动物营养学报    2021, Vol. 33 Issue (10): 5569-5580    PDF    
叶黄素对脂多糖应激黄羽肉鸡生长性能、空肠形态和盲肠微生物的影响
王美艳 , 童玉鑫 , 闵遥 , 王长康 , 高玉云     
福建农林大学动物科学学院/蜂学学院, 福州 350002
摘要: 本试验旨在研究不同水平叶黄素对脂多糖(LPS)应激黄羽肉鸡生长性能、空肠形态和盲肠微生物的影响。选择体重相近的1日龄健康黄羽肉公鸡288只,随机分为3个组,每组8个重复,每个重复12只鸡。对照组饲喂基础饲粮,试验组分别饲喂在基础饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素的试验饲粮。于肉鸡21、23和25日龄时连续3次腹腔注射1 mg/kg LPS,试验期26 d。结果表明:1)与对照组相比,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激黄羽肉鸡22~26日龄和1~26日龄的平均日增重(P < 0.05),显著降低22~26日龄的料重比(P < 0.05)。2)与对照组相比,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激黄羽肉鸡的空肠绒毛高度(P < 0.05),添加40 mg/kg叶黄素可显著提高空肠绒毛高度/隐窝深度(V/C)(P < 0.05)。3)与对照组相比,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激黄羽肉鸡盲肠微生物Shannon指数(P < 0.05),且菌群结构较为相似,但与对照组样本距离较远;显著提高厚壁菌门(Firmicutes)和艾森伯格菌属(Eisenbergiella)相对丰度(P < 0.05),显著降低变形菌门(Proteobacteria)和未鉴定的肠杆菌科(unidentified Enterobacteriaceae)相对丰度(P < 0.05);与氨基酸代谢、碳水化合物代谢和遗传信息相关的京都基因与基因组百科全书(KEGG)通路在20和40 mg/kg叶黄素组中显著富集(P < 0.05)。综上所述,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素能改善LPS应激下黄羽肉鸡空肠形态和盲肠微生物菌群结构组成,其中40 mg/kg叶黄素组促生长效果最佳。
关键词: 叶黄素    脂多糖    肉鸡    生长性能    空肠形态    盲肠微生物    
Effects of Lutein on Growth Performance, Jejunum Morphology and Cecal Microorganisms of Lipopolysaccharide-Stimulated Yellow-Feathered Broilers
WANG Meiyan , TONG Yuxin , MIN Yao , WANG Changkang , GAO Yuyun     
College of Animal Science/College of Bee Science, Fujian Agricultural and Forestry University, Fuzhou 350002, China
Abstract: This experiment aimed to study the effects of different levels of lutein on growth performance, intestinal morphology and cecal microorganisms of lipopolysaccharide (LPS)-stimulated yellow-feather broilers. Two hundred eighty-eight one-day-old healthy yellow-feathered male broilers with similar body weight were randomly divided into 3 groups with 8 replicates per group and 12 broilers per replicate. Broilers in control group were fed a basal diet, and the others in experimental groups were fed the basal diets supplemented with 20 and 40 mg/kg lutein. Three consecutive intraperitoneal injections of 1 mg/kg LPS were given to broilers at 21, 23 and 25 days of age. The experimental period lasted for 26 days. The results showed as follows: 1) compared with control group, dietary 40 mg/kg lutein significantly increased average daily gain of LPS-stimulated yellow-feathered broilers from 21 to 26 days of age and 1 to 26 days of age (P < 0.05), and significantly decreased the ratio of feed to gain of broilers from 22 to 26 days of age (P < 0.05). 2) Compared with control group, dietary 20 and 40 mg/kg lutein significantly increased villus height of jejunum of LPS-stimulated yellow-feathered broilers (P < 0.05), and dietary 40 mg/kg lutein significantly increased the ratio of villus height to crypt depth (V/C) of jejunum (P < 0.05). 3) Compared with control group, dietary 20 and 40 mg/kg lutein significantly increased the Shannon index of cecal microorganism of LPS-stimulated yellow-feathered broilers (P < 0.05); and the microflora structure was similar, but the distance to control group was far. Compared with control group, dietary 20 and 40 mg/kg lutein significantly increased relative abundance of Firmicutes and Eisenbergiella (P < 0.05), and significantly decreased relative abundance of Proteobacteria and unidentified Enterobacteriaceae (P < 0.05); and Kyoto Encyclopedia of genes and genomes (KEGG) pathways related to amino acid, carbohydrate metabolism and genetic information processing were significantly enriched in 20 and 40 mg/kg lutein groups (P < 0.05). In conclusion, dietary 20 and 40 mg/kg lutein can improve jejunal morphology and cecal microflora composition of LPS-stimulated yellow-feathered broilers, and 40 mg/kg lutein has the best growth promoting effect.
Key words: lutein    LPS    broilers    growth performance    jejunum morphology    cecal microorganisms    

