动物营养学报    2021, Vol. 33 Issue (7): 3768-3777    PDF    
饲粮添加一水肌酸对宰前运输应激黔东南小香鸡血液指标、肉品质及肌肉糖酵解的影响
张柏林 , 刘宁 , 李家惠 , 王双双 , 郝美林 , 王庆容 , 练凤仙 , 胡建琴     
遵义师范学院生物与农业科技学院, 赤水河流域特色动物资源保护与利用重点实验室, 遵义 523006
摘要: 本试验旨在研究饲粮添加一水肌酸(CMH)对宰前运输应激黔东南小香鸡血液指标、肉品质及肌肉糖酵解的影响。试验选择150日龄、体重相近健康的黔东南小香鸡160羽,随机分成4个组,每组20个重复,每个重复2只。A组和B组饲喂基础饲粮,C组和D组分别在基础饲粮中添加0.06%和0.12%的CMH。试验期为14 d。试验结束当天,A组不做运输应激处理,B组、C组和D组进行3 h宰前运输应激处理。结果表明:1)饲粮添加CMH对黔东南小香鸡平均日增重、平均日采食量及料重比均无显著影响(P>0.05)。2)与A组相比,B组的血清皮质酮含量显著增加(P < 0.05),血清葡萄糖含量显著降低(P < 0.05),胸肌pH24 h、糖原含量显著降低(P < 0.05),胸肌亮度(L*)值、滴水损失、蒸煮损失、乳酸含量及糖酵解潜力显著增加(P < 0.05),胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性显著增加(P < 0.05)。3)与B组相比,D组的血清葡萄糖含量显著增加(P < 0.05),血清皮质酮含量显著降低(P < 0.05),胸肌pH24 h和糖原含量显著增加(P < 0.05),胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性显著降低(P < 0.05),胸肌L*值、滴水损失、蒸煮损失、乳酸含量及糖酵解潜力显著降低(P < 0.05)。综上所述,饲粮添加0.12%的CMH缓解了黔东南小香鸡运输应激,在一定程度上有效抑制了运输应激引起的肌肉糖酵解,对宰前运输应激黔东南小香鸡肌肉品质有一定的改善作用。
关键词: 一水肌酸    运输应激    黔东南小香鸡    肌肉糖酵解    肉品质    
Effects of Dietary Creatine Monohydrate on Blood Indexes, Meat Quality and Muscle Glycolysis of Qiandongnan Xiaoxiang Chickens Subjected to Pre-Slaughter Transportation Stress
ZHANG Bolin , LIU Ning , LI Jiahui , WANG Shuangshuang , HAO Meilin , WANG Qingrong , LIAN Fengxian , HU Jianqin     
Key Laboratory of Conservation and Utilization of Characteristic Animal Resources in Chishui River Basin, Department of Biology and Agriculture, Zunyi Normal university, Zunyi 523006, China
Abstract: The purpose of this experiment was to study the effects of dietary creatine monohydrate (CMH) on blood indexes, meat quality and muscle glycolysis of Qiandongnan Xiaoxiang chickens subjected to pre-slaughter transportation stress. A total of 160 healthy 150-day-old Qiandongnan Xiaoxiang chickens with similar body weight were randomly divided into 4 groups with 20 replicates per group and 2 chickens per replicate. Chickens in group A and group B were fed basal diets, and broilers in group C and group D were fed basal diets supplemented with 0.06% and 0.12% CMH, respectively. The experiment lasted for 14 days. At the end of the experiment, broilers in group A were treated with no transportation stress, and broilers in group B, group C and group D were treated with 3 h pre-slaughter transportation stress. The results showed as follows: 1) dietary CMH had no significant effects on the average daily gain, average daily feed intake and the ratio of feed to gain of Qiandongnan Xiaoxiang chickens (P>0.05). 2) Compared with group A, the serum corticosterone content of group B was significantly increased (P < 0.05), the serum glucose content was significantly decreased (P < 0.05), the breast muscle pH24 h and the glycogen content were significantly decreased (P < 0.05), the lightness (L*) value, drip loss, cooking loss, lactic acid content and glycolysis potential in breast muscle were significantly increased (P < 0.05), and the activities of pyruvate kinase, hexokinase and fructose-2, 6-diphosphate in breast muscle were significantly increased (P < 0.05). 3) Compared with group B, the serum glucose content of group D was significantly increased (P < 0.05), the serum corticosterone content was significantly decreased (P < 0.05), the breast muscle pH24 h and the glycogen content were significantly increased (P < 0.05), the activities of pyruvate kinase, hexokinase and fructose-2, 6-diphosphate in breast muscle were significantly decreased (P < 0.05), and the L* value, drip loss, cooking loss, lactic acid content and glycolysis potential in breast muscle were significantly decreased (P < 0.05). In conclusion, dietary supplemented with 0.12% CMH can alleviate the transportation stress of Qiandongnan Xiaoxiang chickens, effectively inhibit the muscle glycolysis induced by transportation stress, and improve the meat quality of Qiandongnan Xiaoxiang chickens subjected to pre-slaughter transportation stress.
Key words: creatine monohydrate    transportation stress    Qiandongnan Xiaoxiang chickens    muscle glycolysis    meat quality    

