当前,我国肉仔鸡养殖多采用高密度集约化模式,由于鸡群密度大,夏季天气炎热等,肉仔鸡容易发生热应激,热应激往往导致肉仔鸡生长性能下降,甚至大批死亡,给肉仔鸡养殖业造成重大经济损失[1]。热应激发生时,肉仔鸡采食量减少,采食的调节过程涉及众多食欲调控因子。腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)参与调节机体能量平衡,与体内多个调控通路相互作用调控食欲,是当前食欲调控的研究热点。AMPK是一种异缘三聚体酶复合物,由催化亚基α和调节亚基β、γ组成,其中催化亚基α包括α1和α2 2种形式。激活的AMPK可促进食欲,提高采食量和体增重,而AMPK活性受到抑制时则发挥相反的作用[2]。AMPK激活后可以通过下游通路发挥调节作用,除调节相应物质代谢外,对促食欲因子和抑食欲因子也具有一定的调控作用,如AMPK-乙酰辅酶A羧化酶(ACC)-肉碱棕榈酰转移酶(CPT1)通路激活后,除可促进脂肪氧化外,还可以促进促食欲基因神经肽Y(NPY)/刺鼠色蛋白相关蛋白(AgRP)的转录和表达或者抑制抑食欲基因可卡因和安非他明调节转(CART)/阿片黑素细胞皮质激素(POMC)的转录和表达,调控食欲[3]。
因此,本试验以肉仔鸡为试验动物,旨在研究短期热应激对家禽生长性能和下丘脑AMPK信号通路的影响,探究家禽下丘脑中AMPK发挥食欲调控作用的分子机制,为完善家禽食欲调控和能量平衡理论奠定基础,为现代家禽饲养管理提供理论指导。
1 材料与方法 1.1 试验动物试验动物购自泰安大宝有限公司。选用体重相近的1日龄雄性爱拔益加(AA)肉仔鸡,试验期间鸡舍内温度、相对湿度和卫生学指标等均符合肉仔鸡饲养的卫生要求(GB/T 14925—1994),笼养,正常程序免疫,自由采食和饮水,其他措施与常规饲养管理相同。试验饲粮选用泰安六和乐林饲料有限公司肉仔鸡配合饲料,饲粮营养水平均满足NRC(1994)推荐的肉仔鸡营养标准。
1.2 试验设计试验选取72只体重相近的28日龄雄性AA肉仔鸡,随机分为2个组:热应激组和对照组。每组6个重复,每个重复6只鸡,热应激组温度设定为(33±1) ℃,对照组温度设定为(25±1) ℃,试验持续10 h。鸡舍配置空调和加热器作为热源,根据温度计监测鸡舍内温度;利用加湿器控制鸡舍相对湿度,根据湿度计监测鸡舍内相对湿度。温度、相对湿度控制措施与周华金等[4]相同。肉仔鸡28日龄08:00开始试验,试验持续10 h。
1.3 指标测定 1.3.1 生长性能和直肠温度统计试验期间试验鸡生长性能(采食量、体增重),试验期间用温度计测量肉仔鸡直肠温度,每只鸡测量3次,取平均值。
1.3.2 血浆生化指标每重复挑选1只体重接近平均体重的肉仔鸡,采集血浆样品。血浆葡萄糖(GLU)、尿酸(UA)、总胆固醇(TCHO)和甘油三酯(TG)含量利用比色法采用分光光度计进行测定,试剂盒购自南京建成生物工程研究所。
1.3.3 基因表达分析每重复挑选1只体重接近平均体重的肉仔鸡,采集下丘脑样品。下丘脑样品采集后迅速放液氮中,之后放置于-80 ℃冰箱中保存。测定指标包括大麻素1(CB1)、丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶1(AKT1)、AMPKα1、AMPKα2、肝激酶B1(LKB1)、哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)和糖皮质激素受体(GR)的mRNA相对表达量。此外,测定下丘脑AMPK磷酸化水平。
用Trizol法提取下丘脑总RNA,利用琼脂糖凝胶电泳检测RNA完整性。根据TaKaRa的PrimeScript RT reagent Kit Perfect Real Time试剂盒[编号:DRR037A,宝生物工程(大连)有限公司]要求,将总RNA反转录为cDNA。采用20 μL体系进行反转录。反转录条件为:37 ℃ 15 min×3个循环(反转录反应);85 ℃ 5 s(反转录酶的失活反应)。
各基因PCR引物:所有引物均根据TaKaRa的SYBR Premix Ex TaqTM试剂盒[编号:DRR041A,宝生物工程(大连)有限公司]要求,参照GenBank上已发表的序列,采用DNAMAN 5.0设计(跨内含子),引物序列见表 1,由上海生工生物工程公司合成。参照文献[5]的方法,用2-△△Ct法定量目标基因的相对表达量,以β-肌动蛋白(β-actin)作为参照基因进行校准。