免疫接种能够有效帮助机体对抗特定外来病原体的侵扰,是畜禽养殖过程中的重要手段,然而高频率、大剂量的疫苗接种会使畜禽产生免疫应激反应。在免疫应激状态下,一方面家禽的采食量下降,饲粮中营养素重新分配,用于肌肉沉积的营养素转向支持一系列免疫系统的代谢反应;另一方面家禽的发病率和死亡率升高[1],最终导致养殖业经济损失。因此,建立动物免疫应激模型,寻找免疫调节的营养素具有重要意义。脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)又称内毒素,是革兰氏阴性菌细胞外壁的主要成分。研究表明,腹腔注射LPS会引起肠道绒毛萎缩、肠道菌群改变、肠道炎症、病原体感染及氧化损伤等[2-3],是目前研究动物免疫应激的经典模型[4-6]。本课题组已经建立了LPS肉仔鸡免疫应激模型(于21、23、25日龄时连续3次腹腔注射1 mg/kg LPS)[7],证实LPS注射诱导肉仔鸡生长性能显著下降和肠道炎症应答[8]。叶黄素是类胡萝卜素(carotenoids,Car)的一种,普遍存在于羽衣甘蓝和金盏菊中,具有着色、抗氧化、免疫调控等多种生物学功能[9-11]。叶黄素也可以作为免疫调节的营养素提高畜禽的生长性能,特别是当畜禽处于疾病状态或者LPS应激引起强烈的急性期反应时[12]。本课题组前期研究表明,叶黄素可以调控母鸡和肉仔鸡机体的免疫应答、抗氧化能力、细胞凋亡、Car代谢相关基因以及核因子的表达,但对肠道微生物的作用还不清楚[8, 13-16]。家禽的肠道中有一个复杂而动态的微生物群落,主要由细菌组成[17],对宿主的生长性能和健康状态具有重要作用[18-20]。因此,本试验研究不同水平叶黄素对LPS应激肉鸡生长性能、空肠形态和盲肠微生物的影响,通过营养调控手段改善家禽肠道健康,从而为应激条件下肉鸡的营养调控及肠道菌群健康提供理论依据。

1 材料与方法 1.1 试验设计

选择体重相近的1日龄健康黄羽肉公鸡288只,随机分为3个组,每组8个重复,每个重复12只鸡。对照组(C组)饲喂基础饲粮,试验组分别饲喂在基础饲粮中添加20(L组)和40 mg/kg叶黄素(H组,叶黄素含量为2%,原料组成包括天然叶黄素、稻壳粉、石粉、二氧化硅和乙氧基喹啉)的试验饲粮。全部试验鸡于21、23和25日龄时连续3次隔天注射1 mg/kg LPS(购自Sigma, 货号L2880),试验期26 d。试验采用碎米-豆粕型饲粮,参考《鸡饲养标准》(NY/T 33—2004)进行配制,基础饲粮组成及营养水平见表 1。紫外分光光度法检测饲粮中总叶黄素含量(表 2)。试验于福建农林大学动物科学学院家禽试验场开展,饲养于封闭式鸡舍,采用单层笼养,严格控制舍内温度、光照和通风。免疫按照常规程序操作,试验期间自由饮水。

表 1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of basal diets (air-dry basis) 
表 2 饲粮中叶黄素的测定值 Table 2 Determination of lutein in diets
1.2 样品采集

饲养结束后,每个重复随机挑选1只鸡进行屠宰,屠宰前禁食12 h,不禁水。称重记录宰前活重,颈部放血处死。打开腹腔,将空肠和盲肠取出,取空肠中段3 cm左右的组织,用生理盐水将内容物冲洗干净,置于4%多聚甲醛磷酸缓冲液固定;将盲肠内容物放入2 mL冻存管,液氮冻存后转移至-80 ℃保存待测。

1.3 检测指标与方法 1.3.1 生长性能

于试验第26天08:00(断料12 h),以重复为单位称量试验鸡宰前活重及余料量,统计平均日增重、平均日采食量和料重比。试验期间,如果有鸡只死亡,则立即称余料量和死鸡重,并记录数据。

平均日增重=(平均终末体重-平均

初始体重)/饲喂天数;

平均日采食量=平均阶段采食量/饲喂天数;

料重比=每个重复的平均阶段采食量/

平均阶段增重。

1.3.2 肠道形态

空肠组织经4%多聚甲醛磷酸缓冲液固定,无水乙醇多稀释梯度脱水后石蜡包埋,连续切片、脱蜡、苏木精-伊红(HE)染色和封片等,光学显微镜进行观察、拍照、分析,并测量绒毛高度、隐窝深度,计算绒毛高度/隐窝深度(villus height/crypt depth,V/C)。