黔东南小香鸡主要分布于贵州省黔东南及邻近地区,是经过长期择优繁育而选育出来的兼具地方特色的肉蛋兼用型土鸡,以“小、香、土”著称,具有肉质细嫩、肉味鲜美等优良特性[1]。但随着集约化养殖进程的推进,肉鸡从养殖场到屠宰场的过程不可避免地遭受运输应激。运输应激是指在运输途中的禁食/限饲、环境变化、颠簸、心里压力等应激原的综合作用下,动物机体产生的本能的一系列不适反应。研究表明,在运输应激条件下,动物会表现出呼吸急促、心跳加速、恐惧不安等情况,给肉鸡造成严重的应激[2-4]。Zhang等[5]研究发现,3 h的长途运输可降低爱拔益加(AA)肉鸡血浆葡萄糖含量,提高血浆皮质酮含量,这意味着3 h的长途运输给肉鸡造成了较大的应激。本课题组前期研究同样发现,宰前3 h运输对黔东南小香鸡造成了严重的应激,主要表现为血浆皮质酮含量的增加和葡萄糖含量的下降[6]。并且,运输应激增加了家禽肌肉能量代谢,使细胞中ATP含量下降,从而加快肌肉糖酵解作用产生ATP供能,同时产生大量的乳酸,造成肌肉中乳酸积累,使宰后肌肉pH下降,进而降低肉品质[7-8]。因此,在优质肉鸡生产中如何缓解运输应激并改善肉品质受到越来越多研究者的关注。

研究表明,营养调控是缓解运输应激的一个有效途径。肌酸(creatine,Cr)是动物细胞中重要的能量储存物质,可通过自身合成,也可从外界食物中获取,亦可通过Cr合成产品补充。研究表明,Cr具有增加机体Cr含量,增强能量储备、调控糖代谢、降低乳酸产生及增加肌肉糖原储备等多种生物学功能[9-11]。Cr通过Cr-磷酸肌酸(phosphocreatine,PCr)系统参与机体特别是骨骼肌的能量代谢[12]。研究表明,宰前饲粮添加Cr能够调控机体的能量代谢,增加肌肉组织中Cr和PCr储备,增强Cr代谢池的能量缓冲作用[13]。一水肌酸(creatine monohydrate,CMH)是Cr的一水化合物,是Cr的主要添加形式。研究表明,饲粮添加CMH在一定程度上可以增加肌肉ATP含量,降低肌肉糖原的分解和乳酸生成速率,延缓宰后pH下降及肌肉糖酵解进程,进而改善肉品质[11]。但到目前为止,有关CMH对地方鸡种肉品质的影响尚未可知。因此,本试验拟选用贵州省优良品种——黔东南小香鸡为研究对象,在宰前饲粮中添加一定比例的CMH,研究其对运输应激黔东南小香鸡血液指标、肉品质及肌肉糖酵解的影响,以期为宰前肉鸡营养调控和优质鸡肉生产提供参考。

1 材料与方法 1.1 试验设计和饲养管理

试验选择150日龄体重相近、健康的黔东南小香鸡160只,随机分为4个组(A组、B组、C组、D组),每组20个重复,每个重复2羽。试验设计见表 1。试验期为14 d。整个试验期,鸡只饲养按照常规饲养管理程序进行,自由饮水和采食,基础饲粮组成及营养水平见表 2。肉鸡饲养地点为贵州榕江山农发展有限公司。

表 1 试验设计 Table 1 Experimental design
表 2 基础饲粮组成及营养水平(风干基础) Table 2 Composition and nutrient levels of the basal diet (air-dry basis) 
1.2 试验仪器