数据统计采用SAS 8.0统计软件的t检验进行分析,试验数据用平均值±标准误(mean±SE)表示,P < 0.05表示差异显著。
2 结果 2.1 短期热应激对肉仔鸡生长性能和直肠温度的影响由图 1可知,与对照组相比,热应激组肉仔鸡直肠温度显著提高(P<0.05),热应激组肉仔鸡体增重和采食量显著降低(P<0.05)。
由表 2可知,与对照组相比,热应激组肉仔鸡血浆UA、GLU和TCHO含量均显著提高(P<0.05)。
由表 3可知,与对照组相比,热应激组肉仔鸡下丘脑中LKB1、AKT1、mTOR和CB1的mRNA相对表达量均无显著差异(P>0.05)。
由图 2可知,与对照组相比,热应激组肉仔鸡下丘脑中AMPKα1和GR的mRNA相对表达量显著降低(P<0.05),热应激组肉仔鸡下丘脑中AMPKα2的mRNA相对表达量无显著差异(P>0.05)。
由图 3可知,与对照组相比,热应激组肉仔鸡下丘脑中AMPK磷酸化水平显著降低(P<0.05),肉仔鸡下丘脑中AMPK蛋白水平无显著差异(P>0.05)。
据报道,28日龄左右肉仔鸡适宜环境温度为5~28 ℃,当环境温度超过适宜温度范围上限,肉仔鸡发生热应激[6]。本试验温度控制方法参考本实验室以往研究中热应激模型搭建方法[4, 7],并稍作改动。在肉仔鸡热应激相关研究中,贺绍君等[1]和洪奇华等[8]构建热应激模型时分别设置环境温度为(32±1) ℃和(33±1) ℃,均对28日龄肉仔鸡造成热应激影响,环境温度设置与本试验相近。本试验中,与对照组相比,热应激组肉仔鸡直肠温度显著升高,且热应激组肉仔鸡精神萎靡,食欲减退,采食量和体增重均显著降低,符合热应激肉仔鸡状态,说明热应激模型搭建成功。热应激是家禽饲养过程中常见应激的一种,易引起肉仔鸡热应激综合征,影响下丘脑采食中枢,紊乱机体新陈代谢,从而导致肉仔鸡体温升高,采食量下降,影响肉仔鸡的生长性能[9]。本试验中,短期热应激导致肉仔鸡直肠温度升高,生长性能下降,与钟光等[10]研究结果一致。肉仔鸡发生热应激时,高温一方面对肉仔鸡下丘脑的摄食中枢发生作用,降低其兴奋性;另一方面作用于交感神经导致胃肠道活动减弱,肠道蠕动速度减慢,消化道中食糜排空减慢。此外,肉仔鸡发生热应激时饮水量加大。这些因素均会降低肉仔鸡采食量,影响肉仔鸡的生长性能。
本试验中,热应激组肉仔鸡血浆UA含量显著增高,与钟光等[11]研究结果一致。当机体发生应激时,体内两大系统发生反应:交感-肾上腺髓质系统激活,儿茶酚胺分泌增强;下丘脑-垂体-肾上腺轴(HPA轴)激活,糖皮质激素分泌增强。糖皮质激素促进蛋白质、脂肪分解和肝脏糖原异生等异化过程,调节能量分配应对应激。蛋白质分解产生大量氨基酸用于分解供能,氨基酸生成氨和α-酮酸,α-酮酸可以再转变为氨基酸或者彻底分解为二氧化碳和水,家禽将体内多余的氨合成UA排出体外,导致肉仔鸡血浆UA含量升高。另外,糖皮质激素参与调节肾上腺素和胰高血糖素对糖原的分解和释放,从而影响血浆GLU含量。热应激对肉仔鸡血浆GLU含量的影响较为复杂,在前人的研究中,热应激对肉仔鸡血浆GLU含量的影响结果并不相同,热应激对肉仔鸡血浆GLU含量的影响可能与肉仔鸡的品种、日龄及热应激作用时间长短有关。在周杰等[6]的研究中,热应激使肉仔鸡血浆GLU含量显著下降;在李绍钰[12]等的研究中,热应激作用时间持续1周时可显著提高肉仔鸡血浆GLU含量,而当热应激作用时间延长至2周时,热应激未对肉仔鸡血浆GLU含量产生显著影响;在周华金等[13]的研究中,热应激作用时间持续24和72 h时,均显著提高肉仔鸡血浆GLU含量。本试验中,10 h热应激显著提高了肉仔鸡血浆GLU含量。这提示热应激对肉仔鸡血浆GLU含量的影响可能与作用时间有关,且随着作用时间延长,热应激对肉仔鸡血浆GLU含量的影响逐渐减弱。
热应激会增加肉仔鸡的脂肪沉积,提高肉仔鸡的腹脂率[14],TG是脂肪的主要储存形式,血浆TG含量可一定程度反映脂肪沉积程度。在洪声安[15]的研究中,7 d热应激显著提高了肉仔鸡血浆TG含量,而在本试验中,10 h热应激对肉仔鸡血浆TG含量无显著影响,可能原因是长期热应激可显著影响机体肝脂肪代谢,而短期热应激对肉仔鸡脂肪代谢影响有限[13]。胆固醇参与形成免疫复合物(CIC),在免疫系统中发挥重要作用[16]。胆固醇是合成胆汁酸和肾上腺皮质激素等生理活性物质的重要物质,热应激发生时,糖皮质激素(GC)分泌增加,为满足机体对胆固醇的需要量,周边组织合成和动员胆固醇导致血浆胆固醇含量升高。本试验中,与对照组相比,热应激组肉仔鸡血浆TCHO含量显著升高,与綦松智等[17]研究结果一致。
