12 h后,测量体重、体长。每组分别抽取12只仔鼠进行取样分析。采取眼球取血,3 000 r/min离心10 min,取血清-80 ℃保存。脊椎脱臼法处死大鼠后,迅速测量体长并分离心脏、肝脏、脾脏、肾脏、肺脏、大脑等器官,置于冷生理盐水中洗净后用滤纸吸干其表面液体进行称重,计算器官指数。
1.5 测定指标及方法 1.5.1 铜沉积量测定将恒重的组织器官用湿法消化法消化处理,过滤定容。具体方法如下:准确称取样品于三角烧瓶中,加入10 mL硝酸、2 mL高氯酸,隔夜消解,并做对照。之后在180 ℃左右将样品消化至透明,加入少量的去离子水,在水中加热蒸发至2 mL左右,然后转移至25 mL的容量瓶中,用去离子水定容,用0.22 μm水系膜过滤后上机检测。
1.5.2 血清生化指标的测定血清中谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、碱性磷酸酶(AKP)和铜蓝蛋白(CP)活性定均采用南京建成生物工程研究所生产的试剂盒进行测定。
1.5.3 血清抗氧化指标的测定血清中铜锌超氧化物歧化酶(CuZn-SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性和丙二醛(MDA)含量均采用南京建成生物工程研究所生产的试剂盒进行测定。
1.6 数据统计分析试验所得数据以重复为单位进行数据处理,采用SPSS 17.0软件中单因素方差分析(one-way ANOVA)中的LSD法进行,均值的多重比较采用Duncan氏法进行。P < 0.05和P < 0.01分别表示显著差异和极显著差异。
2 结果与分析 2.1 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠生长发育的影响由表 3可知,硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,体重、体长、存活率均随着铜添加量的增加呈上升趋势,除Ⅲ组体重显著高于Ⅰ组(P<0.05)外,其他各组体重、体长、存活率差异均不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)之间比较,体重、体长、存活率均随着铜添加量的增加呈上升趋势,除Ⅵ组体重、体长显著高于Ⅳ组(P<0.05)外,其他各组体重、体长、存活率差异均不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)与硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组比硫酸铜组在体重、体长、存活率方面均有增长趋势,但差异不显著(P>0.05)。
以上结果表明,适当铜添加量能够促进仔鼠的体重、体长的生长,提高仔鼠的存活率;当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于缺铜仔鼠的生长发育,提高仔鼠的存活率。
2.2 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠器官指数的影响由表 4可知,硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,各组之间心脏指数、肝脏指数、脾脏指数、肾脏指数、肺脏指数差异均不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)之间比较,各组之间心脏指数、肝脏指数、脾脏指数、肾脏指数、肺脏指数差异均不显著(P>0.05);枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)与硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,当铜添加量相同时,各组之间心脏指数、肝脏指数、脾脏指数、肾脏指数、肺指数差异均不显著(P>0.05)。
以上结果表明,仔鼠各项器官指数不随铜添加量和添加种类的变化而变化。
2.3 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠器官铜沉积量的影响由表 5可知,硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,Ⅱ、Ⅲ组大脑中铜沉积量显著高于Ⅰ组(P<0.05),Ⅲ组肝脏中铜沉积量显著高于Ⅰ组(P<0.05),各组之间肾脏中铜沉积量差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)之间比较,Ⅵ组肝脏中铜沉积量显著高于Ⅳ组(P<0.05),Ⅵ组大脑中铜沉积量显著高于Ⅴ组(P<0.05),各组之间肾脏中铜沉积量差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)与硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组肝脏、肾脏中铜沉积量高于硫酸铜组,但差异不显著(P>0.05);Ⅳ组大脑中铜沉积量显著高于Ⅰ组(P<0.05),其余各组之间差异不显著(P>0.05)。
以上结果表明,适当铜添加量能够改变肝脏、肾脏、大脑中铜沉积量,其沉积量与铜添加量呈正比;枯草芽孢杆菌铜组比硫酸铜组更利于肝脏、肾脏、大脑中铜的沉积。
