2. 中国科学院大学, 北京 100049;
3. 西藏自治区农牧科学院畜牧兽医研究所, 拉萨 850000;
4. 中山市能和生物科技有限公司, 中山 528415;
5. 沈阳农业大学乡村振兴战略研究院, 沈阳 110866
2. University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China;
3. Institute of Animal Science, Tibet Academy of Agricultural and Animal Husbandry Sciences, Lhasa 850000, China;
4. Zhongshan Nenghe Biotechnology Co., Ltd., Zhongshan 528415, China;
5. Rural Revitalization Strategy Research Institute, Shenyang Agricultural University, Shenyang 110866, China
西藏地区高寒、低氧，基础物资十分匮乏，酥油(主要成分为乳脂)含有多种营养物质，是藏族人民的生活必需品。2019年，西藏自治区奶牛存栏约44.02万头，但产奶量仅为42.39万t，鲜奶缺口约7.59万t，奶牛品种原始以及单产不足的问题已严重制约西藏地区奶业发展。对此，西藏地区自2014年开始引进区外良种奶牛，但实际生产中发现，高海拔低氧环境中的良种奶牛易出现脂质和糖类代谢紊乱等问题，从而导致高原病的产生和恶化[1]。高原病常见于海拔2 000 m以上地区的奶牛群体，氧气浓度降低诱发奶牛肺动脉高压，进而导致胸部水肿和心衰竭等病变影响机体健康。研究表明，引进到拉萨地区的荷斯坦奶牛高原病致死率为36.72%，并且冬季空气中氧浓度降低与奶牛高死亡率存在相关性[2]，严重阻碍西藏地区奶业发展，因此防控奶牛高原病，提升其适应性尤为重要。
精氨酸(Arg)作为一种条件性必需氨基酸和多功能性氨基酸，不仅可以调控乳腺上皮细胞增殖以及酪蛋白合成过程，而且在精氨酸酶作用下可水解成尿酸和鸟氨酸，参与多胺的合成[3]。除此之外，作为体内合成一氧化氮(NO)的唯一前体，Arg可通过多环鸟苷-3’, 5’-单磷酸依赖通路促进线粒体的氧化磷酸化反应，从而调节动物机体的葡萄糖、脂肪酸和氨基酸代谢[4]。但Arg直接添加到饲粮中，不仅成本高，而且易与赖氨酸在转运系统以及代谢通路中产生拮抗反应[5]。N-乙酰谷氨酸(N-acetylglutamate，NAG)是一种氨基酸衍生物，可通过激活氨基甲酰磷酸合酶-Ⅰ(CPS-Ⅰ)促进氨基甲酰磷酸合成，促进L-脯氨酸和谷氨酸转化为L-瓜氨酸，在天冬氨酸以及精氨酸代琥珀酸裂解酶的参与下，最终转化成L-Arg[6]。N-氨甲酰谷氨酸(N-carbamylglutamate，NCG)作为NAG的结构类似物，其功能与NAG相似，而且在机体代谢中稳定性较强，可以参与尿素循环来促进内源性Arg生成。Chacher等[7]通过24 h体外发酵试验发现，相比于Arg在瘤胃液环境中完全降解，NCG降解率仅为17.8%。因此，NCG作为稳定高效的添加剂，其在奶牛生产中的应用受到广泛关注。
Chacher等[8]研究发现，高产奶牛饲粮中添加20 g/d NCG时，乳、血浆和尿液中的尿素氮含量达到最低值，代谢蛋白质利用率提高。从围产前期开始饲喂NCG可以促进奶牛机体内源性Arg合成，显著提高乳腺血浆流量和氨基酸含量，改善围产后期奶牛肝脏功能和干物质采食量(DMI)[9]。Gu等[10]在泌乳中期奶牛饲粮中添加40 g/(头·d)NCG时，乳脂和乳蛋白含量分别提高7.89%和3.31%，血浆中内源性Arg合成的增强导致必需氨基酸和生糖氨基酸总量提高，使得乳品质得到明显改善。另有学者发现，NCG在围产期奶牛中应用效果最佳，其次为泌乳高峰期、泌乳早期和泌乳中期[11]。然而, NCG在奶牛上的研究主要集中在低海拔地区泌乳期和围产期奶牛上，针对NCG在高海拔低氧环境中奶牛的研究比较少见。