3.2 短期热应激对肉仔鸡下丘脑中相关分子基因表达和AMPK信号通路的影响LKB1是一种重要的蛋白激酶,可通过促进AMPKα亚基上苏氨酸(Thr)172的磷酸化激活AMPK,提高AMPK磷酸化水平。mTOR是一种典型的丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶(AKT),具有调控食欲的功能[18],mTOR活性受其上游信号通路磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)-AKT-mTOR和LKB1-AMPK-mTOR的调节。PI3K-AKT-mTOR信号通路激活mTOR后,mTOR通过调节下游翻译起始因子4E结合蛋白1(4EBP1)通路和40S核糖体S6蛋白激酶(p70S6K)通路抑制促食欲因子NPY和AgRP表达,促进抑食欲因子POMC表达;LKB1可通过磷酸化AMPK,使AMPK被激活,激活状态的AMPK磷酸化肿瘤抑制因子结节性硬化复合物蛋白2(TSC2),间接抑制mTOR活性或直接磷酸化mTOR的2 446位点上的Thr抑制mTOR活性,促进采食[19]。mTOR通路将能量变化信息作用于下丘脑,下丘脑反馈作用于食物摄取并调节机体能量均衡[20]。此外,mTOR还受到AKT的调节,激活的AKT可以直接磷酸化mTOR。本试验中,肉仔鸡下丘脑LKB1、AKT1和mTOR的mRNA相对表达量均未出现显著变化,可能原因是本试验热应激作用时间短、强度低,具体机理需进一步研究验证。
肉仔鸡发生应激时,HPA轴激活。内源性大麻素信号通路参与调节应激时HPA轴的活动,促进合成和释放GC以应对应激,GR是机体各组织细胞接受GC信息的装置,GC大部分功能的实现依赖于GR介导,GC与GR结合可以提高细胞的代谢率,通过促进糖原分解等提高血浆GLU含量[21-23]。本试验中,与对照组相比,热应激组肉仔鸡下丘脑中CB1的mRNA相对表达量无显著变化,GR的mRNA相对表达量显著降低,有利于GC发挥作用,调节能量分配以应对应激,降低应激对机体的损害。
AMPK参与调节细胞代谢和机体新陈代谢,在维持内环境稳定方面具有重要作用。LKB1活化AMPK后,降低3-羟基-3-甲基戊二酸单酰辅酶A还原酶(HMGR)、乙酰辅酶A羧化酶(ACC)和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)活性,从而抑制胆固醇、脂肪酸和TG的合成,并提高脂肪酸的氧化速度[24];同时促进GLU的吸收,并快速调节6-磷酸果糖激酶活性,促进糖酵解,维持机体内环境稳定[25]。肉仔鸡下丘脑AMPK活性受到抑制时,通过中枢和外周途径同时通过抑制促食欲基因NPY/AgRP表达或者促进抑食欲基因CART/POMC表达抑制食欲,降低肉仔鸡采食量及体增重。本试验中,热应激组肉仔鸡下丘脑AMPKα1相对表达量和AMPK磷酸化水平显著低于对照组,表明短期热应激抑制肉仔鸡下丘脑AMPK活性,与前人研究结果[26-28]一致。AMPK的活性主要取决于其α亚基的Thr172的磷酸化状态,在王霆[29]的研究中,热应激时,HepG2细胞中AMPK磷酸化水平显著降低,与本试验结果相同,其认为热应激通过磷酸酶2A使AMPKα去磷酸化,从而降低AMPK活性。
4 结论短期热应激能显著降低肉仔鸡体增重和采食量,抑制肉仔鸡食欲,显著降低肉仔鸡下丘脑AMPK磷酸化水平,显著降低下丘脑中AMPKα1和GR的mRNA相对表达量,提示AMPK信号通路参与短期热应激抑制肉仔鸡食欲的调控过程。
[1] |
贺绍君, 赵书景, 李静, 等. 甜菜碱对热应激肉鸡生长性能、十二指肠消化酶活性及盲肠微生物区系的影响[J]. 动物营养学报, 2014, 26(12): 3731-3739. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2014.12.024 |
[2] |