2.4 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠血清生化指标的影响由表 6可知,硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,Ⅲ组血清CP活性显著高于Ⅱ组(P<0.05),极显著高于Ⅰ组(P<0.01);Ⅲ组血清AKP活性显著高于Ⅱ组(P<0.05),极显著高于Ⅰ组(P<0.01)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)之间比较,Ⅴ、Ⅵ组血清CP活性显著高于Ⅳ组(P<0.05),各组之间血清AKP活性差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)与硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,当铜添加量相同时,Ⅳ、Ⅴ组血清CP活性分别显著高于Ⅰ、Ⅱ组(P<0.05),各组之间血清AKP活性差异不显著(P>0.05)。
以上结果表明,枯草芽孢杆菌铜和硫酸铜添加量对仔鼠血清CP和AKP活性影响显著,且与铜添加量呈正相关;当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组中血清CP、AKP活性均比硫酸铜组高,枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于提升仔鼠血清CP和AKP活性。
由表 7可知,硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,Ⅲ组血清AST、ALT活性极显著高于Ⅰ组(P<0.01),各组之间血清AST/ALT差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)之间比较,Ⅵ组血清ALT活性显著高于Ⅳ组(P<0.05),各组之间血清AST活性、AST/ALT差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)与硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,当铜添加量相同时,Ⅳ组血清ALT活性显著高于Ⅰ组(P<0.05);血清AST活性有升高趋势,但差异不显著(P>0.05);血清AST/ALT有降低趋势,但差异不显著(P>0.05)。
以上结果表明,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组中血清AST和ALT活性均比硫酸铜组有增长趋势,血清AST/ALT有降低趋势,枯草芽孢杆菌铜组比硫酸铜组更有利于提高仔鼠机体抗应激能力。
2.5 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠血清抗氧化指标的影响由表 8可知,硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,Ⅲ组血清GSH-Px活性显著高于Ⅰ、Ⅱ组(P<0.05),Ⅲ组血清CuZn-SOD活性显著高于Ⅰ组(P<0.05),各组之间血清MDA含量差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)之间比较,各组之间血清GSH-Px活性差异不显著(P>0.05),Ⅵ组血清CuZn-SOD活性显著高于Ⅳ组(P<0.05),各组之间血清MDA含量差异不显著(P>0.05)。枯草芽孢杆菌铜组(Ⅳ~Ⅵ组)与硫酸铜组(Ⅰ~Ⅲ组)之间比较,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组血清GSH-Px和CuZn-SOD活性比硫酸铜组有增加的趋势,但差异不显著(P>0.05);血清MDA含量有降低趋势,但差异不显著(P>0.05)。
以上结果表明,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组中血清GSH-Px和CuZn-SOD活性均比硫酸铜组有增长趋势,血清MDA含量有降低趋势,枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于提高仔鼠机体抗氧化能力。
3 讨论 3.1 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠生长发育的影响铜作为动物必需的微量元素,能够促进动物生长[3, 11]及骨骼的发育[12]。动物饲粮中添加适量铜可以预防铜缺乏症的发生,适当添加高剂量的铜对动物生长有显著促进作用[13],提高饲料的利用率[3]。饲粮中添加纳米氧化铜能显著提高肉鸡铜利用率、生长性能[14]。体内缺铜能导致动物贫血、骨骼发育障碍、脱色、毛发生长异常、生长和生殖障碍[5]。本试验结果表明,适宜铜添加量能够促进仔鼠的生长发育,提高仔鼠的存活率;当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于缺铜仔鼠的生长,提高仔鼠的存活率。
