近年来，随着水产养殖业的快速发展，我国养殖鲆鲽类产量不断增加，目前已居世界首位，年产量可达10万t左右[1]。大菱鲆(Scophthalmu smaximus)是鲆鲽类养殖的主要品种之一，但其养殖成本较高是困扰养殖户的一个难题，在集约化养殖中大菱鲆的饲料成本占总养殖成本的60%~80%[2]，这是制约大菱鲆养殖业进一步发展的瓶颈。大菱鲆配合饲料中主要的蛋白质源是鱼粉，鱼粉作为优质的饲料蛋白质源，其需求量也越来越大，价格也越来越高[3]。为降低养殖成本，有必要寻找替代鱼粉的蛋白质源。
羽毛粉和血粉成本较低，粗蛋白质含量较高，可以作为饲料蛋白质源。姚清华等[4]试验证明，在瓦氏黄颡鱼饲料中添加部分羽毛粉肽能提高其生长性能和摄食效果，但由于羽毛粉中存在角蛋白和硬质蛋白等消化吸收率低的蛋白质，影响了蛋白质的消化吸收率和氨基酸平衡性。因此，羽毛粉肽在水产行业的应用存在制约性。但有试验表明，用酶解后的大豆蛋白作为载体，利用生物酶技术将羽毛粉和血粉分解为单个氨基酸小肽和多肽制成的家禽副产物酶解肽(peptides hydrolyzed from poultry by-products, PHFP)可以有效提高其消化吸收率[5]。相关研究表明，小肽具有促进机体生长[6-7]、提高机体消化酶活性和增强抗氧化能力的功效[8]，且因其无毒副作用、无耐药性、无残留和价格低廉等特性而被广泛应用于畜牧及水产动物的饲料中[9]。鉴于此，试验以大菱鲆为研究对象，用家禽副产物酶解肽部分替代饲料中的鱼粉，研究其对大菱鲆生长性能、消化指标、特异性免疫指标和肠道组织形态的影响，以期为家禽副产物酶解肽在大菱鲆配合饲料中的应用提供参考。
1 材料与方法 1.1 试验饲料以鱼粉、虾粉、豆粕为蛋白质源，以鱼油、大豆油为脂肪源，配制含50%鱼粉的基础饲料。用家禽副产物酶解肽分别替代基础饲料中0(对照)、8%、16%、24%和32%的鱼粉，配制5种等氮等能的试验饲料，分别记为D0、D8、D16、D24、D32组。试验饲料组成及营养水平见表 1。家禽副产物酶解肽由秦皇岛益尔生物科技有限公司生产(副产物为羽毛粉和血粉)，其中小肽(由2~3个氨基酸残基组成的寡肽称为小肽，分子质量在180~480 u)含量在12%以上，粗蛋白质含量在60%以上，酸溶蛋白含量在30%以上，其分子质量分布见表 2。配制试验饲料时添加三氧化二钇(Y2O3)作为外源指示剂，将各种原料粉碎后过80目筛并按照配方的比例进行混合，其中三氧化二钇采用逐级扩大法均匀混合。将混合后的饲料原料利用膨化机膨化后制作成粒径为1.5 mm的颗粒料，放置在烘箱中60 ℃干燥30 min，再自然风干12 h后，于-20 ℃冰柜中保存备用。
|
表 1 试验饲料组成及营养水平(干物质基础) Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (DM basis) |
|
|
表 2 家禽副产物酶解肽的分子质量分布 Table 2 Molecular weight distribution of PHFP |
试验用大菱鲆来自秦皇岛益尔生物科技有限公司。大菱鲆先在水族箱中暂养2周，投喂商业饲料。试验开始前先将鱼空腹24 h，然后选取体质健壮、大小均匀、体重为(10.32±0.26) g的鱼苗进行饲养试验。
饲养试验在秦皇岛水产经济动物增养殖学重点实验室的室内循环水族箱(60 cm×40 cm×50 cm)中进行，每箱放养30尾鱼。试验用水是经沙石过滤的天然海水，其盐度为29±1。按照投喂的试验饲料将试验鱼分为5组，每组3个重复(箱)。试验期间每天投喂2次(08:00和20:00)，投喂量为鱼体总重的2%~3%。每天投喂饲料2 h后用虹吸法清除粪便[10-11]，每天换水量为箱体的1/3。整个试验过程中24 h增氧，每天测定水温，每2周检测1次水体的pH、氨氮含量。整个试验过程中水体温度为(16.5±1) ℃，溶氧含量为(7.4±0.2) mg/L，氨氮含量为(0.51±0.12) mg/L，pH为8.0~8.4。
1.3 样品采集试验开始4周后开始收集粪便，每次投喂饲料1 h后用吸管吸出新鲜、饱满、成形的粪便，放入-80 ℃冰箱中保存备测。试验结束时，大菱鲆空腹24 h，称取每箱总重，并记录尾数。用丁香酚进行麻醉然后，从每个水族箱中随机取3尾大菱鲆，用纱布吸干表面水分后称重，在105 ℃烘箱中烘至恒重，作为全鱼样品进行指标检测。另从每个水族箱随机取空腹24 h的大菱鲆8尾，用纱布吸干表面水分后称重并记录；随机取4尾大菱鲆采集血液，制备血浆，并取其前肠和中肠放入Davidson’s固定液(由95%乙醇330 mL、甲醛220 mL、冰醋酸115 mL、纯水335 mL组成)，固定24 h后送至秦皇岛海港医院检测血浆生化指标和肠道切片；另抽取其他4尾大菱鲆的血浆，并摘取8尾大菱鲆的肝脏称重并记录，放入-80 ℃冰箱保存，用于检测血浆和肝脏代谢酶活性与抗氧化指标以及血浆特异性免疫指标[12-14]；最后取8尾大菱鲆的背肌，放入-80 ℃冰箱保存备用。