1.3.3 测序及数据分析

采用十二烷基硫酸钠(SDS)方法对盲肠内容物样本的基因组DNA进行提取,使用引物515F和806R,扩增细菌核糖体RNA基因V3、V4区。PCR产物使用2%琼脂糖凝胶进行电泳检测,目的条带使用QIAGEN公司提供的胶回收试剂盒回收产物。使用TruSeq DNA PCR-Free Sample Preparation Kit建库试剂盒进行文库构建,构建好的文库经过Qubit和Q-PCR定量,文库合格后,使用NovaSeq 6000进行上机测序。测序服务由塞维尔生物科技有限公司完成。基于Illumina NovaSeq测序平台对该文库进行双末端测序。经过Reads拼接过滤和操作分类单元(OTU)聚类,可以进行物种注释及丰度分析;通过Alpha多样性和Beta多样性分析,揭示出样本中物种组成和样本间群落结构差异。Tax4Fun功能预测,提取京都基因与基因组百科全书(KEGG)数据库原核生物全基因组16S rRNA基因序列并利用BLASTN算法将其比对到SILVA SSU Ref NR数据库建立相关矩阵,实现SILVA数据库功能注释。

1.4 数据处理

试验数据用Excel 2019整理后,采用SPSS 25.0统计软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA), 差异显著时使用Duncan氏法进行多重比较检验,结果均用平均值±标准差(mean±SD)表示。以P≤0.05表示差异显著,以P>0.05表示差异不显著。

2 结果 2.1 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡生长性能的影响

表 3可知,与C组相比,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激黄羽肉鸡22~26日龄和1~26日龄时的平均日增重(P < 0.05),显著降低22~26日龄时的料重比(P < 0.05),但各组间的平均日采食量均无显著差异(P>0.05)。

表 3 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡生长性能的影响 Table 3 Effects of lutein on growth performance of LPS-stimulated yellow-feathered broilers
2.2 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡空肠形态的影响

图 1表 4可知,与C相比,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激黄羽肉鸡的空肠绒毛高度(P < 0.05),添加40 mg/kg叶黄素可显著提高空肠V/C(P < 0.05),但各组间的空肠隐窝深度均无显著差异(P>0.05)。

图 1 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡空肠组织HE染色切片的影响 Fig. 1 Effects of lutein on HE stained sections of jejunum of LPS-stimulated yellow-feathered broilers (100×)
表 4 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡空肠形态的影响 Table 4 Effects of lutein on jejunum morphology of LPS-stimulated yellow-feathered broilers
2.3 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡盲肠微生物多样性的影响 2.3.1 测序数据及OTU类

盲肠内容物经测序、质控后有效数据量达65 908,质控有效率达74.01%。以97%的一致性将序列聚类成为OTU,共得到1 154个OTU。由图 2-A物种稀释曲线可知,当观测到的物种(observed species)稀释曲线的测序条数达到60 000时,曲线趋向平坦;由表 5可知,覆盖率(goods coverage)均为0.99。这说明测序数据合理,测序深度足够,可以反映样品中绝大多数微生物信息。

C: 对照组; L: 20 mg/kg叶黄素组; H: 40 mg/kg叶黄素组。下图同。 C: control group; L: 20 mg/kg lutein group; H: 40 mg/kg lutein group. The same as below. 图 2 物种稀释曲线和OTU韦恩图 Fig. 2 Rarefaction curves of observed species and Venn diagram of OTU
表 5 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡盲肠微生物Alpha多样性的影响 Table 5 Effects of lutein on alpha diversity of cecal microorganism of LPS-stimulated yellow-feathered broilers

将所有样品的OTU个数进行韦恩(Venn)分析,从而反映样本组间共有和特有的OTU情况。由图 2-B OTU韦恩图可知,3组中共有304个核心OTU,占所有OTU的26.34%。C、L和H组分别特有104、119和122个OTU,同时L和H组共有250个OTU。

2.3.2 Alpha多样性分析

表 5可知,与C相比,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激黄羽肉鸡盲肠微生物的Shannon指数(P < 0.05);但各组间盲肠微生物Chao1指数差异不显著(P>0.05)。

2.3.3 Beta多样性分析

在主坐标分析(PCoA)中,样本距离越接近,表示物种组成结构越相似,由图 3可知,C组样本集中聚集在右侧,而L和H组样本部分重叠并集中聚集在左侧。多响应置换过程(MRPP)分析法用于分析组间微生物群落结构的差异,配合PCoA降维图使用。由表 6可知,3组的组间差异均大于组内差异(A值>0);C组和H组组间差异最大(期望增量=0.41),L组和H组组间差异最小(期望增量=0.37);C组和L组及C组和H组组间差异显著(显著性值< 0.05), L组和H组组间差异不显著(显著性值>0.10)。