PHBF-260型便携式手持pH计(上海仪电科学仪器股份有限公司);UV-5200紫外可见分光光度计(上海元析仪器有限公司);Tecan Infinite 200 PRO多功能酶标仪[帝肯(上海)贸易有限公司];FR224CN型电子天平(澳豪斯仪器有限公司);HH-6型数显恒温水浴锅(常州国华电器有限公司);C-LM3型数显式肌肉嫩度仪(东北农业大学工程学院);YS3010型智能型分光测试仪(深圳市三恩时科技有限公司)。

1.3 测定指标及方法 1.3.1 生长性能测定

试验开始前1天和结束前1天,所有试验鸡只均进行空腹8 h处理,以重复为单位记录其初始体重和终末体重,用以计算平均日增重。试验开始后,每天按早、中、晚3次进行投料,以重复为单位记录每天的投料量及余料量,用以计算平均日采食量和料重比。

1.3.2 血液样品采集

试验结束当天,待运输应激处理后,每组分别选择10只符合群体均重的鸡只进行翅下静脉采血,放入10 mL离心管中,常温倾斜放置,以利于血清的析出。静置4 h后,于4 ℃,3 000 r/min条件下进行离心,收集血清并分装,保存于-20 ℃待测。

1.3.3 血清指标测定

利用试剂盒进行血清皮质酮和葡萄糖含量的测定,操作步骤按试剂盒说明书进行。其中,皮质酮试剂盒购自南京建成生物工程研究所,葡萄糖试剂盒购自上海荣盛生物药业有限公司。

1.3.4 肉品质测定 1.3.4.1 pH

参照Wang等[7]方法进行。鸡只采血完毕,立即宰杀,拔去胸腹部羽毛,并剥去胸肌外侧皮肤,取左侧胸肌肉,于宰后45 min时手持pH计插入胸肌深度1.0 cm处测定pH(记为pH45 min)。然后将测定完的样本保存至4 ℃环境中,待到宰后24 h时再次测定pH(记为pH24 h)。每个样品选不同位置测3次,取其平均值。

1.3.4.2 肉色

参照Yalcin等[14]的方法进行,并稍作修改。利用分光测色仪测定宰后24 h肌肉的亮度(L*)、红度(a*)和黄度(b*)值,每个样品在不同部位测量3次,取其平均值。

1.3.4.3 滴水损失

参照Sun等[15]的方法进行。从每个左侧胸肌中间部位称取10 g左右样品2块(记为m1),切成1 cm×1 cm的肉条,然后用钩子将其挂在密封容器中,使其不接触容器壁,并将其放置在4 ℃环境下保存。24 h后,用滤纸将肉样表面的水分吸干,称其重量(记为m2)。计算公式为:

1.3.4.4 蒸煮损失

参照Yue等[16]的方法进行。称取约20 g的胸肌样本(记为m1)放置于密封袋,在80 ℃水浴锅中加热至中心温度75 ℃,冷却并擦去表面水分称重(记为m2)。计算公式为:

1.3.4.5 剪切力

参照刘宁等[17]的方法进行。将蒸煮冷却至室温的胸肌样品垂直切成长×宽×高为5 cm ×1 cm×1 cm的长条,用C-LM3型数显式肌肉嫩度仪测定其剪切力。

1.3.5 糖酵解潜力测定

采用商品化试剂盒分别测定胸肌糖酵解酶活性及乳酸、糖原含量,具体操作步骤按试剂盒说明书进行。肌肉糖酵解酶、乳酸及糖原商品化试剂盒购自南京建成生物工程研究所。

1.4 统计分析

试验数据使用Excel 2010进行初步整理,然后使用SPSS 20.0软件中一般线性模型进行数据统计分析,若差异显著则进一步进行Duncan氏法多重比较,结果以“平均值±标准差”表示,P < 0.05表示差异显著。

2 结果 2.1 饲粮添加CMH对黔东南小香鸡生长性能的影响

表 2所示,饲粮添加CMH对黔东南小香鸡平均日增重、平均日采食量及料重比均没有显著影响(P>0.05)。

表 3 饲粮添加CMH对黔东南小香鸡生长性能的影响 Table 3 Effects of dietary CMH on growth performance of Qiandongnan Xiaoxiang chickens
2.2 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡血清皮质酮和葡萄糖含量的影响

图 1所示,与A组相比,B组的血清皮质酮含量显著增加(P < 0.05),血清葡萄糖含量显著降低(P < 0.05)。与B组相比,C组的血清葡萄糖和皮质酮含量没有显著差异(P>0.05);D组的血清葡萄糖含量显著增加(P < 0.05),血清皮质酮含量显著降低(P < 0.05)。C组和D组的血清葡萄糖和皮质酮含量与A组没有显著差异(P>0.05)。