在高海拔低氧环境中，奶牛抗炎症以及葡萄糖和脂质代谢相关基因表达下调，盲肠与结肠中厚壁菌门/拟杆菌门降低，导致机体糖类和脂类代谢异常，能量供应不足，同时诱发奶牛体内炎症反应，加剧高原病恶化[1]。因此，奶牛转移到高原环境后需要提高其血液供氧能力，预防心血管系统障碍及其诱发的其他系统疾病，保障奶牛机体健康以维持正常泌乳水平。作为高效的血管舒张因子，NO早已被证实可抑制肺动脉血管收缩，提升高原肺水肿大鼠的存活率[12]。NCG可以促进内皮型一氧化氮合酶(endothelial nitricoxide synthase，eNOS)的合成，增加血浆中NO含量，进而改善肺血管壁结构，有效降低奶牛肺血管压力和心脏负荷[13]。因此，本研究旨在评价在泌乳期奶牛饲粮中添加NCG对奶牛养分表观消化率、泌乳性能、血清抗氧化以及抗高原反应指标的影响，为提升高海拔地区泌乳奶牛的生产性能提供科学依据和数据支持。
1 材料与方法 1.1 试验动物与试验设计试验选择20头泌乳前期荷斯坦奶牛×西藏黄牛杂交第3代奶牛[胎次2.0±0.7，体重(413±42) kg，体况评分3.36±0.26]，随机分为2组，每组10头。对照组(CON组)饲喂基础饲粮，试验组(NCG组)在基础饲粮中添加20 g/(头·d)NCG(中山市某生物科技有限公司，含量≥80%)。试验期45 d，其中预试期15 d，正试期30 d。试验于2021年6月12日至2021年7月25日在西藏自治区山南市巴桑奶牛养殖专业合作社(海拔3 700 m)进行。
1.2 饲粮与饲养管理基础饲粮为合作社固定饲粮，以精料混合料以及粗饲料形式(精∶粗=1 ∶ 9)分开饲喂，基础饲粮组成及营养水平如表 1所示。试验奶牛采用栓系式饲养，饲喂前将NCG与精料混合料预混合，然后与1/3粗饲料进行混合饲喂，每天饲喂2次(07:00和18:00)，挤奶2次(06:30和17:00)，奶牛自由采食及饮水，剩料量控制在3%~5%，称取每日给料量和剩料量，用于计算DMI。
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表 1 基础饲粮组成及营养水平(干物质基础) Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (DM basis) |
在正试期第28~30天，采用直肠取粪法连续收集2组奶牛粪样6次，最后将每头牛的粪样均匀混合后取200 g左右，按照1/4粪重比例加入10%的酒石酸进行固氮，用于测定粪中养分和酸不溶灰分(AIA)含量。将饲粮和粪便样品置于65 ℃烘箱干燥72 h后，取出样品自然回潮24 h，随后将样品放入105 ℃烘箱直至恒重，取200 g样品粉碎后通过1 mm筛。饲粮和粪便中干物质(DM)、粗蛋白质(CP)、粗脂肪(EE)和粗灰分含量分别按照GB/T 6435—2014、GB/T 6432—2018、GB/T 6433—2006、GB 6438—2007方法进行测定，钙(Ca)含量按照GB/T 6436—2002的高锰酸钾法进行测定，磷(P)含量按照GB/T 6437—2002的分光光度法进行测定，中性洗涤纤维(NDF)和酸性洗涤纤维(ADF)含量分别按照GB/T 20806—2006和NY/T 1459—2007的方法进行测定。参照Van Keulen等[14]提供的方法，利用粪和饲粮中的AIA做内源指示剂，计算养分表观消化率，计算公式如下:
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式中：Ad和Af分别为饲粮和粪中的AIA含量(g/kg)；Nd和Nf分别为饲粮和粪中某养分含量(g/kg)。
1.3.2 乳品质在正试期第30天，在挤奶时间点分别采集奶样1次，将早、晚采集的奶样按5 ∶ 5混合，取50 mL加重铬酸钾防腐剂混合均匀，样品使用Milko Scan FT+200 76150型多功能乳成分分析仪(丹麦Foss Electric公司)进行检测，测定指标包括乳蛋白率、乳脂率、乳糖率及乳尿素氮、总固形物以及非脂乳固体含量，乳体细胞数量使用Fossomatic FC 79910体细胞分析仪(丹麦Foss Electric公司)测定。4%乳脂校正乳(FCM)产量计算公式[15]如下:
