动物营养学报  2013, Vol. 25 Issue (11): 2509-2514   PDF (1110KB)    
哺乳动物雷帕霉素靶蛋白对仔猪蛋白质沉积的调控
张柏林 , 张林, 于长宁, 林猛, 高峰 , 周光宏    
南京农业大学动物科技学院, 江苏省动物源食品生产与安全保障重点实验室, 南京 210095
摘要:哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)是存在于胞浆中的一种非典型丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,是mRNA翻译的主要调控因子,在感受营养信号、调节细胞增殖与生长中起着关键作用。mTOR复合物1(mTORC1)属于雷帕霉素敏感型,介导动物采食后蛋白质合成的增加,并通过调节真核起始因子4E结合蛋白1(4E-BP1)和核糖体蛋白S6激酶1(S6K1)活性而调控蛋白质的基因转录起始。本文综述了mTOR调控蛋白质沉积机制及其影响因素,为进一步研究mTOR对仔猪蛋白质沉积的调控提供依据。
关键词mTOR     仔猪     蛋白质沉积     影响因素    
Regulation of Protein Deposition by Mammalian Target of Rapamycin in Piglets
ZHANG Bolin , ZHANG Lin, YU Changning, LIN Meng, GAO Feng , ZHOU Guanghong    
College of Animal Science and Technology, Nanjing Agricultural University, Key Laboratory of Animal Origin Food Production and Safety Guarantee in Jiangsu Province, Nanjing 210095, China
Abstract: The mammalian target of rapamycin (mTOR) is a serine/threonine kinase in cytoplasm and a central regulator of mRNA translation that plays a critical role in sensing the signals of nutrients and regulating cell growth and proliferation. mTOR complex 1 (mTORC1) is more sensitive to rapamycin, which mediates the postprandial increase in muscle protein synthesis. Besides, it regulates the accumulation of protein by enhancing the activity of eukaryotic initiation factor 4E binding protein-1 (4E-BP1) and ribosomal protein S6 kinase 1 (S6K1) to promote translation initiation. This paper reviewed the regulation mechanisms of protein deposition by mTOR and its influencing factors, and provided certain references for further investigation on the regulation of mTOR in protein deposition of piglets.
Key words: mTOR     piglets     protein deposition     influencing factors    

哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)是存在于胞浆中的一种非典型丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,是细胞内调节蛋白质(包括淋巴细胞和骨骼肌)合成的一种蛋白激酶,属于磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)相关激酶家族[1],在感受营养信号、调节细胞生长与增殖中起着关键性作用[2, 3]。mTOR存在有mTOR复合物1(mTORC1)和mTOR复合物2(mTORC2)2种蛋白形式。mTORC1属于雷帕霉素敏感型蛋白,是调节细胞生长的主要控制体。过去十几年的研究也主要集中于mTORC1,而mTORC2能对雷帕霉素耐受。mTOR通路的调控分为上游调控和下游调控,上游效应因子有PI3K、蛋白激酶B(Akt或PKB)、结节性硬化复合物蛋白1/2(TSC1/TSC2)及Ras蛋白脑组织同源类似物(Rheb,一种5′-三磷酸鸟苷酸激酶,是mTORC1的激活剂);核糖体蛋白S6激酶1(S6K1)和真核起始因子4E结合蛋白1(4E-BP1)则是mTOR信号通路下游最重要的2个效应因子[4]。饲粮营养水平(如蛋白质及氨基酸水平)、活性分子和动物年龄等因素的变化均能引起mTORC1活性改变。激活后的mTORC1通过磷酸化P70核糖体蛋白S6激酶(P70S6K)及4E-BP1这2条不同的通路而影响下游转录因子的活性,进一步调控mRNA转录起始[5],从而对蛋白质转录起始过程产生影响。因此,mTOR调控是蛋白质生物合成的基础。