数据柱标相同小写字母表示差异不显著(P>0.05),不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。下图同。 Value columns with the same small letter mean no significant difference (P > 0.05), while with different small letters mean significant difference (P < 0.05). The same as below. 图 1 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡血清葡萄糖和皮质酮含量的影响 Fig. 1 Effects of dietary CMH on contents of corticosterone and glucose in serum of Qiandongnan Xiaoxiang chickens subjected to pre-slaughter transportation stress
2.3 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡肉品质的影响

表 4所示,与A组相比,B组的胸肌pH24 h显著降低(P < 0.05),胸肌L*值、滴水损失和蒸煮损失显著增加(P < 0.05),胸肌pH45 min、剪切力和a*、b*值没有显著差异(P>0.05)。与B组相比,C组的胸肌pH24 h显著增加(P < 0.05),胸肌蒸煮损失显著降低(P < 0.05),胸肌其他肉品质指标没有显著差异(P>0.05);D组的胸肌pH24 h显著增加(P < 0.05),胸肌L*值、滴水损失和蒸煮损失显著降低(P < 0.05),胸肌pH45 min、剪切力和a*、b*值没有显著差异(P>0.05)。C组和D组的肉品质指标与A组没有显著差异(P>0.05)。

表 4 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡肉品质的影响 Table 4 Effects of dietary CMH on meat quality of Qiandongnan Xiaoxiang chickens subjected to pre-slaughter transportation stress
2.4 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡胸肌糖酵解酶活性的影响

图 2所示,与A组相比,B组的胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性显著增加(P < 0.05)。与B组相比,C组的胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性没有显著差异(P>0.05);D组的胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性显著降低(P < 0.05)。C组的胸肌己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性显著高于A组(P < 0.05),D组的胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性与A组没有显著差异(P>0.05)。C组和D组之间胸肌丙酮酸激酶、己糖激酶和果糖-2,6-二磷酸酶活性没有显著差异(P>0.05)。

图 2 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡胸肌糖酵解酶活性的影响 Fig. 2 Effects of dietary CMH on activities of glycolytic enzyme in breast muscle of Qiandongnan Xiaoxiang chickens subjected to pre-slaughter transportation stress
2.5 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡胸肌糖酵解潜力的影响

图 3所示,与A组相比,B组的胸肌糖原含量显著降低(P < 0.05),胸肌乳酸含量及糖酵解潜力显著增加(P < 0.05)。与B组相比,C组的胸肌乳酸、糖原含量及糖酵解潜力没有显著差异(P>0.05);D组的胸肌乳酸含量及糖酵解潜力显著降低(P < 0.05),胸肌糖原含量显著增加(P < 0.05)。C组的胸肌乳酸含量及糖酵解潜力显著高于A组(P < 0.05),D组的胸肌乳酸、糖原含量及糖酵解潜力与A组没有显著差异(P>0.05)。C组的胸肌乳酸含量显著高于D组(P < 0.05),而C组和D组之间胸肌糖原含量及糖酵解潜力没有显著差异(P>0.05)。

图 3 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡胸肌糖酵解潜力的影响 Fig. 3 Effects of dietary CMH on breast muscle glycolytic potential of Qiandongnan Xiaoxiang chickens subjected to pre-slaughter transportation stress
3 讨论 3.1 饲粮添加CMH对黔东南小香鸡生长性能的影响

研究表明,CMH可以调控体内能量代谢,减少糖类、脂肪和蛋白质的分解,进而加快动物的生长和饲料转化率[10],并且Cr可能参与食物摄入和体重的调节[18]。本研究发现,饲粮添加0.06%和0.12%的CMH对黔东南小香鸡生长性能均没有影响。与此相似,Zhang等[11]研究同样表明,宰前14 d补充CMH对肉鸡生长性能没有影响。而Ringel等[19]选用1日龄Ross肉鸡为研究对象,结果发现,饲粮添加0.12%的CMH显著增加了肉鸡体重,但对平均日采食量及料重比没有显著影响。吴昊[20]以AA肉鸡为研究对象,分别在其饲粮中添加0.4%、0.8%和1.6%的CMH,结果表明,饲粮添加1.6%的CMH显著增加了42日龄肉鸡平均日增重,降低了饲料转化率,这与本试验结果不同,分析其原因可能是由于CMH添加剂量的不同、试验期长短及所用试验鸡只品种和生长阶段的不同。