图 3 基于加权Unifrac距离的主坐标分析 Fig. 3 PCoA analysis based on weighted Unifrac distance
表 6 MRPP组间差异分析 Table 6 Analysis of differences between MRPP groups
2.3.4 门水平和属水平相对丰度分析

图 4-A可知,盲肠微生物注释了10个菌门,其中厚壁菌门(Firmicutes)、变形菌门(Proteobacteria) 和拟杆菌门(Bacteroidetes)为优势菌门,占微生物总数的97.61%。由表 7可知,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素黄羽肉鸡盲肠微生物厚壁菌门相对丰度显著高于C组(P < 0.05),但变形菌门相对丰度显著低于C组(P < 0.05);添加40 mg/kg叶黄素拟杆菌门相对丰度最高。图 4-B展示了属水平相对丰度前10的微生物,共占比59.68%。由表 7可知,C组中未鉴定的肠杆菌科(unidentified Enterobacteriaceae)相对丰度显著高于其他2组(P < 0.05),拟杆菌属(Bacteroides)相对丰度升高(P>0.10);饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素艾森伯格菌属(Eisenbergiella)相对丰度显著高于C组(P < 0.05),布劳特氏菌属(Blautia)和腔隙杆菌属(Lachnoclostridium)相对丰度升高(P>0.10);添加40 mg/kg叶黄素普氏梭杆菌属(Flavonifractor)相对丰度显著高于C组(P < 0.05)。

Firmicutes: 厚壁菌门; Proteobacteria: 变形菌门; Bacteroidetes: 拟杆菌门; Actinobacteria: 放线菌门;Cyanobacteria: 蓝藻门; Unidentified_Bacteria: 未鉴定的细菌; Acidobacteria: 酸杆菌门; Spirochaetes: 螺旋体门; Verrucomicrobia: 疣微菌门; Armatimonadetes: 装甲菌门; Others: 其他; Unidentified_Enterobacteriaceae: 未鉴定的肠杆菌科; Bacteroides: 拟杆菌属; Enterococcus: 肠球菌属; Unidentified_Lachnospiraceae: 未鉴定的毛螺菌科; Eisenbergiella: 艾森伯格菌属; Unidentified_Ruminococcaceae: 未鉴定的瘤胃菌科; Butyricicoccus: 丁球菌属; Bifidobacterium: 双歧杆菌属; Flavonifractor: 普氏梭杆菌; Alistipes: 另枝菌属。 图 4 肉鸡盲肠微生物门水平和属水平上的组成 Fig. 4 Composition of cecum microorganism of broilers at phylum level and genus level
表 7 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡盲肠微生物优势门和优势属相对丰度的影响 Table 7 Effects of lutein on relative abundances of dominant phyla and predominant genera of cecal microorganism of LPS-stimulated yellow-feathered broilers
2.3.5 组间差异物种和功能预测

利用线性判别分析效应(LEfSe)分析并通过线性判别分析(LDA)实现降维,从而评估差异物种的影响大小,最后绘制差异物种图。由图 5可知,3组间LDA值>4的生物标志物共有14个,包括C组变形菌门、L组厚壁菌门和H组艾森伯格菌属等。由图 6可知,为了进一步了解微生物组代谢的情况,采用Tax4Fun法对盲肠微生物进行功能预测,发现与氨基酸代谢、碳水化合物代谢及遗传信息有关的KEGG通路在L和H组中显著富集(P < 0.05)。

图 5 盲肠微生物LEfSe分析 Fig. 5 LEfSe analysis of cecal microorganism
图 6 基于KEGG通路分析预测元基因组功能 Fig. 6 Prediction of metagenomic function based on KEGG pathway analysis
3 讨论 3.1 叶黄素对LPS应激肉鸡生长性能的影响