1 mTOR调控蛋白质沉积的分子机制

mTOR通过感受和整合有丝分裂原和营养素信号从转录和翻译水平上对蛋白质合成及核糖体生物合成进行调控,在细胞代谢和细胞增殖中发挥重要作用[4]。体内和体外试验均表明,氨基酸和胰岛素能够独立地通过mTOR途径而调控蛋白质合成[6, 7, 8]。胰岛素通过PI3K/Akt(PKB)/mTOR途径激活mTOR,进而激活其下游效应器。氨基酸则可能直接激活mTOR的效应分子或通过间接途径对mTOR通路起作用,从而调控蛋白质转录起始。

1.1 胰岛素对mTOR氮沉积调控的分子机制

胰岛素在调控蛋白质合成中发挥重要作用。与其他一些激素可能引起氨基tRNAs和mRNAs浓度不同,胰岛素主要通过其受体和信号传导途径在转录过程中发挥重要的作用。胰岛素通过PI3K级联反应影响mTORC1信号通路,与其受体结合激活细胞内的突变胰岛素受体酶解物(IRS1),进而活化PI3K,活化的PI3K激活PKB,而激活的PKB磷酸化TSC2,抑制TSC2 GTP酶激活蛋白活性,从而抑制TSC1/TSC2异源二聚体的形成[9],使Rheb与GTP结合而激活mTOR[10, 11]。活化的mTOR通过4E-BP1和S6K1这2条通路调节核糖体蛋白及翻译调节蛋白质的合成。一方面,mTOR通过磷酸化4E-BP1阻碍4E-BP1翻译起始因子4E(eIF4E)复合物(4E-BP1·eIF4E)的形成,使得eIF4E从4E-BP1·eIF4E复合物中释放出来,更多游离的eIF4E与真核翻译起始因子4G(eIF4G)结合参与形成具有活性的eIF4F复合物,从而启动翻译起始过程[12];另一方面,mTOR能够激活S6K1,而S6K1激活引起S6的磷酸化,进一步促进某些含有末端嘧啶mRNA的翻译过程[13]

1.2 氨基酸对mTOR氮沉积调控的分子机制

氨基酸对于mTORC1的激活是必需的,去除氨基酸尤其是支链氨基酸能够对mTOR信号通路产生抑制作用,并且添加其他激活因子也无法消除缺乏氨基酸所产生的对mTOR信号分子的抑制作用[14]。Blommaart等[15]最先研究发现,添加氨基酸抑制了肝细胞的降解,而且这种抑制作用与S6的磷酸化增加水平紧密相关,但在雷帕霉素的作用下,氨基酸的抑制作用被消除。后来的研究证实,氨基酸等营养素主要是利用相应的血浆膜蛋白转运载体及其他未知机制来对mTOR进行调控[4],进而影响细胞功能和细胞生长。在氨基酸缺乏的条件下,将导致mTOR下游效应因子S6K1及4E-BP1的去磷酸化,而重新添加氨基酸后,S6K1及4E-BP1重新磷酸化[1]。但氨基酸促进mTOR磷酸化的精确机制还未被阐释。

有关氨基酸对mTOR信号的上游激活途径还存在争议,主要集中在氨基酸是直接还是间接激活mTORC1通路。氨基酸并不通过PI3K而激活mTORC1已得到证实[16],但一些研究表明,氨基酸可能通过抑制TSC1/TSC2或通过刺激Rheb而激活mTOR。Gao等[17]研究表明,去除氨基酸会使TSC2失活,这表明氨基酸信号可能通过TSC1/TSC2而发挥作用。然而,另有研究表明TSC1/TSC2对于氨基酸激活mTORC1是非必需的[18],氨基酸激活mTOR并不依赖于TSC2。在TSC2缺乏的细胞中,去除氨基酸仍能导致mTOR的下游效应因子S6K1及4E-BP1的去磷酸化[19]。Rheb与mTOR的结合受足量氨基酸的调控,这提示氨基酸可能与Rheb发生作用而对mTOR进行调控[20]。但Smith等[19]的研究表明,氨基酸并不对Rheb与mTOR的结合进行调控。有趣的是,有研究者认为,hVPS34(Ⅲ类PI3K)可不依赖TSC1/TSC2/Rheb途径将可利用氨基酸传导给mTOR[21, 22]。这表明氨基酸可能直接作用于mTOR。因此,有关氨基酸对mTOR的上游效应因子的影响还需要进一步的研究。氨基酸对mTOR下游效应因子的影响与胰岛素对mTOR下游效应因子的调控相同,均是通过磷酸化S6K1及4E-BP1调节蛋白质合成。