3.2 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡血清皮质酮和葡萄糖含量的影响

宰前禁饲、抓捕、装箱及运输等给肉鸡带来严重的应激[2],引起血液皮质酮和肾上腺素含量的增加,导致生理代谢紊乱[21],甚至造成肉鸡死亡率的增加。血液皮质酮和葡萄糖含量可作为肉鸡运输应激及肌肉损伤的指示物[22-23]。本研究结果表明,3 h运输应激显著降低了黔东南小香鸡血清葡萄糖含量,显著增加了血清皮质酮含量。Zhang等[24]选用AA肉鸡为研究对象,结果表明,3 h运输应激降低了肉鸡血清葡萄糖含量,提高了血清皮质酮含量,这表明3 h运输应激增加了机体葡萄糖消耗,使肉鸡受到较大的应激。与此相似,Yue等[16]在慢速生长黄羽肉鸡上的研究同样发现,3 h的长途运输能够显著降低肉仔鸡血清葡萄糖含量。然而,与3 h运输应激的B组相比,饲粮添加0.12%的CMH显著增加了血清葡萄糖含量,显著降低了血清皮质酮含量。这表明饲粮添加CMH在一定程度上能够缓解运输应激对黔东南小香鸡的不利影响。

3.3 饲粮添加CMH对宰前运输应激黔东南小香鸡肉品质的影响

肌肉pH是肉品质测定的重要指标,适宜的pH有利于提升肌肉的风味[17]。运输应激条件下,机体能量代谢加强,供能物质如葡萄糖、糖原等通过糖酵解作用产生ATP来补充能量[5]。随着运输时间的延长,肌肉剧烈收缩,无氧酵解反应增加,使产生的乳酸在肌肉中不断积累,导致肌肉最终pH降低[25]。本研究发现,3 h运输应激显著降低了胸肌pH24 h。Zhang等[5]以AA肉鸡为研究对象,进行3 h运输应激处理后发现,胸肌pH24 h降低,这与本研究结果一致。前期研究发现,饲粮添加CMH可以增加肌肉pH,改善肉品质[9]。本研究表明,与3 h运输应激的B组相比,饲粮添加0.12%的CMH显著增加了胸肌pH24 h,这可能是由于CMH增加了胸肌PCr储备,而肌肉中大量的PCr储备对延缓宰后肌肉糖酵解的发生和pH下降具有重要的调控作用[26]。张林等[27]的研究同样表明,在肉仔鸡中添加0.12%的CMH可以增加宰后胸肌pH24 h。由此可知,饲粮添加CMH可以增加黔东南小香鸡肌肉pH24 h,且以0.12%的CMH添加效果较好。

肉色是评价鸡肉外观最直接的感官特性指标,是影响消费者认可并购买肉品的决定因素之一[17]。肉色通常以L*、a*和b*值作为评定的依据。本试验结果显示,与无运输应激的A组相比,3 h运输应激显著增加了胸肌L*值。Zhang等[24]以AA肉鸡为研究对象,进行宰前3 h运输应激处理,结果发现,与0.5 h运输应激相比,3 h运输应激显著增加了宰后24 h胸肌L*值,但对胸肌a*和b*值没有显著影响。但Yue等[16]选择72日龄黄羽肉鸡为研究对象,分别进行无运输应激、45 min运输应激+45 min休息、45 min运输应激+3 h休息、3 h运输应激+ 45 min休息、3 h运输应激+3 h休息,结果表明,与无运输应激相比,3 h运输应激对宰后24 h胸肌L*、a*和b*值均没有显著影响。这与本研究结果不一致,可能是由于运输应激处理方式的不同引起。

滴水损失和蒸煮损失是衡量肌肉系水力的重要指标。本试验中,与无运输应激的A组相比,3 h运输应激显著增加了肌肉滴水损失和蒸煮损失。Zhang等[24]研究发现,3 h运输应激显著增加了胸肌滴水损失。然而,与3 h运输应激的B组相比,饲粮添加0.12%的CMH显著降低了黔东南小香鸡胸肌蒸煮损失和滴水损失。剪切力是反映肌肉嫩度的直观指标。本研究发现,各组之间剪切力无显著差异。Wang等[7]研究发现,3 h运输应激对肉鸡肌肉剪切力无显著影响。以上结果表明,运输应激对黔东南小香鸡肉品质产生了不利影响,而饲粮添加CMH对此具有一定的改善作用。