3.2 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠及哺乳期SD大鼠对其仔鼠器官铜沉积的影响铜是动物生长发育必需的微量元素,在各组织器官中,以肝脏中的铜含量最高,但过量铜蓄积会导致肝脏严重受损[15-16]。铜源及铜添加量都能比无铜添加时显著增加大鼠血清中铜含量[17]。Megahed等[18]通过在饲粮中不添加铜、正常铜含量、3倍铜含量,结果表明3倍铜含量能够显著增加大鼠血清中铜含量。Ozkul等[19]通过添加15 mg/kg硫酸铜、鞣酸铜处理大鼠28 d后,研究发现,添加铜比不添加铜血清中铜含量显著提高。Engle等[20]饲喂鹿基础饲粮(铜含量10.2 mg/kg)及添加20和40 mg/kg铜的基础饲粮155 d,结果表明,3组鹿肝脏中铜含量分别为63、290和380 mg/kg。饲粮中添加纳米氧化铜能显著提高肉鸡血清和组织中铜含量[14]。本试验结果表明,饲粮添加适量的铜,能够改变肝脏、肾脏、大脑中铜沉积量,其沉积量与铜的添加量呈正相关;枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更利于心脏中铜的沉积。
3.3 枯草芽孢杆菌铜干预妊娠及哺乳期SD大鼠对其仔鼠血清生化指标的影响微量元素铜既参与动物体内造血过程,又是多种酶的组成成分,在AKP和CP中的作用尤为显著[21]。CP是血液中含量最丰富的含铜蛋白,是一种具有抗氧化性、能强有力抑制脂类自身氧化、清除体内自由基的蛋白[22]。赵春雨等[23]研究表明,饲粮中添加300 mg/kg不同来源的铜(硫酸铜、蛋氨酸铜)可显著提高血清CP活性。钱剑等[24]研究表明,在培养液中添加一定量铜,能促进软骨细胞产生AKP,并在培养的8 d内持续增加。本试验结果表明,枯草芽孢杆菌铜和硫酸铜对仔鼠血清CP和AKP活性影响显著,且与铜添加量呈正相关;当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于提升仔鼠血清CP和AKP活性。
血清ALT和AST活性是检测肝功能的重要指标,在正常情况下,血清AST和ALT的活性是相对稳定的,大量试验表明,血清AST和ALT活性是反映肝细胞损伤程度最灵敏指标之一,血清中微量的转氨酶活性即可表征肝功能是否受到损伤[25]。大鼠血清中的AST和ALT活性会随着饲粮铜添加量(150~600 mg/kg)的升高而显著提升[26]。本试验结果表明,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组中的血清AST、ALT活性均比硫酸铜组有增长趋势,血清AST/ALT有降低趋势;表明枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于维护仔鼠肝脏功能,提高机体抗应激能力。另外,研究结果表明,过高铜添加量时血清AST、ALT活性有提高趋势,表明高铜对机体产生了应激;因此,铜添加量在适宜范围才能够发挥最佳作用,过高过低铜添加量对机体都会产生不良影响。
3.4 枯草芽孢杆菌干预妊娠哺乳期SD大鼠对其仔鼠血清抗氧化指标的影响GSH-Px和SOD是抗机体内脂质过氧化的2种重要的酶,可有效地清除并阻止超氧自由基引发的自由基连锁反应,保护细胞膜结构和功能的完整[27]。铜是GSH-Px的辅助因子和调节因子,另外CuZn-SOD通过对氧的氢化作用发挥抗氧化能力[28]。MDA是自由基对不饱和脂肪酸引发的脂质过氧化作用的产物,能与膜蛋白或磷脂的游离氨基交联,使蛋白质变性、DNA损伤、膜的结构破坏,故组织中MDA含量的多少不仅可以间接反映组织中氧自由基生成量,而且同时也可以反映组织生物膜脂质过氧化的程度和组织膜结构受损程[29]。本试验结果表明,当铜添加量相同时,枯草芽孢杆菌铜组中的血清GSH-Px和CuZn-SOD活性均比硫酸铜组有增长趋势,血清MDA含量有降低趋势;表明枯草芽孢杆菌铜比硫酸铜更有利于提高仔鼠机体抗氧化能力。
4 结论适量枯草芽孢杆菌铜和硫酸铜均能够通过对妊娠哺乳期大鼠干预影响仔鼠,促进仔鼠生长发育,提高血清代谢酶活性及机体抗应激和抗氧化能力。枯草芽孢杆菌铜作用效果优于硫酸铜。
[1] |
GAETKE L M, CHOW C K. Copper toxicity, oxidative stress, and antioxidant nutrients[J]. Toxicology, 2003, 189(1/2): 147-163. |
[2] |
KIM B E, NEVITT T, THIELE D J. Mechanisms for copper acquisition, distribution and regulation[J]. Nature Chemical Biology, 2008, 4(3): 176-185. DOI:10.1038/nchembio.72 |
[3] |
JU C F, YU B, ZHU D, et al. The effect of dietary sulphate copper supplementation on growth performance, intestinal digestive enzymes and absorptive transporters in weanling pigs[J]. Journal of Animal Science and Biotechnology, 2010, 1(1): 35-43. |
[4] |
KUMAR V, KALITA J, BORA H K, et al. Temporal kinetics of organ damage in copper toxicity:a histopathological correlation in rat model[J]. Regulatory Toxicology and Pharmacology, 2016, 81: 372-380. DOI:10.1016/j.yrtph.2016.09.025 |
[5] |