目前,关于叶黄素对肉鸡生长性能的报道结果并不完善。本研究发现,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素对LPS应激前(1~21日龄)肉鸡的促生长效果不显著。出现这一现象的原因可能是叶黄素对正常生理状态下肉鸡的生长性能没有显著影响。这一结果与李丽平等[21]和阿仑[22]的研究结果基本一致,但Moraes等[23]发现饲粮中添加50 mg/kg叶黄素和1%共轭亚油酸时能显著提高1~20日龄肉鸡的体增重和料重比,缓解共轭亚油酸对肉鸡生长的抑制作用,说明叶黄素对特定条件下肉鸡的生长性能有促进作用。郭俊杰等[24]研究发现,饲粮中添加2 g/kg常规叶黄素可显著提高高温条件[(33.00±0.52)℃]下60~88日龄黄羽肉鸡的末重和平均日采食量,促进肉鸡的生长性能,这与王文龙等[25]和安立龙等[26]的报道基本一致。免疫接种和饲养管理不当等都会诱导肉鸡发生免疫应激反应,从而影响肉鸡的生长性能。本课题组中,张杰[7]研究发现,于肉鸡21、23和25日龄时连续3次隔天注射1 mg/kg LPS,能显著降低肉鸡的平均日增重和体增重;而本试验发现,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素能显著提高应激阶段(22~26日龄)和整个试验期(1~26日龄)肉鸡的平均日增重,缓解由于LPS应激造成肉鸡生长性能的下降。这可能与叶黄素具有抗氧化和抗炎特性[24-25],能缓解LPS应激下肉鸡的炎症反应有关。因此,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素可以缓解LPS应激下肉鸡生长性能下降的影响。

3.2 叶黄素对LPS应激肉鸡肠道形态的影响

小肠是营养物质消化吸收的主要场所,绒毛高度增加和隐窝深度变浅可以为营养物质的消化吸收提供更大的表面积[26]。Kamboh等[27]研究表明,饲粮中添加金雀异黄素和橙皮苷可以提高LPS应激肉鸡的肠道绒毛高度和V/C。张子琪等[28]研究表明,虾青素和LPS组可以改善小鼠的空肠形态。Csernus等[29]对26日龄肉鸡腹腔注射2 mg/kg LPS,发现添加Car可以提高V/C,并显著提高绒毛高度,促进回肠营养物质吸收。以上研究结果表明,在LPS应激条件下,饲粮中添加Car可以改善肉鸡肠道形态和促进营养物质吸收。本试验结果中,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素可以显著提高LPS应激肉鸡的空肠绒毛高度和V/C,说明LPS应激条件下饲粮中添加叶黄素可以改善空肠形态,促进营养物质吸收。

3.3 叶黄素对LPS应激肉鸡盲肠微生物多样性的影响

家禽的胃肠道是细菌丰富度和多样性最高的区域[30],其中盲肠是尿素循环、水分调节和碳水化合物发酵的重要场所,对肉鸡的肠道营养和健康起着重要作用。本试验结果表明,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素可显著提高LPS应激肉鸡盲肠微生物的Shannon指数,说明饲粮中添加叶黄素可以提高LPS应激肉鸡盲肠微生物的多样性。通过PCoA分析可知20和40 mg/kg叶黄素组LPS应激肉鸡盲肠微生物结构相似,但与C组距离较远,说明饲粮中添加叶黄素可以改变LPS应激肉鸡盲肠微生物的结构和组成。

Wei等[31]对家禽肠道微生物研究发现,肉鸡盲肠中最常见的菌门是厚壁菌门(70%)、拟杆菌门(12%)和变形菌门(9%)。厚壁菌门与纤维分解、碳水化合物代谢有关[32];拟杆菌门能够降解非纤维性碳水化合物、蛋白质,促进胃肠道免疫系统发育[33-34];变形菌门包括大量的革兰氏阴性菌,如大肠杆菌,它们通过细胞壁上的LPS诱导炎症反应[35]。此外,变形杆菌与慢性肠炎的联系已在小鼠模型上得到证实[36]。本试验中,LPS应激肉鸡盲肠微生物中厚壁菌门、变形菌门和拟杆菌门为主要优势菌门,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素后厚壁菌门的相对丰度约为70%,显著高于C组;变形菌门相对丰度约为10%,显著低于C组。这说明LPS应激对盲肠微生物优势菌门组成没有造成显著影响,但是会改变优势菌门的相对丰度,而添加20和40 mg/kg叶黄素后能改善门水平微生物的相对丰度。饲粮中添加40 mg/kg叶黄素厚壁菌门和拟杆菌门的相对丰度最大,盲肠中消化代谢淀粉类碳水化合物有关细菌以及饲粮中摄取的能量也相对最多。饲粮中添加叶黄素能减少LPS应激肉鸡盲肠中变形菌门和未鉴定的肠杆菌科的相对丰度,在一定程度上能预防家禽呼吸道疾病的发生。本试验中,LPS应激肉鸡盲肠微生物的优势菌属为未鉴定的肠杆菌科和拟杆菌属。与Wei等[31]的结果不一致,这可能与LPS应激诱导肉鸡盲肠微生物菌群改变有关。厚壁菌门下的普氏梭杆菌属,有助于丁酸盐的产生[37],丁酸盐有利于提高饲料转化率和生长性能[38]。本试验中,LPS应激肉鸡后,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素普氏梭杆菌属相对丰度显著高于C组,说明添加40 mg/kg叶黄素可能会促进LPS应激肉鸡的生长性能。布劳特氏菌属是一种革兰氏阳性菌,能降解不同类型的碳水化合物,产生乙酸、乳酸等代谢产物,为机体提供能量,减少炎症[39]。本试验中,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素布劳特氏菌属相对丰度高于C组,说明叶黄素能在一定程度上改善LPS应激肉鸡的盲肠肠道健康。研究发现,肉鸡盲肠微生物中与氨基酸、碳水化合物代谢相关的KEGG通路始终大量存在,这与肉鸡肠道健康密切相关[40-41]。本试验结果表明,各组间KEGG通路表现出差异性富集,其中饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素与氨基酸、碳水化合物代谢相关功能显著富集。因此,饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素均能平衡盲肠菌群结构,缓解免疫应激诱导的盲肠微生物屏障功能损伤。