3.4 饲粮添加CMH对运输应激黔东南小香鸡糖酵解酶活性及糖酵解潜力的影响

糖酵解系统是指动物肌肉组织中肌糖原在缺氧条件下,经过一系列酶促反应转变为乳酸的过程,且该作用会一直持续到糖酵解酶失活或糖原耗尽[28-29]。运输应激加速了肌肉的糖酵解代谢,影响了肌肉糖酵解酶活性及糖酵解潜力[8, 11]。己糖激酶、丙酮酸激酶和乳酸脱氢酶是参与糖酵解途径的限速酶,分别负责将葡萄糖转化为葡萄糖-6-磷酸、磷酸烯醇丙酮酸转化为丙酮酸和丙酮酸转化为乳酸[30]。张林等[27]和祁晶等[31]研究发现,运输应激显著降低了胸肌糖原含量,显著增加了胸肌乳酸含量。与此相似,本研究表明,与无运输应激的A组相比,3 h运输显著降低了胸肌糖原含量,显著增加了胸肌乳酸含量,并且显著增加了糖酵解潜力及丙酮酸激酶、己糖激酶及果糖-2,6-二磷酸酶活性,这表明3 h运输应激影响了宰后肌肉糖酵解进程。这可能是由于运输应激时,肌肉细胞从氧化磷酸化转变为糖酵解,从而产生足够的ATP以满足肌肉能量需求,无氧酵解成为肌肉ATP供应的主要能量来源[6],因而引起肌肉糖酵解程度加剧。然而,与3 h运输应激的B组相比,饲粮添加0.12%的CMH显著降低了胸肌乳酸含量及糖酵解潜力,显著增加了胸肌糖原含量。Zhang等[11]研究同样表明,饲粮添加CMH显著增加了肉鸡胸肌糖原含量,降低了胸肌糖酵解潜力。这些结果表明,运输应激增加了糖酵解酶活性,影响了宰后肌肉糖酵解过程,而饲粮添加0.12%的CMH则在一定程度上抑制了运输应激引起的糖酵解进程。

4 结论

3 h运输应激降低了黔东南小香鸡血清葡萄糖含量,增加了血清皮质酮含量,增强了肌肉糖酵解,影响了肉品质。而饲粮添加0.12%的CMH缓解了黔东南小香鸡的运输应激,在一定程度上抑制了运输应激引起的肌肉糖酵解进程,对运输应激黔东南小香鸡的肉品质有一定的改善作用。