1.4 测定指标及方法鱼体、饲料和粪便中水分含量采用烘箱烘干(105 ℃)失重法测定，粗蛋白质含量采用凯氏定氮法测定，粗脂肪含量采用索氏抽提法(以石油醚为溶剂)测定，粗灰分含量采用马弗炉灰化法(550 ℃，9 h)测定。饲料和粪便中三氧化二钇含量采用SCT 1089—2006《鱼类消化率测定方法》中的酸消化比色法测定。
大菱鲆血浆、肝脏检测指标均采用南京建成生物工程研究所生产的试剂盒测定，按照使用说明进行操作。其中，胰蛋白酶(PRS)活性与补体3(C3)、补体4(C4)采用紫外比色法测定；脂肪酶(LPS)、胃蛋白酶(PPS)活性与氰化高铁血红蛋白(HICN)含量采用比色法测定；谷草转氨酶(GOT)、谷丙转氨酶(GPT)活性采用赖氏法测定；丙二醛(MDA)含量、总抗氧化能力(T-AOC)、过氧化氢酶(CAT)活性采用可见光法测定；超氧化物歧化酶(SOD)活性采用羟胺法测定；葡萄糖(GLU)含量采用3, 5-二硝基水杨酸(DNS)比色法测定；尿素氮(UN)含量采用脲酶法测定；总胆固醇(TCHO)含量采用氧化酶法测定；甘油三酯(TG)含量采用甘油氧化酶法测定。血浆和肝脏中总蛋白(TP)含量采用考马斯亮蓝法测定。
肠道组织结构分析：采用石蜡包埋和苏木精-伊红(HE)染色的方法制作石蜡切片，并在显微镜(80i，Nikon，日本)下观察，拍照。
1.5 计算公式
|
式中：W0为鱼初始体重(g)；Wt为鱼终末体重(g)；t为试验天数(d)；N0为初始鱼尾数；Nt为终末鱼尾数；W为体重；Wh为肝脏重；Wv为内脏团重；L为体长；Sy为饲料中三氧化二钇的含量(%)；Fy为粪便中三氧化二钇的含量(%)；Si为饲料中粗蛋白质或粗脂肪的含量(%)；Fi为粪便中粗蛋白质或粗脂肪的含量(%)。
1.6 数据统计与分析试验数据采用SPSS 19.0分析软件的单因素方差分析(one-way ANOVA)进行统计分析，试验结果用平均值±标准差表示。单因素方差分析差异显著(P＜0.05)时，再采用Duncan氏法进行多重比较分析。
2 结果与分析 2.1 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆生长性能的影响由表 3可知，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，大菱鲆的增重率、肥满度、特定生长率均呈现先升高后降低的趋势，但D8、D16组与D0组均无显著差异(P>0.05)，D32组显著低于D0、D8、D16、D24组(P < 0.05)；试验鱼仅在D32组出现死亡现象，D32组的存活率显著低于D0、D8、D16、D24组(P>0.05)；随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉水平的增加，饲料系数、肝体比和脏体比呈现先降低后升高的趋势，D32组显著低于D0、D8、D16、D24组(P < 0.05)。
|
|
表 3 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆生长性能的影响 Table 3 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on growth performance of turbot |
由表 4可知，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，全鱼粗脂肪含量呈现逐渐降低的趋势，背肌粗脂肪含量先略有升高后逐渐降低，其中D16、D24、D32组全鱼粗脂肪含量显著低于D0、D8组(P < 0.05)，D24、D32组背肌粗脂肪含量显著低于D0、D8、D16组(P < 0.05)；各组全鱼与背肌粗蛋白质、水分、粗灰分含量均无显著差异(P>0.05)。
|
|
表 4 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆体成分的影响 Table 4 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on body composition of turbot |
由表 5可知，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，干物质表观消化率、粗蛋白质表观消化率和粗脂肪表观消化率逐渐降低，D24、D32组显著低于D0、D8、D16组(P < 0.05)，而D0、D8、D16组之间则无显著差异(P>0.05)。
|
|