4 结论

饲粮中添加20和40 mg/kg叶黄素能改善LPS应激黄羽肉鸡空肠形态和盲肠微生物的结构组成,提高厚壁菌门和艾森伯格菌属相对丰度,降低变形菌门和未鉴定的肠杆菌科相对丰度;与氨基酸代谢、碳水化合物代谢和遗传信息相关的KEGG通路在20和40 mg/kg叶黄素组中显著富集。在本试验条件下,饲粮中添加40 mg/kg叶黄素时效果最佳,能显著提高LPS应激黄羽肉鸡的生长性能。

参考文献
[1]
SHINI S, HUFF G R, SHINI A, et al. Understanding stress-induced immunosuppression: exploration of cytokine and chemokine gene profiles in chicken peripheral leukocytes[J]. Poultry Science, 2010, 89(4): 841-851. DOI:10.3382/ps.2009-00483
[2]
ZHU C, WU Y P, JIANG Z Y, et al. Dietary soy isoflavone attenuated growth performance and intestinal barrier functions in weaned piglets challenged with lipopolysaccharide[J]. International Immunopharmacology, 2015, 28(1): 288-294. DOI:10.1016/j.intimp.2015.04.054
[3]
CHEN Y P, ZHANG H, CHENG Y F, et al. Dietary L-threonine supplementation attenuates lipopolysaccharide-induced inflammatory responses and intestinal barrier damage of broiler chickens at an early age[J]. The British Journal of Nutrition, 2018, 119(11): 1254-1262. DOI:10.1017/S0007114518000740
[4]
蔡学斌, 马新和, 施进文. 动物免疫应激和急救措施[J]. 中国畜牧兽医文摘, 2015, 31(12): 91-92.
CAI X B, MA X H, SHI J W. Animal immune stress and first aid measures[J]. China Animal Husbandry and Veterinary Digest, 2015, 31(12): 91-92 (in Chinese).
[5]
李荣芳, 李晓文, 王吉, 等. 细菌脂多糖及其免疫应激研究进展[J]. 中兽医医药杂志, 2015, 34(4): 19-22.
LI R F, LI X W, WANG J, et al. Advance in lipopolysaccharide and immunological stress[J]. Journal of Traditional Chinese Veterinary Medicine, 2015, 34(4): 19-22 (in Chinese).
[6]
GAO Y Y, CHEN L Z, ZHANG J, et al. Effects of lipopolysaccharide (LPS) challenge on antioxidant capability of broiler chickens[J]. The Indian Journal of Animal Sciences, 2018, 88(9): 1070-1077.
[7]
张杰. 叶黄素对LPS应激黄羽肉鸡生长性能、抗氧化及免疫功能的影响[D]. 硕士毕业论文. 福州: 福建农林大学, 2017.
ZHANG J. Effects of xanthophyll on growth performance, antioxidant and immune functions of LPS-stimulated yellow-feathered broilers[D]. Master's Thesis. Fuzhou: Fujian Agriculture and Forestry University, 2017. (in Chinese).
[8]
GAO Y Y, JIN L, PENG H, et al. Xanthophylls increased HDLC level and nuclear factor PPARγ, RXRγ and RARα expression in hens and chicks[J]. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 2018, 102(1): e279-e287. DOI:10.1111/jpn.12739
[9]
穆卫涛, 常杨, 赵冬雪, 等. LPS诱导不同品系雏鸡炎症反应相关基因的差异表达分析[J]. 中国兽医学报, 2016, 36(6): 944-949.
MU W T, CHANG Y, ZHAO D X, et al. Differential expression analysis of inflammatory response related genes through LPS induction in different-breed chicken[J]. Chinese Journal of Veterinary Science, 2016, 36(6): 944-949 (in Chinese).
[10]
WANG S, WANG M, ZHANG S, et al. Oxidative stress in rats with hyperhomo-cysteinemia and intervention effect of lutein[J]. European Review for Medical and Pharmacological Sciences, 2014, 18(3): 359-364.
[11]
MERIWETHER L S, HUMPHREY B D, PETERSON D G, et al. Lutein exposure, in ovo or in the diet, reduces parameters of inflammation in the liver and spleen laying-type chicks (Gallus gallus domesticus)[J]. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 2010, 94(5): e115-e122. DOI:10.1111/j.1439-0396.2010.00990.x
[12]
WILS-PLOTZ E L, KLASING K C. Effects of immunomodulatory nutrients on growth performance and immune-related gene expression in layer chicks challenged with lipopolysaccharide[J]. Poultry Science, 2017, 96(3): 548-555. DOI:10.3382/ps/pew376
[13]