参考文献
[1]
杨乾, 张柏林, 刘宁, 等. 日粮添加谷氨酰胺对黔东南小香鸡免疫器官指数及肠道免疫的影响[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2020, 35(6): 983-989.
YANG Q, ZHANG B L, LIU N, et al. Effects of glutamine supplementation on the immune organ indexes and intestinal immunity of Qiandongnan Xiaoxiang chickens[J]. Journal of Yunnan Agricultural University (Natural Science), 2020, 35(6): 983-989 (in Chinese).
[2]
SCHWARTZKOPF-GENSWEIN K S, FAUCITANO L, DADGAR S, et al. Road transport of cattle, swine and poultry in North America and its impact on animal welfare, carcass and meat quality: a review[J]. Meat Science, 2012, 92(3): 227-243. DOI:10.1016/j.meatsci.2012.04.010
[3]
ZHANG C, GENG Z Y, CHEN K K, et al. L-theanine attenuates transport stress-induced impairment of meat quality of broilers through improving muscle antioxidant status[J]. Poultry Science, 2019, 98(10): 4648-4655. DOI:10.3382/ps/pez164
[4]
张林, 岳洪源, 张海军, 等. 不同强度的运输应激对肉仔鸡血液应激指标和肌肉品质的影响[J]. 动物营养学报, 2009, 21(3): 288-293.
ZHANG L, YUE H Y, ZHANG H J, et al. Effects of different intensities of transport on blood stress parameters and meat quality in broiler chicks[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2009, 21(3): 288-293 (in Chinese). DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2009.03.004
[5]
ZHANG L, LI J L, GAO T, et al. Effects of dietary supplementation with creatine monohydrate during the finishing period on growth performance, carcass traits, meat quality and muscle glycolytic potential of broilers subjected to transport stress[J]. Animal, 2014, 8(12): 1955-1962. DOI:10.1017/S1751731114001906
[6]
ZHANG B, LIU N, HE Z, et al. Guanidino-acetic acid: a scarce substance in biomass that can regulate postmortem meat glycolysis of broilers subjected to pre-slaughter transportation[J]. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 2021, 8: 631194. DOI:10.3389/fbioe.2020.631194
[7]
WANG X F, LI J L, CONG J H, et al. Preslaughter transport effect on broiler meat quality and post-mortem glycolysis metabolism of muscles with different fiber types[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2017, 65(47): 10310-10316. DOI:10.1021/acs.jafc.7b04193
[8]
XING T, XU X L, JIANG N N, et al. Effect of transportation and pre-slaughter water shower spray with resting on AMP-activated protein kinase, glycolysis and meat quality of broilers during summer[J]. Animal Science Journal, 2016, 87(2): 299-307. DOI:10.1111/asj.12426
[9]
吴娟, 程灵豪, 高峰, 等. 一水肌酸对肉鸭胴体组成及肉品质的影响[J]. 南京农业大学学报, 2011, 34(4): 100-104.
WU J, CHENG L H, GAO F, et al. Effects of creatine monohydrate on carcass composition and meat quality in ducks[J]. Journal of Nanjing Agricultural University, 2011, 34(4): 100-104 (in Chinese).
[10]
李蛟龙. 一水肌酸和胍基乙酸对育肥猪肉质的影响及其作用机制研究[D]. 博士学位论文. 南京: 南京农业大学, 2015.
LI J L. Effect and mechanism of creatine monohydrate and guanidinoacetic acid supplemetation on meat quality of finishing pigs[D]. Ph. D. Thesis. Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2015. (in Chinese)
[11]
ZHANG L, WANG X F, LI J L, et al. Creatine monohydrate enhances energy status and reduces glycolysis via inhibition of AMPK pathway in pectoralis major muscle of transport-stressed broilers[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2017, 65(32): 6991-6999. DOI:10.1021/acs.jafc.7b02740
[12]
MICHIELS J, MAERTENS L, BUYSE J, et al. Supplementation of guanidinoacetic acid to broiler diets: effects on performance, carcass characteristics, meat quality, and energy metabolism[J]. Poultry Science, 2012, 91(2): 402-412. DOI:10.3382/ps.2011-01585
[13]
ALLEN P J. Creatine metabolism and psychiatric disorders: does creatine supplementation have therapeutic value?[J]. Neuroscience and Biobehavioral Reviews, 2012, 36(5): 1442-1462. DOI:10.1016/j.neubiorev.2012.03.005
[14]
YALCIN S, GVLER H C. Interaction of transport distance and body weight on preslaughter stress and breast meat quality of broilers[J]. British Poultry Science, 2012, 53(2): 175-182. DOI:10.1080/00071668.2012.677805
[15]
SUN X B, HUANG J C, LI T T, et al. Effects of preslaughter shackling on postmortem glycolysis, meat quality, changes of water distribution, and protein structures of broiler breast meat[J]. Poultry Science, 2019, 98(9): 4212-4220. DOI:10.3382/ps/pez175
[16]