表 5 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆营养物质表观消化率的影响 Table 5 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on nutrient apparent digestibility of turbot |
由表 6可知，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，肝脏中LPS活性无显著变化(P> 0.05)；D0组肝脏中PPS活性显著高于D8、D16、D24、D32组(P < 0.05)；D0、D8组肝脏中PRS活性显著高于D16、D24、D32组(P < 0.05)。
|
|
表 6 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆肝脏中消化酶活性的影响 Table 6 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on digestive enzyme activities in liver of turbot |
由表 7可知，D0、D8、D16组血浆中GOT、GPT活性显著低于D24、D32组(P < 0.05)；D0、D8组肝脏中GOT活性显著低于D24、D32组(P < 0.05)，肝脏中GPT活性显著低于D16、D24、D32组(P < 0.05)。
|
|
表 7 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆血浆和肝脏中代谢酶活性的影响 Table 7 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on metabolic enzyme activities in plasma and liver of turbot |
由表 8可知，D0、D8、D16组血浆中TP含量显著高于D24、D32组(P < 0.05)；D0、D8组血浆中UN含量显著低于D16、D24、D32组(P < 0.05)；D0、D8组血浆中TG含量显著高于D16、D24、D32组(P < 0.05)；D0、D8、D16、D24组血浆中TCHO含量显著高于D32组(P < 0.05)；D0、D8组血浆中GLU含量显著高于D32组(P < 0.05)。
|
|
表 8 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆血浆生化指标的影响 Table 8 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on plasma biochemical indices of turbot |
由表 9可知，D8组大菱鲆血浆中C3、C4含量显著高于D24、D32组(P < 0.05)；血浆中HICN含量、CAT活性各组之间没有显著差异(P>0.05)。
|
|
表 9 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆血浆特异性免疫指标的影响 Table 9 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on plasma specific immune indices of turbot |
由表 10可见，D8组血浆中SOD活性显著高于D24、D32组(P < 0.05)，但与D0、D16组无显著差异(P>0.05)，肝脏中SOD活性各组之间无显著差异(P>0.05)；随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，大菱鲆肝脏和血浆中T-AOC呈现先升高后降低的趋势，D0、D8组显著高于D16、D24、D32组(P < 0.05)。随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，大菱鲆肝脏和血浆中MDA含量逐渐升高，但D0、D8组之间无显著差异(P < 0.05)。
|
|
表 10 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆肝脏和血浆抗氧化指标的影响 Table 10 Effects of partial replacement of fish meal by PHFP on antioxidant indices in plasma and liver of turbot |
由图 1可以看出，家禽副产物酶解肽替代8%鱼粉时大菱鲆肠道组织皱襞间质宽度较小，皱襞较长，劲膜厚度较厚，肠道组织形态优于对照组；但随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的继续增加，大菱鲆肠道组织皱襞间质宽度逐渐变大且皱襞变短。
|