2 影响mTOR调控仔猪蛋白质沉积的因素

饲粮蛋白质水平、氨基酸及胰岛素等活性因子对机体蛋白质沉积,包括组织细胞的生长和发育的影响主要是通过mTOR途径而实现的。当营养及胰岛素水平发生改变时,将引起mTOR活性的改变,进而调控其下游S6K1和4E-BP1等靶蛋白活性,从而影响着蛋白质的翻译、核糖体合成等代谢过程,改变细胞生长和增殖状态[23]。另外,动物饲粮、禁饲及重饲喂处理也影响着mTOR的活性,从而对其下游效应因子产生影响。

2.1 饲粮蛋白质水平

饲粮蛋白质水平影响动物体内蛋白质的转录起始。Deng等[24]以21日龄断奶仔猪为研究对象,分别饲喂蛋白质水平为20.7%、16.7%及12.7%的氨基酸平衡饲粮,结果发现随着饲粮蛋白质水平的降低,胰腺、肝脏、肾脏及骨骼肌等组织中蛋白质合成速率也随之下降。并且饲喂低蛋白质水平饲粮降低了仔猪骨骼肌和肝脏4E-BP1磷酸化水平,同时增加了4E-BP1·eIF4E复合物数量。Frank等[25]给2~7日龄仔猪饲喂高、中、低3种不同蛋白质水平的饲粮,发现与低蛋白质饲喂组仔猪相比,高、中蛋白质饲粮提高了仔猪背最长肌S6K1和4E-BP1磷酸化水平及背最长肌蛋白质合成速率,这与Torrazza等[26]的研究结果一致。饲粮蛋白质对仔猪蛋白质合成的调控可能是由于饲粮蛋白质水平的增加引起血浆胰岛素、支链氨基酸、葡萄糖含量增加[27],而胰岛素、支链氨基酸含量与调控蛋白质合成的起始因子活性具有一定的相关性,从而引起mTOR相关信号分子的磷酸化增加,进而增加机体蛋白质合成。

2.2 氨基酸水平

人们对可利用氨基酸尤其是支链氨基酸对mTOR信号通路及蛋白质代谢开展了大量的研究[28]。体外研究表明,胞外氨基酸的可利用性调节了蛋白质合成速率。支链氨基酸尤其是亮氨酸能够刺激肌肉的蛋白质合成,在mTOR介导的蛋白质合成途径中发挥重要作用。在培养介质中去除亮氨酸引起了mTOR通路相关信号分子的快速失活[29]。Escobar等[30]向7日龄和26日龄仔猪颈动脉中注入亮氨酸后发现,与对照组(生理盐水注射组)相比,血浆胰岛素含量并没有显著变化,但亮氨酸注射后显著增加了骨骼肌4E-BP1的磷酸化水平,极显著降低了非活化4E-BP1·eIF4E复合物数量,骨骼肌中活性eIF4G·eIF4E复合物的数量极显著增加。Suryawan等[5]的研究也得到了相似的结论,他们发现向禁饲过夜仔猪颈动脉注入亮氨酸后显著增加了骨骼肌蛋白质合成速率,同时增加了mTOR的磷酸化水平和骨骼肌中S6K1及4E-BP1的磷酸化水平。

精氨酸是新生仔猪的必需氨基酸。增加饲粮中精氨酸供给或提高内源性精氨酸合成均可提高骨骼肌中蛋白质沉积,并且精氨酸可以增加新生仔猪小肠蛋白质合成[31],激活小肠上皮细胞mTOR和相关激酶介导的信号通路。在饲喂以乳粉为基础饲粮的乳猪饲粮中添加0.6%的精氨酸增加了仔猪骨骼肌蛋白质合成速率、活性eIF4G·eIF4E复合物的数量,降低了非活性eIF4E·4E-BP1复合物数量,同时增加了mTOR及4E-BP1的磷酸化水平[32]