SOETAN K O, OLAIYA C O, OYEWOLE O E. The importance of mineral elements for humans, domestic animals and plants:a review[J]. African Journal of Food Science, 2010, 4(5): 200-222. |
[6] |
LEI X G, KU P K, MILLER E R, et al. Supplemental microbial phytase improves bioavailability of dietary zinc to weanling pigs[J]. The Journal of Nutrition, 1993, 123(6): 1117-1123. |
[7] |
ARTHINGTON J D, PATE F M, SPEARS J W. Effect of copper source and level on performance and copper status of cattle consuming molasses-based supplements[J]. Journal of Animal Science, 2003, 81(6): 1357-1362. DOI:10.2527/2003.8161357x |
[8] |
HUANG Y, YOO J S, KIM H J, et al. The effects of different copper (inorganic and organic) and energy (tallow and glycerol) sources on growth performance, nutrient digestibility, and fecal excretion profiles in growing pigs[J]. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 2010, 23(5): 573-579. DOI:10.5713/ajas.2010.80436 |
[9] |
刘冬, 黄守敏, 毕璋友, 等. 益生菌混合培养富集锌条件优化研究[J]. 安徽农业科学, 2015, 43(20): 259-262. DOI:10.3969/j.issn.0517-6611.2015.20.091 |
[10] |
REEVES P G, NIELSEN F H, FAHEY G C, Jr. AIN-93 purified diets for laboratory rodents:final report of the American Institute of Nutrition ad hoc writing committee on the reformulation of the AIN-76A rodent diet[J]. The Journal of Nutrition, 1993, 123(11): 1939-1951. DOI:10.1093/jn/123.11.1939 |
[11] |
WANG J G, ZHU X Y, GUO Y Z, et al. Influence of dietary copper on serum growth-related hormone levels and growth performance of weanling pigs[J]. Biological Trace Element Research, 2016, 172(1): 134-139. DOI:10.1007/s12011-015-0574-2 |
[12] |
SIERPINSKA T, KONSTANTYNOWICZ J, ORYWAL K, et al. Copper deficit as a potential pathogenic factor of reduced bone mineral density and severe tooth wear[J]. Osteoporosis International, 2014, 25(2): 447-454. DOI:10.1007/s00198-013-2410-x |
[13] |
SMITH M S. Responses of chicks to dietary supplements of copper sulphate[J]. British Poultry Science, 1969, 10(2): 97-108. DOI:10.1080/00071666908415748 |
[14] |
潘娜, 朱风华, 王友令, 等. 日粮添加高水平硫酸锌和纳米氧化铜对鸡脏器组织锌铜沉积的影响[J]. 中国农业科学, 2011, 44(23): 4874-4881. DOI:10.3864/j.issn.0578-1752.2011.23.014 |
[15] |
O'DONOHUE J, REID M A, VARGHESE A, et al. Micronodular cirrhosis and acute liver failure due to chronic copper self-intoxication[J]. European Journal of Gastroenterology & Hepatology, 1993, 5(7): 561-562. |
[16] |