MINOKOSHI Y, ALQUIER T, FURUKAWA N, et al. AMP-kinase regulates food intake by responding to hormonal and nutrient signals in the hypothalamus[J]. Nature, 2004, 428(6982): 569-574. |
[3] |
XUE B Z, KAHN B B. AMPK integrates nutrient and hormonal signals to regulate food intake and energy balance through effects in the hypothalamus and peripheral tissues[J]. The Journal of Physiology, 2006, 574(1): 73-83. DOI:10.1113/jphysiol.2006.113217 |
[4] |
周华金, 张辉, 王继光, 等. 急性热应激对肉仔鸡肠道屏障分子、营养转运蛋白和腺苷酸活化蛋白激酶的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(12): 4922-4930. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.12.019 |
[5] |
LIVAK K J, SCHMITTGEN T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-△△CT method[J]. Methods, 2001, 25(4): 402-408. DOI:10.1006/meth.2001.1262 |
[6] |
周杰, 骆先虎, 檀其梅, 等. 高温对肉用仔鸡生产性能和某些血清生化指标的影响[J]. 畜牧与兽医, 1997(2): 57-59. |
[7] |
孙晓蕾.应激对家禽大麻素受体信号的影响研究[D].硕士学位论文.泰安: 山东农业大学, 2015: 13-14. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10434-1015308774.htm
|
[8] |
洪奇华, 宋娟, 胡彩虹, 等. 纤维寡糖和益生菌对热应激肉鸡肠屏障功能的影响[J]. 动物营养学报, 2014, 26(8): 2240-2245. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2014.08.027 |
[9] |
孙红霞, 杨贾林, 王立荣. 热应激对家禽的影响[J]. 家禽科学, 2011(6): 47-50. DOI:10.3969/j.issn.1673-1085.2011.06.017 |
[10] |
钟光, 施寿荣, 邵丹, 等. 持续热应激对黄羽肉鸡生长性能、肉品质和血液指标的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(10): 3923-3929. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.10.016 |
[11] |
钟光, 邵丹, 胡艳, 等. 持续热应激对黄羽肉鸡生长性能、器官指数、血清生化指标和抗氧化功能的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(11): 4425-4432. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.11.019 |
[12] |
李绍钰, 张敏红, 张子仪, 等. 热应激对肉用仔鸡生产性能及生理生化指标的影响[J]. 华北农学报, 2000, 15(3): 140-144. DOI:10.3321/j.issn:1000-7091.2000.03.029 |
[13] |
周华金, 胡希怡, 杨家昶, 等. 热应激对肉仔鸡肝AMPKα1及脂肪代谢相关分子基因表达的影响[J]. 畜牧兽医学报, 2018, 49(1): 102-110. |
[14] |