除亮氨酸和精氨酸外,谷氨酰胺也调节了机体细胞(包括淋巴细胞和骨骼肌细胞)的蛋白质合成。Xi等[33]在含猪肠道上皮细胞的培养液中添加0、0.5、2.0 mmol/L谷氨酰胺,研究其对肠道上皮细胞蛋白质合成及其作用机制。结果显示,0.5和2.0 mmol/L谷氨酰胺添加刺激了上皮细胞的蛋白质合成。与此同时,0.5和2.0 mmol/L谷氨酰胺增加了4E-BP1和S6K1的磷酸化水平。氨基酸对mTOR信号介导的蛋白质沉积产生影响是由于氨基酸不仅是蛋白质合成的前体,而且作为信号分子通过细胞内信号转导途径而激活蛋白质合成[34]

2.3 胰岛素水平

胰岛素是调控动物骨骼肌蛋白质合成的重要因子。以仔猪为动物模型的研究表明,仔猪采食后蛋白质合成的增加与血浆中胰岛素的含量呈正相关[35]。将仔猪进行饥饿处理12 h后,通过颈动脉注入与采食后水平相当的外源胰岛素研究其对骨骼肌合成及机制的影响发现,胰岛素显著增加了背最长肌的蛋白质合成速率。而且,注入胰岛素后显著增加了活性eIF4G·eIF4E复合物的数量,降低了非活性eIF4E·4E-BP1数量,同时仔猪背最长肌mTOR、S6K1及4E-BP1的磷酸化水平均增加,但对真核延长因子2(eEF2)的磷酸化水平没有影响[8]。O’Connor等[36]以新生仔猪为模型,利用胰岛素-葡萄糖夹技术注入不同浓度的氨基酸和葡萄糖,使仔猪体内氨基酸和葡萄糖保持在采食和饥饿状态。通过颈动脉注入胰岛素使血浆胰岛素含量维持在30 μU/mL发现,无论采食或饥饿状态下仔猪骨骼肌S6K1及4E-BP1的磷酸化水平均显著提高,同时eIF4E与eIF4G的结合也大大增加。

2.4 其他因素

采食能够刺激新生动物几乎所有组织器官尤其是骨骼肌的蛋白质合成,这可以归结为采食后机体胰岛素和氨基酸的含量增加,但这种调控作用随动物生长发育而降低[36, 37]。Escobar等[30]通过比较氨基酸对7日龄和26日龄仔猪骨骼肌蛋白质合成影响的研究发现,向7日龄仔猪颈动脉注入亮氨酸后增加了4E-BP1的磷酸化水平及eIF4G·eIF4E复合物数量,降低了4E-BP1·eIF4E复合物数量;但对26日龄仔猪进行相同的处理,仅增加了4E-BP1的磷酸化水平及降低了4E-BP1·eIF4E复合物数量,但对eIF4G·eIF4E复合物数量没有影响。并且7日龄仔猪与26日龄仔猪比较而言,7日龄仔猪骨骼肌蛋白质合成速率增加60%,而26日龄仅为40%,即随着仔猪日龄的增长,氨基酸对骨骼肌蛋白质合成速率及蛋白质合成效应因子活性的调控作用减弱[38]。以上研究表明相关蛋白信号分子的日龄依赖性导致了其起始速率降低,从而影响了蛋白质合成。

禁饲抑制了蛋白质合成,而饲喂刺激了骨骼肌蛋白质的快速合成。对禁饲24 h仔猪进行重新饲喂后,蛋白质合成速率增加[37],但在采食后90~120 min时饲喂对蛋白质合成的刺激效应下降[39]。将禁饲过夜的5~7日龄仔猪重新饲喂30 min后增加了骨骼肌mTOR、S6K1及4E-BP1的磷酸化水平,并一直保持至120 min[40]。可见,保持适当的进食次数对于维持仔猪较快的蛋白质合成速率是必需的。