ARAYA M, OLIVARES M, PIZARRO F, et al. Copper exposure and potential biomarkers of copper metabolism[J]. Biometals, 2003, 16(1): 199-204. DOI:10.1023/A:1020723117584 |
[17] |
CHOLEWI ŃSKA E, JU Ś KIEWICZ J, OGNIK K. Comparison of the effect of dietary copper nanoparticles and one copper (Ⅱ) salt on the metabolic and immune status in a rat model[J]. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology, 2018, 48: 111-117. DOI:10.1016/j.jtemb.2018.03.017 |
[18] |
MEGAHED M A, HASSANIN K M A, YOUSSEF I M I, et al. Alterations in plasma lipids, glutathione and homocysteine in relation to dietary copper in rats[J]. Journal of Investigational Biochemistry, 2014, 3(1): 21-25. DOI:10.5455/jib. |
[19] |
OZKUL H, KIRKPINAR F, MERT S, et al. Effects of high levels of dietary copper sulfate and copper proteinate on growth performance, retention for copper and zinc of rats[J]. Journal of Animal and Veterinary Advances, 2011, 10(11): 1373-1377. DOI:10.3923/javaa.2011.1373.1377 |
[20] |
ENGLE T E, SPEARS J W. Effects of dietary copper concentration and source on performance and copper status of growing and finishing steers[J]. Journal of Animal Science, 2000, 78(9): 2446-2451. DOI:10.2527/2000.7892446x |
[21] |
韩丽, 孔祥峰, 赵越, 等. 枯草芽孢杆菌对围产期母猪繁殖性能和子代生长的影响[J]. 动物营养学报, 2017, 29(12): 4440-4446. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2017.12.024 |
[22] |
霍仕霞, 凯赛尔·阿不都克热木, 彭晓明, 等. 驱白巴布期对缺铜、缺锌大鼠血清中微量元素及免疫球蛋白水平的影响[J]. 中国现代应用药学, 2011, 28(8): 689-694. |
[23] |
赵春雨, 张天芮, 刘博, 等. 日粮铜来源及水平对猪血液生化指标及含铜酶活性的影响[J]. 中国畜牧杂志, 2015, 51(21): 39-44. DOI:10.3969/j.issn.0258-7033.2015.21.009 |
[24] |
钱剑, 刘国文, 王哲, 等. 铜对软骨细胞碱性磷酸酶活性影响的实验观察[J]. 中国兽医杂志, 2005, 41(3): 21-22. DOI:10.3969/j.issn.0529-6005.2005.03.008 |
[25] |
林立, 曾晓立, 张璟. 丙溴磷对家兔肝组织脂质过氧化及肝功能的影响(英文)[J]. 中国临床康复, 2004, 8(21): 4380-4381. DOI:10.3321/j.issn:1673-8225.2004.21.058 |
[26] |
张娇娇, 朱风华, 陈甫, 等. 纳米氧化铜对鸡肝细胞CP mRNA表达及培养基质中肝酶活性的影响[J]. 中国兽医学报, 2012, 32(9): 1357-1361. |
[27] |
张寿, 莫重辉, 常兰, 等. 狼毒草对小白鼠组织中的超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶、丙二醛的影响[J]. 黑龙江畜牧兽医, 2014(9): 105-107. |
[28] |
HARRIS E D. Menkes' disease:perspective and update on a fatal copper disorder[J]. Nutrition Reviews, 1993, 51(8): 235-238. |
[29] |
REZAIE A, PARKER R D, ABDOLLAHI M. Oxidative stress and pathogenesis of inflammatory bowel disease:an epiphenomenon or the cause?[J]. Digestive Diseases and Sciences, 2007, 52(9): 2015-2021. DOI:10.1007/s10620-006-9622-2 |