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式中：M为产奶量；F为乳脂率。
1.3.3 瘤胃发酵参数在正试期第30天，在试验奶牛喂后2和6 h，使用MDW-15型胃管式瘤胃液采样器(中国上海硅狄科学仪器有限公司)通过奶牛口腔采集瘤胃液。将采集的瘤胃液装入10 mL离心管，使用UB-7型pH计(美国Denver Instrument公司)测定瘤胃液pH后，迅速放入-20 ℃冰箱保存，用于测定瘤胃液中氨态氮(NH3-N)含量。另取瘤胃液，4 ℃下15 000×g离心10 min，取上清液1.5 mL，加入0.15 mL 25%偏磷酸固定后置于-20 ℃冰箱保存，用于测定总挥发性脂肪酸(TVFA)及各挥发性脂肪酸(VFA)含量，瘤胃液中NH3-N和VFA含量分别参照Wang等[16]和Weatherburn等[17]方法测定。瘤胃液中微生物蛋白质(MCP)含量使用紫外分光光度计(UV1901，波长：260 nm)参照Zinn等[18]分光光度法进行测定。
1.3.4 血清生化与抗氧化指标在正试期第29~30天，连续2 d于晨饲前使用真空采血管进行尾根静脉采血10 mL，4 ℃下2 040×g离心15 min，取2 mL上层血清于离心管中，置于-20 ℃冰箱保存。
血清生化指标：血清葡萄糖(GLU)、白蛋白(ALB)、尿素氮(UN)、甘油三酯(TG)、总胆固醇(TCHO)含量和谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)活性采用CX-4型全自动生化分析仪(美国Beckman公司)测定，所用试剂盒均购自南京建成生物工程研究所。
血清抗氧化指标：血清过氧化氢酶(CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、超氧化物歧化酶(SOD)活性分别采用相应的酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒(中国江苏酶免实业有限公司)测定，测定方法参照试剂盒说明书；血清丙二醛(MDA)含量和总抗氧化能力(T-AOC)采用北京盒子生工科技有限公司对应试剂盒测定，测定方法参照试剂盒说明书；活性氧(ROS)含量采用荧光探针DCFH-DA技术进行检测，所用试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司。
1.3.5 血清抗高原反应因子血清促红细胞生成素(EPO)、低氧诱导因子-1(HIF-1)、血管内皮生长因子(VEGF)、内皮素-1(ET-1)、C型利钠肽(CNP)含量和血管紧张素转化酶(ACE)、eNOS、诱导型一氧化氮合酶(iNOS)活性分别使用相应的ELISA试剂盒(中国江苏酶免实业有限公司)测定，测定方法参照试剂盒说明书；血清NO含量采用北京盒子生工科技有限公司对应试剂盒测定，测定方法参照试剂盒说明书。
1.4 数据统计分析数据经Excel 2010初步处理，使用SPSS 26.0软件中的独立样本t检验进行组间差异显著性比较，P < 0.05和0.05≤P < 0.10分别表示具有显著差异和差异趋势，结果以平均值和均值标准误(SEM)表示。
2 结果 2.1 DMI和养分表观消化率由表 2可知，NCG组4% FCM和饲料转化率比CON组分别提高39.35%和54.16%(P < 0.05)，但NCG组和CON组DM、CP、EE、NDF、ADF表观消化率以及DMI均无显著差异(P>0.05)。
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表 2 NCG对奶牛DMI和养分表观消化率的影响 Table 2 Effects of NCG on DMI and nutrient apparent digestibility of dairy cows |
由表 3可知，NCG组产奶量和乳总固形物含量显著高于CON组(P＜0.05)，CON组乳糖率相较于NCG组具有升高的趋势(0.05＜P＜0.10)，NCG组与CON组间乳脂率、乳蛋白率、乳尿素氮含量、乳体细胞数量以及非脂乳固体含量均无显著差异(P>0.05)，但NCG组乳尿素氮含量相较于CON组降低19.61%，乳脂率相较于CON组提高8.53%。