3 小 结

综上所述,mTOR信号通路能够整合营养素、活性因子等因素而对仔猪生长代谢等生理功能进行调控,使新生仔猪能够高效地利用饲粮氮而进行体内蛋白质的沉积。但mTOR是直接还是间接感受氨基酸所产生的信号还未被阐明,有待于进一步的体外试验研究证实。现在有关氨基酸通过mTOR对仔猪蛋白质沉积影响的研究主要集中在亮氨酸和精氨酸方面,而其他功能性氨基酸(如谷氨酰胺)对仔猪mTOR蛋白质沉积机制影响的报道则相对较少。因此,从分子和细胞学水平上揭示谷氨酰胺等功能性氨基酸对仔猪mTOR通路的影响机制及对组织器官蛋白质沉积的调控具有非常重要的意义。

参考文献
[1]HAY N,SONENBERG N.Upstream and downstream of mTOR[J]. Genes & Development,2004,18(16):1926-1945. (2)
[2]王蕾,刘坚,侯永清,等.α-酮戊二酸对LPS慢性应激仔猪小肠黏膜形态与功能的影响[J]. 畜牧兽医学报,2010, 41(1):46-52. (1)
[3]LIEBERTHAL W,LEVINE J S.Mammalian target of rapamycin and the kidney.Ⅰ.The signaling pathway[J]. American Journal of Physiology:Renal Physiology,2012,303(1):F1-F10. (1)
[4]YANG X,YANG C,FARBERMAN A,et al.The mammalian target of rapamycin-signaling pathway in regulating metabolism and growth[J]. Journal of Animal Science,2008,86(Suppl. 14):E36-E50. (3)
[5]SURYAWAN A,JEYAPALAN A S,ORELLANA R A,et al.Leucine stimulates protein synthesis in skeletal muscle of neonatal pigs by enhancing mTORC1 activation[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2008,295(4):E868-E875. (2)
[6]DAVIS T A,FIOROTTO M L,BURRIN D G,et al.Stimulation of protein synthesis by both insulin and amino acids is unique to skeletal muscle in neonatal pigs[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2002,282(4):E880-E890. (1)
[7]O'CONNOR P M,BUSH J A,SURYAWAN A,et al.Insulin and amino acids independently stimulate skeletal muscle protein synthesis in neonatal pigs[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2003,284(1):E110-E119. (1)
[8]SURYAWAN A,ORELLANA R A,NGUYEN H V,et al.Activation by insulin and amino acids of signaling components leading to translation initiation in skeletal muscle of neonatal pigs is developmentally regulated[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2007,293(6):E1597-E1605. (2)
[9]INOKI K,LI Y,ZHU T Q,et al.TSC2 is phosphorylated and inhibited by Akt and suppresses mTOR signalling[J]. Nature Cell Biology,2002,4(9):648-657. (1)
[10]KIM E.Mechanisms of amino acid sensing in mTOR signaling pathway[J]. Nutrition Research and Practice,2009,3(1):64-71. (1)
[11]TEE A R,FINGAR D C,MANNING B D,et al.Tuberous sclerosis complex-1 and -2 gene products function together to inhibit mammalian target of rapamycin (mTOR)-mediated downstream signaling[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2002,99(21):13571-13576. (1)
[12]GINGRAS A C,RAUGHT B,SONENBERG N.eIF4 initiation factors:effectors of mRNA recruitment to ribosomes and regulators of translation[J]. Annual Review of Biochemistry,1999,68:913-963. (1)
[13]FUMAGALLI S,THOMAS G.S6 phosphorylation and signal transduction[M]//SONENBERG N,HERSHEY J W B,MATHEWS M B.Translational control of gene expression.New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,2000:695-717.(1)
[14]ZONCU R,EFEYAN A,SABATINI D M.mTOR:from growth signal integration to cancer,diabetes and ageing[J]. Nature Reviews Molecular Cell Biology,2011,12(1):21-35. (1)
[15]BLOMMAART E F C,LUIKEN J J F P,BLOMMAART P J E,et al.Phosphorylation of ribosomal protein S6 is inhibitory for autophagy in isolated rat hepatocytes[J]. Journal of Biological Chemistry,1995,270(5):2320-2326. (1)