图 1 各组大菱鲆肠道组织横切面 Fig. 1 Transection of intestinal tissue in different groups (200×) |
本试验是利用家禽副产物酶解肽部分替代(8%、16%、24%、32%)饲料中的鱼粉，结果显示，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例是增加，大菱鲆的增重率、特定生长率、肥满度呈现先升高后降低趋势，饲料系数先降低后升高，并且从数值上看D8组的增重率、特定生长率、肥满度高于D0组，饲料系数低于D0组。这可能是由于本试验所用家禽副产物酶解肽的分子质量小于1 000 u的小肽约占76%，大多数可以被机体直接吸收利用，增加蛋白质的吸收速度，使机体分解蛋白质耗能降低，节约能量用于生长。Yu等[15]、Teshima等[16]、Zambonino等[17]、Erba等[18]都认为饲料中添加小肽对水产动物具有显著的促进生长作用。此外，于辉等[19]研究发现，饲料中添加酪蛋白小肽的试验组幼龄草鱼的相对生长率和饲料利用率比对照组好。Kotzamanis等[20]在饲料中添加10%的商品小肽后欧洲鲈鱼(Diceutrarchus labrax)表现出良好的生长性能，与本试验研究结果一致。由此可知，饲料中添加适量的小肽可以促进大菱鲆的生长，并且能提高饲料的利用率。但是D32组的增重率、特定生长率、存活率显著低于D0组，可能是由于低分子质量的家禽副产物酶解肽会产生过多的氨基酸，使肠道的氨基酸转运系统饱和[21]；也可能是由于替代比例的增加减弱了鱼粉中某些促生长因子的作用。Cahu等[21]研究发现，用小肽替代25%的鱼粉时，促进了海鲈幼鱼的生长，但用小胎替代50%和75%的鱼粉时，对海鲈幼鱼的生长却有抑制作用，与本试验研究结果一致。本试验中，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，大菱鲆的肝体比和脏体比呈现先降低后升高的趋势，可能由于添加过量的家禽副产物酶解肽会增加某些酶的分泌，导致肝脏的代偿性增大；全鱼和背肌的粗脂肪均呈现先升高后降低的趋势，其中D24、D32组显著低于D0组，与于辉等[19]的研究结果相似，可能是由于添加家禽副产物酶解肽阻碍了脂肪的吸收，加快了脂质的代谢[22]，其机理有待进一步研究。
3.2 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆肝脏和血浆中代谢酶活性、肝脏中消化酶活性以及营养物质表观消化率的影响血浆中GPT、GOT活性是判断肝脏损伤程度的重要指标。GPT和GOT主要存在于肝脏中，一般情况下血浆中GPT和GOT的活性很低，如果肝脏内部受损，GPT和GOT因细胞膜通透性发生改变而进入血液，导致大菱鲆血浆中GPT和GOT活性升高，因此血浆中GPT和GOT的活性可反映肝脏的损伤情况[23]。在本试验中，D24、D32组肝脏和血浆中GPT与GOT活性均显著低于D0、D8组，可能是由于小肽具有吸收速度较快、耗能较低、载体不易饱和等吸收特点[24]，使氨基酸吸收速度加快，从而降低大菱鲆肝脏和血浆中GPT与GOT活性。此外，随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加，干物质表观消化率、粗蛋白质表观消化率和粗脂肪表观消化率呈现逐渐下降的趋势，可能是由于家禽副产物酶解肽替代鱼粉会导致饲粮的消化率将低和适口性变差[25-26]。添加家禽副产物酶解肽对肝脏中LPS活性没有显著影响，肝脏中PPS、PRS活性则随着家禽副产物酶解肽替代鱼粉比例的增加先升高后降低，这与在海鲈[17]和南美白对虾[27]上得到的研究结果一致。这可能是由于小肽是肠腔的吸收底物，适量添加可以有效刺激和诱导小肠绒毛膜刷状缘酶活性的升高，加速绒毛生长[28-29]，促进胃肠道等消化功能提前发育，使大菱鲆对营养物质的消化和利用更加充分。
3.3 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆血浆生化指标的影响通过血液中TCHO和TG的含量可以看出动物体内脂肪沉积的情况[30]。本试验中D32组血浆TCHO、TG和GLU的含量显著低于D0组，可能是由于家禽副产物酶解肽加速了脂类的代谢，抑制了GLU的合成[31-32]。Kaushik等[33]研究发现，虹鳟血浆中TCHO含量随大豆浓缩蛋白替代鱼粉比例的增加呈下降趋势，与本试验结果一致。血浆TP含量是机体蛋白质代谢水平的重要参考指标之一，可以用来衡量蛋白质和氨基酸的利用率[34-36]。本试验中血浆TP含量随着家禽副产物酶解肽添加比例的增加呈先升高后降低的趋势，可以看出添加适量家禽副产物酶解肽在一定程度上可以促进血清蛋白质的合成，进而提高机体的免疫力。UN是蛋白质代谢的主要终末产物，UN含量是反映肾功能的重要指标。本试验中，D0、D8组血浆中UN含量显著低于D16、D24、D32组，可能是由于体内GPT活性显著升高加速了氨基酸的代谢，降低了蛋白质的分解，使氮在体内蓄积，从而加速了UN的生成。