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表 3 NCG对奶牛泌乳性能的影响 Table 3 Effects of NCG on milk performance of dairy cows |
由表 4可知，与CON组相比，NCG组瘤胃液NH3-N含量降低38.11%(P＜0.05)，同时MCP含量提高12.43%(P＜0.05)，异戊酸含量显著降低(P＜0.05)，异丁酸含量具有降低的趋势(P= 0.07)，而乙酸/丙酸具有升高的趋势(P=0.07)。2组试验奶牛瘤胃液TVFA、乙酸、丙酸、丁酸、戊酸含量以及pH均无显著差异(P>0.05)。
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表 4 NCG对奶牛瘤胃发酵参数的影响 Table 4 Effects of NCG on rumen fermentation parameters of dairy cows |
由表 5可知，与CON组相比，NCG组血清TCHO含量和ALT活性分别降低25.78%和15.62%(P＜0.05)，TG含量显著升高(P＜0.05)，2组间血清GLU、ALB、UN含量和AST活性均无显著差异(P>0.05)。
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表 5 NCG对奶牛血清生化指标的影响 Table 5 Effects of NCG on serum biochemical indices of dairy cows |
由表 6和图 1可知，与CON组相比，NCG组血清GSH-Px、SOD活性以及T-AOC显著升高(P＜0.05)，同时血清MDA含量显著降低(P＜0.05)，ROS含量显著降低(P＜0.05)，2组间血清CAT活性无显著差异(P>0.05)。
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表 6 NCG对奶牛血清抗氧化指标的影响 Table 6 Effects of NCG on serum antioxidant indices of dairy cows |
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* 表示与CON组相比差异显著(P < 0.05)。 * mean significant difference compared with the CON group (P < 0.05). 图 1 NCG对奶牛血清ROS含量的影响 Fig. 1 Effects of NCG on serum ROS content of dairy cows |
由表 7可知，NCG组血清VEGF、NO含量以及eNOS、iNOS活性显著高于CON组(P＜0.05)，2组间血清EPO、HIF-1、ACE、ET-1和CNP含量无显著差异(P>0.05)。
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表 7 NCG对奶牛血清抗高原反应因子含量的影响 Table 7 Effects of NCG on serum altitude response factor contents of dairy cows |
在海拔3 600 m左右的拉萨地区，大气中氧分压仅为海平面的60%，奶牛由于供氧不足导致心率增加，平均呼吸频率和血氧饱和度低于健康水平，平均肺动脉压力陡增至健康水平近2倍，奶牛的生理机能面临严峻考验[1]。Qiao等[19]研究表明，高原地区的泌乳前期中国荷斯坦奶牛平均DMI为16.08 kg，而且DMI以及各养分消化率与低海拔地区奶牛相比无显著差异。与此同时，任利圆[20]在平原地区饲喂奶牛不同剂量NCG发现，各养分表观消化率相较对照组有所增加但差异不显著。本试验中，2组奶牛DMI以及各养分表观消化率无显著差异，这可能是因为饲粮粗纤维水平较高，奶牛采食后瘤胃降解速率降低，容易产生饱腹感[21]。这些数据表明，奶牛对饲粮养分的消化吸收作用受海拔因素影响较小，并且在高纤维饲粮水平下，NCG对奶牛采食量无显著增加效果。Cieslar等[22]研究发现，作为NCG代谢通路上的重要信号分子，NO可通过作用于环状鸟苷酸促进血管平滑肌松弛，增加奶牛乳腺血浆流量，促进乳腺血管增生从而增加产奶量，推测为本试验中NCG组奶牛4% FCM显著提升的原因之一，同时与下文中NCG提升奶牛泌乳性能的试验结果一致。