YUE H Y, ZHANG L, WU S G, et al. Effects of transport stress on blood metabolism, glycolytic potential, and meat quality in meat-type yellow-feathered chickens[J]. Poultry Science, 2010, 89(3): 413-419. DOI:10.3382/ps.2009-00550
[17]
刘宁, 张柏林, 谢宇潇, 等. 黔东南小香鸡与瑶鸡屠宰性能及肉品质的比较研究[J]. 中国畜牧杂志, 2020, 56(2): 67-70.
LIU N, ZHANG B L, XIE Y X, et al. Comparative studies on carcass traits and meat quality of Qiandongnan Xiaoxiang chicken and Yao chicken[J]. Chinese Journal of Animal Science, 2020, 56(2): 67-70 (in Chinese).
[18]
GALBRAITH R A, FURUKAWA M, LI M. Possible role of creatine concentrations in the brain in regulating appetite and weight[J]. Brain Research, 2006, 1101(1): 85-91. DOI:10.1016/j.brainres.2006.05.032
[19]
RINGEL J, LEMME A, KNOX A, et al. Effects of graded levels of creatine and guanidino acetic acid in vegetable-based diets on performance and biochemical parameters in muscle tissue[C]//WHITEHEAD C C, HUYGHEBAERT G, PAPESOVA L, et al. Proceedings of the 16th European Symposium on Poultry Nutrition. Strasbourg: WPSA, 2007: 387-390.
[20]
吴昊. 一水肌酸对肉鸡生产性能的影响及作用机理的研究[D]. 硕士学位论文. 长春: 吉林大学, 2013.
WU H. The effect and mechanism of creatine monohydrate on growth performance in broilers[D]. Master's Thesis. Changchun: Jilin University, 2013. (in Chinese)
[21]
NIJDAM E, DELEZIE E, LAMBOOIJ E, et al. Comparison of bruises and mortality, stress parameters, and meat quality in manually and mechanically caught broilers[J]. Poultry Science, 2005, 84(3): 467-474. DOI:10.1093/ps/84.3.467
[22]
ZHANG L, YUE H Y, ZHANG H J, et al. Transport stress in broilers: Ⅰ.Blood metabolism, glycolytic potential, and meat quality[J]. Poultry Science, 2009, 88(10): 2033-2041. DOI:10.3382/ps.2009-00128
[23]
VOSLAROVA E, CHLOUPEK P, VOSMEROVA P, et al. Time course changes in selected biochemical indices of broilers in response to pretransport handling[J]. Poultry Science, 2011, 90(10): 2144-2152. DOI:10.3382/ps.2011-01473
[24]
ZHANG L, LI J L, WANG X F, et al. Attenuating effects of guanidinoacetic acid on preslaughter transport-induced muscle energy expenditure and rapid glycolysis of broilers[J]. Poultry Science, 2019, 98(8): 3223-3232. DOI:10.3382/ps/pez052
[25]
张林. 运输应激对肉仔鸡肌肉品质的影响及其机理[D]. 硕士学位论文. 杨凌: 西北农林科技大学, 2009.
ZHANG L. Effects of transport stress on meat quality and mechanism in broiler chickens[D]. Master's Thesis. Yangling: Northwest Agriculture & Forestry University, 2009. (in Chinese)
[26]
夏伟光, 左建军, 冯定远. 肉鸡饲粮中添加一水肌酸对骨骼肌肌酸吸收和代谢的影响[J]. 动物营养学报, 2013, 25(2): 372-381.
XIA W G, ZUO J J, FENG D Y. Effects of diets supplemented with creatine monohydrate on creatine uptake and metabolism in skeletal muscle of broilers[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2013, 25(2): 372-381 (in Chinese). DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2013.02.019
[27]
张林, 李蛟龙, 高天, 等. 宰前2周日粮添加一水肌酸对长途运输肉仔鸡宰后肌肉糖酵解代谢和肉品质的影响[C]//李爱科, 李绍钰. 第七届中国饲料营养学术研讨会论文集. 北京: 中国农业大学出版社, 2014: 117.
ZHANG L, LI J L, GAO T, et al. Effects of dietary creatine monohydrate supplementation for 2 weeks before slaughter on muscle glycolysis metabolism and meat quality of long-distance transport broilers[C]//LI A K, LI S Y. Proceedings of the Seventh China Symposium on Feed Nutrition. Beijing: China Agricultural University Press, 2014: 117. (in Chinese)
[28]
吴娟. 一水肌酸对肉鸭胴体组成、肉品质及宰后肌肉能量代谢的影响研究[D]. 硕士学位论文. 南京: 南京农业大学, 2011.
WU J. Study on the effect of creatine monohydrates on carcass composition, meat quality and energy metabolism of postmortem muscle in duck[D]. Master's Thesis. Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2011. (in Chinese)
[29]
程天赋, 俞龙浩. 宰后糖酵解对肉品质影响的研究进展[J]. 食品研究与开发, 2017, 38(15): 219-224.
CHENG T F, YU L H. Research progress on effects of postmortem glycolysis on meat quality[J]. Food Research and Development, 2017, 38(15): 219-224 (in Chinese). DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2017.15.045
[30]
LIU Y, LI J L, LI Y J, et al. Effects of dietary supplementation of guanidinoacetic acid and combination of guanidinoacetic acid and betaine on muscle energy metabolism, meat quality in finishing pigs[J]. Animal Feed Science and Technology, 2015, 205: 82-89. DOI:10.1016/j.anifeedsci.2015.03.010
[31]
祁晶, 张亚茹, 施尧, 等. 一水肌酸对宰前运输应激北京鸭血液指标和肉品质的影响[J]. 中国家禽, 2017, 39(2): 43-47.
QI J, ZHANG Y R, SHI Y, et al. Effects of creatine monohydrate on plasma variables and meat quality of pekin ducks subjected to preslaughter transport stress[J]. China Poultry, 2017, 39(2): 43-47 (in Chinese).