3.4 家禽副产物酶解肽部分替代鱼粉对大菱鲆血浆特异性免疫指标及血浆和肝脏抗氧化指标的影响随着家禽副产物酶解肽添加比例的增加，血浆中CAT活性呈现先升高后降低的趋势，可以看出适量添加酶解肽可以增强酶促反应防御系统中CAT的活性，清除体内多余的活性自由基，增强机体的非特异性免疫。D0、D8组血浆中C3、C4含量显著高于D24、D32组，推测家禽副产物酶解肽中的部分小肽可能有助于大菱鲆提高自身的特异性免疫能力来增强机体的防御能力，这与路晶晶等[37]的研究结果一致。
T-AOC是衡量机体抗氧化系统功能的重要指标之一，可以反映机体抵抗应激的能力[38-39]。SOD在机体氧化与抗氧化平衡之间具有重要作用[40]，能有效地清除超氧阴离子自由基，并且保护细胞不受损坏。MDA是脂质过氧化产物，MDA含量可以间接反映出机体细胞受自由基攻击损坏的严重程度，通常与SOD的测定相配合[41-42]，这2个指标相结合可以更加有效、更加准确地体现出机体的抗氧化能力。本试验中血浆中SOD活性和T-AOC先升高后降低，血浆中MDA含量则先降低后升高，可以得出适量的家禽副产物酶解肽可以提高机体的抗氧化酶活性，抗氧化酶活性的升高降低了机体中自由基的含量，也降低了脂质过氧化的受损情况，还加强了机体维持自由基平衡的能力，提高了机体组织的T-AOC，这与前人的研究结果[43]一致。
4 结论在本试验条件下，以生长性能为基础，综合考虑消化、代谢、特异性免疫等指标，家禽副产物酶解肽替代大菱鲆饲料中鱼粉的适宜比例为8%。
| [1] |
李宗升.鸡肉粉、豆粕替代鱼粉对大菱鲆幼鱼生长、消化酶活性及能量收支的影响[D].硕士学位论文.大连: 大连海洋大学, 2016. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10158-1016757944.htm
|
| [2] |
王长梅. 2016年鱼粉市场回顾及2017年展望[J]. 饲料广角, 2017(3): 18-21. DOI:10.3969/j.issn.1002-8358.2017.03.005 |
| [3] |
刘兴旺, 艾庆辉, 麦康森, 等. 大豆浓缩蛋白替代鱼粉对大菱鲆摄食、生长及体组成的影响[J]. 水产学报, 2014, 38(1): 91-98. |
| [4] |
姚清华, 颜孙安, 宋永康, 等. 饲用羽毛肽粉氨基酸营养价值研究[J]. 营养学报, 2012, 34(3): 245-249. |
| [5] |
刘冰许, 李黎, 赵志鹏, 等. 羽毛粉、血粉加工方法综述及展望[J]. 现代畜牧兽医, 2015(7): 55-58. DOI:10.3969/j.issn.1672-9692.2015.07.011 |
| [6] |
胡梦红, 王有基, 熊邦喜. 小肽的吸收机制及其对鱼类的营养生理学效应[J]. 长江大学学报(自然科学版), 2007, 4(1): 39-44. |
| [7] |
王恬, 傅永明, 吕俊龙, 等. 小肽营养素对断奶仔猪生产性能及小肠发育的影响[J]. 畜牧与兽医, 2003, 35(6): 4-8. DOI:10.3969/j.issn.0529-5130.2003.06.002 |
| [8] |
王芳倩, 张文兵, 麦康森, 等. 饲料中添加还原型谷胱甘肽对牙鲆生长和抗氧化能力的影响[J]. 中国海洋大学学报, 2011, 41(4): 51-56. |
| [9] |
XIAO H, TAN B E, WU M M, et al. Effects of composite antimicrobial peptides in weanling piglets challenged with deoxynivalenol:Ⅱ.Intestinal morphology and function[J]. Journal of Animal Science, 2013, 91(10): 4750-4756. DOI:10.2527/jas.2013-6427 |
| [10] |
CHOUBERT G, DE LA NOÜËE J, LUQUET P. Digestibility in fish:improved device for the automatic collection of feces[J]. Aquaculture, 1982, 29(1/2): 185-189. |
| [11] |