3.2 NCG对奶牛泌乳性能的影响高原环境中氧气浓度低，而乳腺分泌乳汁能量需求较大，由此乳腺主要功能方式转化为无氧呼吸，易诱导乳腺细胞癌变和分化[23]，泌乳性能随之受到影响。前人研究表明，荷斯坦奶牛在高原习服1年后，产奶量和乳蛋白率分别降低19.20%和4.22%，泌乳性能在低氧环境中受到抑制[24]。而董旭晟等[25]发现，在围产期奶牛饲粮中添加NCG可分别提升4% FCM产量和乳蛋白率13.08%和6.46%以上，且围产后期添加NCG的作用效果优于围产前期。本试验中，补充NCG提高了奶牛产奶量和总固形物含量，有效降低乳尿素氮含量，奶牛的氮素利用率得到改善，这可能是Arg参与机体氮素运输、储存、排泄以及尿素循环的结果。在精氨酸酶的作用下，Arg转化为鸟氨酸进入线粒体促进尿素循环，合成更多含氮化合物参与MCP以及乳蛋白合成[8]。同时NCG可提高奶牛血液中性粒细胞关键功能基因的表达，改善机体免疫系统的吞噬杀菌功能[11]，因此，本试验中NCG组牛乳中体细胞数量相较于CON组减少9.10%。除此之外，NCG可通过激活细胞线粒体内的CPS-Ⅰ促进氨甲酰磷酸合成，转移至细胞质中进一步生成Arg及相关代谢产物，提升牛奶中Arg、脯氨酸和天冬氨酸含量[9]。丁洛阳[26]研究表明，NCG可通过“Arg-鸟氨酸-腐胺”代谢途径调控乳腺上皮细胞合成酪蛋白。因此，后续试验可进一步分析牛奶中各氨基酸以及蛋白质组分，为提升高海拔地区奶牛的乳品质提供数据支撑。
3.3 NCG对奶牛瘤胃发酵参数的影响研究表明，高海拔低氧环境会影响奶牛瘤胃微生物区系，降低瘤胃球菌属和短杆真菌属丰度，导致机体能量供应不足以及抗炎症作用减弱，加速奶牛高原病的产生[1]。瘤胃液pH是体现瘤胃内发酵状况的重要指标，本试验中，2组试验奶牛瘤胃液pH均处于正常范围(6.0~7.0)内[27]，因此，在饲粮中添加NCG对奶牛瘤胃正常发酵无显著影响。瘤胃微生物利用内源和外源含氮物质代谢产生的NH3-N是合成MCP的主要原料，瘤胃内NH3-N以及MCP含量可反映微生物合成蛋白质的效率[28]。研究发现，饲粮中添加NCG可有效促进奶牛尿素循环，显著提升微生物利用NH3-N合成MCP的效率，并且满足奶牛泌乳活动的能量需求[29]。本试验结果表明，NCG组奶牛瘤胃微生物对NH3-N的利用程度显著高于CON组，这可能是因为NCG促进瘤胃上皮细胞和十二指肠细胞吸收NH3-N，为合成MCP提供充足氮源，减少NH3-N降解导致的氮源损失[30]。
在瘤胃上皮组织中，VFA通过被动扩散、VFA-以及HCO3-阴离子交换等途径进入机体血液循环，为反刍动物提供70%以上的代谢能，并且刺激瘤胃上皮细胞和乳头形态学发育[31]。本试验中，2组试验奶牛TVFA以及各主要VFA含量未出现显著差异，但NCG组奶牛乙酸/丙酸具有显著升高的趋势。更多的乙酸与β-羟丁酸反应合成脂肪酸进而促进乳脂合成[32]，这也导致本研究中NCG组奶牛乳脂率相较于CON组增加8.53%，而补充NCG改变瘤胃液乙酸/丙酸的机理有待进一步探究。
3.4 NCG对奶牛血清生化指标的影响作为血清中的主要脂类物质，TG和CHOL能够反映机体吸收和代谢脂肪的状况。血清GLU可促进奶牛乳腺上皮细胞增殖，增加酪蛋白和哺乳动物雷帕霉素靶蛋白等基因表达量，改善乳腺上皮细胞对GLU的摄取能力[33]，健康动物体内GLU含量保持动态平衡。姚琨[1]研究表明，患有高原病的奶牛体内Lcat、Apoc4和Rbp4等脂类、淀粉以及GLU代谢相关基因表达下调，导致机体糖酵解紊乱以及能量供应不足。本试验中，NCG组奶牛的血清CHOL含量相较于CON组降低25.77%，同时GLU含量有所增加，这说明补充NCG可促进奶牛肝脏糖异生代谢过程，协助氨基酸代谢并且对预防代谢性酸中毒具有重要作用。