GAO Y Y, JIN L, JI J, et al. Xanthophyll supplementation reduced inflammatory mediators and apoptosis in hens and chicks[J]. Journal of Animal Science, 2016, 94(5): 2014-2023. DOI:10.2527/jas.2015-9628
[14]
GAO Y Y, JI J, JIN L, et al. Xanthophyll supplementation regulates carotenoid and retinoid metabolism in hens and chicks[J]. Poultry Science, 2016, 95(3): 541-549. DOI:10.3382/ps/pev335
[15]
GAO Y Y, XIE Q M, MA J Y, et al. Supplementation of xanthophylls increased antioxidant capacity and decreased lipid peroxidation in hens and chicks[J]. The British Journal of Nutrition, 2013, 109(6): 977-983. DOI:10.1017/S0007114512002784
[16]
GAO Y Y, XIE Q M, JIN L, et al. Supplementation of xanthophylls decreased proinflammatory and increased anti-inflammatory cytokines in hens and chicks[J]. The British Journal of Nutrition, 2012, 108(10): 1746-1755. DOI:10.1017/S0007114512000025
[17]
ZHU X Y, ZHONG T, PANDYA Y, et al. 16S rRNA-based analysis of microbiota from the cecum of broiler chickens[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2002, 68(1): 124-137. DOI:10.1128/AEM.68.1.124-137.2002
[18]
BRISBIN J T, GONG J, SHARIF S. Interactions between commensal bacteria and the gut-associated immune system of the chicken[J]. Animal Health Research Reviews, 2008, 9(1): 101-110. DOI:10.1017/S146625230800145X
[19]
YEGANI M, KORVER D R. Factors affecting intestinal health in poultry[J]. Poultry Science, 2008, 87(10): 2052-2063. DOI:10.3382/ps.2008-00091
[20]
JANKOWSKI J, JUSKIEWICZ J, GULEWICZ K, et al. The effect of diets containing soybean meal, soybean protein concentrate, and soybean protein isolate of different oligosaccharide content on growth performance and gut function of young turkeys[J]. Poultry Science, 2009, 88(10): 2132-2140. DOI:10.3382/ps.2009-00066
[21]
李丽平, 邱伟海. 万寿菊提取物对肉鸡生长性能、色素沉积、抗氧化和肉质的影响[J]. 中国饲料, 2020(8): 51-55.
LI L P, QIU W H. Effects of marigold extract on growth performance, pigment deposition, antioxidant and meat quality of broiler chickens[J]. China Feed, 2020(8): 51-55 (in Chinese).
[22]
阿仑. 叶黄素对鹌鹑生长及免疫机能影响的研究[D]. 硕士毕业论文. 北京: 中国农业科学院, 2009. A L.
Study of dietary lutein on growth performance and immune functions of quails[D]. Master's Thesis. Beijing: The Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2009. (in Chinese)
[23]
MORAES M L, RIBEIRO A M L, SANTIN E, et al. Effects of conjugated linoleic acid and lutein on the growth performance and immune response of broiler chickens[J]. Poultry Science, 2016, 95(2): 237-246. DOI:10.3382/ps/pev325
[24]
郭俊杰, 季绍东, 邹世杰, 等. 不同类型叶黄素对高温条件下黄羽肉鸡生长性能及着色效果的影响[J]. 中国畜牧杂志, 2021, 57(3): 151-155.
GUO J J, JI S D, ZOU S J, et al. Effects of different types of lutein on growth performance and pigmentation of yellow-feathered broilers in high temperature environment[J]. Chinese Journal of Animal Science, 2021, 57(3): 151-155 (in Chinese).
[25]
王文龙, 冯永兵, 李成成, 等. 几种叶黄素方剂对高温高湿环境中蛋鸡行为和生产性能的影响[J]. 河南农业科学, 2015, 44(3): 133-138.
WANG W L, FENG Y B, LI C C, et al. Effects of several MAR mixture compounds on behavior and production performance of laying hens in high temperature and humidity environment[J]. Journal of Henan Agricultural Sciences, 2015, 44(3): 133-138 (in Chinese).
[26]
安立龙, 杨京京, 李泽英, 等. 叶黄素-中药合剂对热应激蛋鸡行为与生产性能的影响[J]. 家畜生态学报, 2014, 35(7): 21-26.