CHO C Y, KAUSHIK S J. Nutritional energetics in fish:energy and protein utilization in rainbow trout (Salmo gairdneri)[J]. World Review of Nutrition & Dietetics, 1990, 61: 132-172. |
| [12] |
孙瑞健, 张文兵, 徐玮, 等. 饲料蛋白质水平与投喂频率对大黄鱼生长、体组成及蛋白质代谢的影响[J]. 水生生物学报, 2013, 37(2): 281-289. |
| [13] |
何金星.饥饿复投喂下克氏原螯虾的补偿生长研究[D].硕士学位论文.南京: 南京大学, 2010. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10284-1011126201.htm
|
| [14] |
王爱民.饲料脂肪水平对吉富罗非鱼生长及脂肪代谢调节的研究[D].博士学位论文.南京: 南京农业大学, 2011. http://d.wanfangdata.com.cn/Thesis_Y2038452.aspx
|
| [15] |
YU Y M, JAWA A, PAN W H, et al. Effects of peptides, with emphasis on feeding, pain, and behavior:a 5-year (1999-2003) review of publications in peptides[J]. Peptides, 2004, 25(12): 2257-2289. |
| [16] |
TESHIMA S, KANAZAWA A, KOSHIO S. Recent developments in nutrition and microparticulate diets of larval prawns[J]. The Israeli Journal of Aquaculture-Barnidg, 1993, 45(4): 175-184. |
| [17] |
ZAMBONINO I J L, CAHU C L, PERES A. Partial substitution of di-and tripeptides for native proteins in sea bass diet improves Dicentrarchus labrax larval development[J]. The Journal of Nutrition, 1997, 127(4): 608-614. DOI:10.1093/jn/127.4.608 |
| [18] |
ERBA D, CIAPPELLANO S, TESTOLIN G. Effect of caseinphosphopeptides on inhibition of calcium intestinal absorption due to phosphate[J]. Nutrition Research, 2001, 21(4): 649-656. DOI:10.1016/S0271-5317(01)00280-9 |
| [19] |
于辉, 冯健, 刘栋辉, 等. 酪蛋白小肽对幼龄草鱼生长和饲料利用的影响[J]. 水生生物学报, 2004, 28(5): 526-530. DOI:10.3321/j.issn:1000-3207.2004.05.011 |
| [20] |
KOTZAMANIS Y P, GISBERT E, GATESOUPE F J, et al. Effects of different dietary levels of fish protein hydrolysates on growth, digestive enzymes, gut microbiota, and resistance to Vibrio anguillarum in European sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular & Integrative Physiology, 2007, 147(1): 205-214. |
| [21] |
CAHU C L, INFANTE J L Z, QUAZUGUEL P, et al. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus labrax larvae[J]. Aquaculture, 1999, 171(1/2): 109-119. |
| [22] |
BOZA J J, MOËNNOZ D, VUICHOUD J, et al. Protein hydrolysate vs free amino acid-based diets on the nutritional recovery of the starved rat[J]. European Journal of Nutrition, 2000, 39(6): 237-243. DOI:10.1007/s003940070001 |