肝脏细胞内ALT和AST贮存量较高，当肝脏细胞受损时，细胞膜通透性增加导致ALT和AST释放进入血液，因此可作为肝脏功能的评价指标[34]。本试验结果表明，NCG组奶牛血清ALT显著低于CON组，表明肝脏的生理功能得到改善，因此NCG对于高海拔低氧环境中奶牛的肝脏细胞具有良好的修复效果。白蛋白可稳定体内血浆渗透压、协助运输代谢物质，转化为组织蛋白后可参与组织生长以及受损组织修复。本试验中，2组试验奶牛血清ALB含量无显著差异，结合DMI以及CP表观消化率数据，说明NCG对奶牛消化吸收饲粮蛋白质无负面影响。
3.5 NCG对奶牛血清抗氧化指标的影响Pena等[35]研究发现，低氧低压可诱发机体氧化应激，增加体内ROS和MDA含量，并通过相关炎症途径诱发高原肺水肿和脑水肿等高原病，揭示了氧化应激与高原病的相关性。
本试验结果表明，饲粮中添加NCG可显著提升血清GSH-Px和SOD活性以及T-AOC，血清中MDA和ROS含量分别降低31.63%和12.99%，奶牛抗氧化能力得到增强，机体氧化代谢维持动态平衡状态。NCG进入体内后，可通过提升抗氧化基因表达以及核因子红系2-相关因子2、Kelch样环氧氯丙烷相关蛋白-1和哺乳动物雷帕霉素靶蛋白等信号分子的含量，有效缓解脾脏氧化应激以及炎症反应[36]。赵相洋等[37]研究表明，NCG可通过转化成Arg抑制体内脂质氧化过程来降低MDA含量，同时下游产物NO也可中和血液中ROS，且饲粮中添加20 g/(头·d)NCG对机体抗氧化能力的提升效果最为明显。NCG组奶牛抗氧化性能得到提升，同时发生炎症反应以及高原病的概率降低，因此奶牛的泌乳性能和免疫性能得到保障，这与前人研究结果[10, 29]一致。
3.6 NCG对奶牛血清抗高原反应因子含量的影响研究发现，高原病奶牛血液中铁离子以及血细胞数含量显著降低，机体氧气输送能力大幅减弱，并且血管内膜结构受损进一步导致肺动脉高压和心脏衰竭等病变，难以适应高海拔低氧环境[1-2]。NOS包含iNOS、eNOS和神经型一氧化氮合成酶(nNOS)3种不同亚型，在NOS和四氢生物嘌呤的作用下，Arg代谢生成NO和瓜氨酸，NO可通过舒张血管平滑肌降低肺动脉血管阻力[38]。Wang等[12]研究发现，患有肺动脉高压的奶牛eNOS活性降低进而恶化病情，补充NCG可通过促进eNOS和内源性NO合成，降低奶牛平均肺动脉压力和外周收缩压力，对预防低氧环境下奶牛的心血管损伤发挥重要作用。本试验结果表明，NCG组奶牛血清eNOS、iNOS活性以及NO含量分别增加30.89%、31.45%和19.05%，说明试验奶牛摄取和转运NCG的能力未受到抑制，且NCG促进eNOS和iNOS表达的同时增加血清中NO含量，有利于维护奶牛心血管完整性，缓解高原适应症，改善奶牛体况以及生产性能。
作为一种高效的血管内皮细胞有丝分裂原和通透性因子，VEGF具有增强血管通透性、维持和重塑现有血管以及促进血管内皮细胞增殖等作用[39]。本试验结果表明，补充NCG可增加血清VEGF含量，促进低氧环境下奶牛体内新生毛细血管的形成，增强奶牛血液运输氧气的能力。ET-1是动物体内具有收缩血管功能的生物活性多肽，主要在肺部发挥收缩血管、促进腺体分泌和释放炎性介质等作用。本试验中，NCG组奶牛血清ET-1含量相比CON组增加12.25%，这可能是机体NO等舒张血管因子大量增加的原因导致ET-1含量代偿性增加，有利于血管压力保持动态平衡状态。
4 结论高海拔低氧环境中，NCG可提升瘤胃微生物对NH3-N的利用效率，有效减少奶牛体内氮源损失。同时，NCG可以维持机体GLU和脂质代谢平衡，改善奶牛肝脏代谢以及氮素循环，提高机体抗氧化以及免疫性能，降低炎症反应和高原病的发生概率。在奶牛体内，NCG可促进eNOS、iNOS、NO和VEGF等抗高原反应因子合成，不仅可通过促进乳腺血管增生来增加奶牛产奶量，而且可以维持心血管通道完整性，对缓解奶牛高原适应症具有重要意义。
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