AN L L, YANG J J, LI Z Y, et al. Influence of lutein-traditional Chinese medicine on production performance and behavior of laying hens at high environmental temperature[J]. Journal of Domestic Animal Ecology, 2014, 35(7): 21-26 (in Chinese). DOI:10.3969/j.issn.1673-1182.2014.07.005
[27]
KAMBOH A A, ZHU W Y. Individual and combined effects of genistein and hesperidin on immunity and intestinal morphometry in lipopolysacharide-challenged broiler chickens[J]. Poultry Science, 2014, 93(9): 2175-2183. DOI:10.3382/ps.2014-03971
[28]
张子琪, 吴旻, 兰海楠, 等. 虾青素对LPS诱导的小鼠急性肠道炎症反应的影响[J]. 中国免疫学杂志, 2019, 35(7): 840-844.
ZHANG Z Q, WU M, LAN H N, et al. Effects of astaxanthin on acute intestinal inflammation in LPS-induced mice[J]. Chinese Journal of Immunology, 2019, 35(7): 840-844 (in Chinese). DOI:10.3969/j.issn.1000-484X.2019.07.014
[29]
CSERNUS B, BIRÓ S, BABINSZKY L, et al. Effect of carotenoids, oligosaccharides and anthocyanins on growth performance, immunological parameters and intestinal morphology in broiler chickens challenged with Escherichia coli lipopolysaccharide[J]. Animals, 2020, 10(2): 347. DOI:10.3390/ani10020347
[30]
O'HARA A M.SHANAHAN F. The gut flora as a forgotten organ[J]. EMBO Reports, 2006, 7(7): 688-693. DOI:10.1038/sj.embor.7400731
[31]
WEI S, MORRISON M, YU Z. Bacterial census of poultry intestinal microbiome[J]. Poultry Science, 2013, 92(3): 671-683. DOI:10.3382/ps.2012-02822
[32]
AHIR V B, KORINGA P G, BHATT V D, et al. Metagenomic analysis of poultry gut microbes[J]. Indian Journal of Poultry Science, 2010, 45(2): 111-114.
[33]
OAKLEY B B, LILLEHOJ H S, KOGUT M H, et al. The chicken gastrointestinal microbiome[J]. FEMS Microbiology Letters, 2014, 360(2): 100-112. DOI:10.1111/1574-6968.12608
[34]
HOOPER L V. Bacterial contributions to mammalian gut development[J]. Trends in Microbiology, 2004, 12(3): 129-134. DOI:10.1016/j.tim.2004.01.001
[35]
MADIGAN M T, BENDER K S, BUCKLEY D H, et al. Brock biology of microorganisms[M]. 15th ed. New York: Pearson, 2018.
[36]
CARVALHO F A, KOREN O, GOODRICH J K, et al. Transient inability to manage proteobacteria promotes chronic gut inflammation in TLR5-deficient mice[J]. Cell Host & Microbe, 2012, 12(2): 139-152.
[37]
MENG Q W, SUN S S, LUO Z, et al. Maternal dietary resveratrol alleviates weaning-associated diarrhea and intestinal inflammation in pig offspring by changing intestinal gene expression and microbiota[J]. Food & Function, 2019, 10(9): 5626-5643.
[38]
张雪艳. 不同丁酸盐对蛋鸡生产性能、养分代谢率、蛋品质及肠道微生物影响的研究[D]. 硕士学位论文. 郑州: 河南农业大学, 2007: 35-37.
ZHANG X Y. Studies on the effects of butyrate salts on performance, nutrients metabolism ratio, egg quality and microbial population of laying hens[D]. Master's Thesis. Zhengzhou: Henan Agricultural University, 2007: 35-37. (in Chinese)
[39]
JENQ R R, TAUR Y, DEVLIN S M, et al. Intestinal Blautia is associated with reduced death from graft-versus-host disease[J]. Biology of Blood and Marrow Transplantation, 2015, 21(8): 1373-1383. DOI:10.1016/j.bbmt.2015.04.016
[40]
DANZEISEN J L, KIM H B, ISAACSON R E, et al. Modulations of the chicken cecal microbiome and metagenome in response to anticoccidial and growth promoter treatment[J]. PLoS One, 2011, 6(11): e27949. DOI:10.1371/journal.pone.0027949
[41]
SERGEANT M J, CONSTANTINIDOU C, COGAN T A, et al. Extensive microbial and functional diversity within the chicken cecal microbiome[J]. PLoS One, 2014, 9(3): e91941. DOI:10.1371/journal.pone.0091941