| [23] |
LI P, BURR G S, WEN Q, et al. .Dietary sufficiency of sulfur amino acid compounds influences plasma ascorbic acid concentrations and liver peroxidation of juvenile hybrid striped bass (Morone chrysops×M.saxatilis)[J]. Aquaculture, 2009, 287: 414-418. DOI:10.1016/j.aquaculture.2008.11.004 |
| [24] |
WANG J T, LIU Y J, TIAN L X, et al. Effect of dietary lipid level on growth performance, lipid deposition, hepatic lipogenesis in juvenile cobia (Rachycentron canadum)[J]. Aquaculture, 2005, 249(1): 439-447. |
| [25] |
WANG Y, LI K, HAN H, et al. Potential of using a blend of rendered animal protein ingredients to replace fish meal in practical diets for malabar grouper (Epinephelus malabricus)[J]. Aquaculture, 2008, 281(1/2/3/4): 113-117. |
| [26] |
LUO G, XU J, TENG Y, et al. Effects of dietary lipid levels on the growth, digestive enzyme, feed utilization and fatty acid composition of Japanese sea bass (Lateolabrax japonicus L.) reared in freshwater[J]. Aquaculture Research, 2010, 41(2): 210-219. DOI:10.1111/are.2010.41.issue-2 |
| [27] |
许培玉, 周洪琪. 小肽制品对凡纳滨对虾蛋白酶和淀粉酶活力的影响[J]. 上海水产大学学报, 2005, 14(2): 133-137. |
| [28] |
BAMBA T, FUSE K, OBATA H, et al. Effects of small peptides as intraluminal substrates on transport carriers for amino acids and peptides[J]. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition, 2010, 15(1): 33-42. |
| [29] |
EZQUERRA J M, GARCIÍA-CARREÑO F L, CARRILLO O. In vitro digestibility of dietary protein sources for white shrimp (Penaeus vannamei)[J]. Aquaculture, 1998, 163(1/2): 123-136. |
| [30] |
OLSEN R E, HENDERSON R J, RINGO E. The digestion and selective absorption of dietary fatty acids in Arctic charr, Salvelinus alpinus[J]. Aquaculture Nutrition, 2015, 4(1): 13-21. |
| [31] |
DREVON C A. Fatty acids and expression of adipokines[J]. Biochimica et Biophysica Acta:Molecular Basis of Disease, 2005, 1740(2): 287-292. DOI:10.1016/j.bbadis.2004.11.019 |
| [32] |