王启军, 卢庆萍, 张宏福. 高温环境对北京油鸡生产性能及脂肪沉积的影响[J]. 广东饲料, 2006, 15(6): 38-40. DOI:10.3969/j.issn.1005-8613.2006.06.016 |
[15] |
洪声安. 热应激对肉鸡生产性能及脂肪代谢的影响[J]. 中国动物保健, 2011(10): 23-25. DOI:10.3969/j.issn.1008-4754.2011.10.008 |
[16] |
郑菱, 朱竑, 曹鑑梅, 等. 血清循环免疫复合物中胆固醇含量与缺血性心脑血管疾病关系的研究[J]. 中华危重病急救医学, 2001, 13(10): 621-623. DOI:10.3760/j.issn:1003-0603.2001.10.013 |
[17] |
綦松智, 吴登俊, 张中显. mTOR对信号通路调控的研究进展[J]. 中国畜牧杂志, 2010, 46(1): 57-60. |
[18] |
张彩虹, 李文立, 任慧英, 等. 酵母铬对热应激肉鸡生长性能和血清生化指标的影响[J]. 动物营养学报, 2008, 20(6): 668-673. DOI:10.3969/j.issn.1006-267X.2008.06.010 |
[19] |
胡希怡.中枢AMPK在应激肉鸡食欲调控中的作用研究[D].硕士学位论文.泰安: 山东农业大学, 2017: 7-9. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10434-1017101264.htm
|
[20] |
陈洪菊, 屈艺, 母得志. mTOR信号通路的生物学功能[J]. 生命的化学, 2010, 30(4): 555-561. |
[21] |
COVASA M, FORBES J M. Selection of foods by broiler chickens following corticosterone administration[J]. British Poultry Science, 1995, 36(3): 489-501. |
[22] |
赵红波, 盛清凯, 王可. 热应激对肉仔鸡糖皮质激素受体的影响[J]. 山东农业科学, 2011(9): 102-104, 107. DOI:10.3969/j.issn.1001-4942.2011.09.029 |
[23] |
王永琴, 崔淑芳, 黎立王澜, 等. 糖皮质激素受体阻断对雏鸡热应激的影响[J]. 中国兽医杂志, 1997, 28(5): 6-7. |
[24] |
郑萍, 陈代文, 张克英, 等. 热应激对体外仔猪肝细胞AMPK活性及脂质代谢产物的影响[J]. 营养学报, 2007, 29(1): 23-26, 30. |
[25] |
施忠秋, 齐智利. AMPK信号通路在热应激中的调控作用[J]. 中国奶牛, 2013(19): 3-5. DOI:10.3969/j.issn.1004-4264.2013.19.002 |
[26] |
秦玉辉.蛋鸡体内AMPK酶活分布及应激对AMPK酶活影响研究[D].四川农业大学, 2003. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10626-2003094362.htm
|
[27] |
WANG T, YU Q J, CHEN J, et al. PP2A mediated AMPK inhibition promotes HSP70 expression in heat shock response[J]. PLoS One, 2010, 5(10): e13096. DOI:10.1371/journal.pone.0013096 |
[28] |
李培庆, 王选年, 王水琴, 等. 鸡热应激及糖皮质激素受体与热休克蛋白相关性的研究[J]. 河南农业大学学报, 1999, 33(3): 307-310. DOI:10.3969/j.issn.1000-2340.1999.03.027 |
[29] |
王霆.在热休克反应中PP2A介导的对AMPK活性的抑制促进HSP70表达[D].博士学位论文.北京: 中国科学院上海生命科学研究院, 2010. http://med.wanfangdata.com.cn/Paper/Detail?id=DegreePaper_Y2011672
|