SIMMONS L, MOCCIA R D, BUREAU D P, et al. Dietary methionine requirement of juvenile Arctic charr Salvelinus alpinus (L.)[J]. Aquaculture Nutrition, 2015, 5(2): 93-100. |
| [33] |
KAUSHIK S J, CRAVEDI J P, LALLES J P, et al. Partial or total replacement of fish meal by soybean protein on growth, protein utilization, potential estrogenic or antigenic effects, cholesterolemia and flesh quality in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss[J]. Aquaculture, 1995, 133(3/4): 257-274. |
| [34] |
ZHOU S, WANG G B, YANG Z B. Effect of plant small peptides on blood biochemical indexes and gut flora of suckling piglets[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2008, 20(1): 40-45. |
| [35] |
钱云霞, 陈惠群, 孙江飞. 饥饿对养殖鲈鱼血液生理生化指标的影响[J]. 中国水产科学, 2002, 9(2): 133-137. DOI:10.3321/j.issn:1005-8737.2002.02.010 |
| [36] |
刘襄河, 叶继丹, 王子甲, 等. 饲料中豆粕替代鱼粉比例对牙鲆生长性能及生化指标的影响[J]. 水产学报, 2010, 34(3): 450-458. |
| [37] |
路晶晶, 郭冉, 夏辉, 等. 家禽副产物酶解肽对凡纳滨对虾生长性能、消化指标和非特异性免疫指标的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(2): 797-806. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.02.046 |
| [38] |
MOURENTE G, TOCHER D R, DIAZ E, et al. Relationships between antioxidants, antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation products during early development in Dentex dentex eggs and larvae[J]. Aquaculture, 1999, 179(1/2/3/4): 309-324. |
| [39] |
冯广朋, 庄平, 章龙珍, 等. 温度对中华鲟幼鱼代谢酶和抗氧化酶活性的影响[J]. 水生生物学报, 2012, 36(1): 137-142. |
| [40] |
郭斌, 梁萌青, 徐后国, 等. 江蓠、浒苔、藻渣和菌渣替代鱼粉对大菱鲆幼鱼生长性能、血清和肝脏生化指标、体组成和肠道组织结构的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(1): 299-312. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.01.036 |
| [41] |
周胜强, 游翠红, 王树启, 等. 饲料中添加浒苔对黄斑蓝子鱼生长性能与生理生化指标的影响[J]. 中国水产科学, 2013, 20(6): 1257-1265. |
| [42] |
JAIN S K, LIM G. Pyridoxine and pyridoxamine inhibits superoxide radicals and prevents lipid peroxidation, protein glycosylation, and (Na++K+)-ATPase activity reduction in high glucose-treated human erythrocytes[J]. Free Radical Biology and Medicine, 2001, 30(3): 232-237. DOI:10.1016/S0891-5849(00)00462-7 |
| [43] |
刘晓华, 曹俊明, 吴建开, 等. 饲料中添加谷胱甘肽对凡纳滨对虾肝胰腺抗氧化指标和脂质过氧化物含量的影响[J]. 水产学报, 2007, 31(2): 235-240. |