[16]HARA K,YONEZAWA K,WENG Q P,et al.Amino acid sufficiency and mTOR regulate p70 S6 kinase and eIF-4E BP1 through a common effector mechanism[J]. Journal of Biological Chemistry,1998,273(23):14484-14494. (1)
[17]GAO X S,ZHANG Y,ARRAZOLA P,et al.Tsc tumour suppressor proteins antagonize amino-acid-TOR signalling[J]. Nature Cell Biology,2002,4(9):699-704. (1)
[18]HAN J M,JEONG S J,PARK M C,et al.Leucyl-tRNA synthetase is an intracellular leucine sensor for the mTORC1-signaling pathway[J]. Cell,2012,149(2):410-424. (1)
[19]SMITH E M,FINN S G,TEE A R,et al.The tuberous sclerosis protein TSC2 is not required for the regulation of the mammalian target of rapamycin by amino acids and certain cellular stresses[J]. Journal of Biological Chemistry,2005,280(19):18717-18727. (2)
[20]LONG X M,ORTIZ-VEGA S,LIN Y S,et al.Rheb binding to mammalian target of rapamycin (mTOR) is regulated by amino acid sufficiency[J]. Journal of Biological Chemistry,2005,280(25):23433-23436. (1)
[21]NOBUKUNI T,JOAQUIN M,ROCCIO M,et al.Amino acids mediate mTOR/raptor signaling through activation of class 3 phosphatidylinositol 3OH-kinase[J]. Proceedings of the National Academy Science of the United States of America,2005,102(40):14238-14243. (1)
[22]BYFIELD M P,MURRAY J T,BACKER J M.hVps34 is a nutrient-regulated lipid kinase required for activation of p70 S6 kinase[J]. The Journal of Biological Chemistry,2005,280(38):33076-33082. (1)
[23]刘效磊,牛燕媚,傅力.mTOR/S6K1信号通路研究进展[J]. 中国运动医学杂志,2010,29(1):118-121. (1)
[24]DENG D,YAO K,CHU W Y,et al.Impaired translation initiation activation and reduced protein synthesis in weaned piglets fed a low-protein diet[J]. The Journal of Nutritional Biochemistry,2009,20(7):544-552. (1)
[25]FRANK J W,ESCOBAR J,SURYAWAN A,et al.Dietary protein and lactose increase translation initiation factor activation and tissue protein synthesis in neonatal pigs[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2006,290(2):E225-E233. (1)
[26]TORRAZZA R M,SURYAWAN A,GAZZANEO M C,et al.Leucine supplementation of a low-protein meal increases skeletal muscle and visceral tissue protein synthesis in neonatal pigs by stimulating mTOR-dependent translation initiation[J]. The Journal of Nutrition,2010,140(12):2145-2152. (1)
[27]胡琴,李铁军,康萍,等.新生仔猪蛋白质合成的调控机制[J]. 生命科学,2008,20(1):131-137. (1)
[28]KIMBALL S R,JEFFERSON L S.Signaling pathways and molecular mechanisms through which branched-chain amino acids mediate translational control of protein synthesis[J]. The Journal of Nutrition,2006,136(1):227S-231S. (1)
[29]WANG X M,PROUD C G.The mTOR pathway in the control of protein synthesis[J]. Physiology,2006,21:362-369. (1)
[30]ESCOBAR J,FRANK J W,SURYAWAN A,et al.Amino acid availability and age affect the leucine stimulation of protein synthesis and eIF4F formation in muscle[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2007,293(6):E1615-E1621. (2)
[31]RHOADS J M,CORL B A,HARRELL R,et al.Intestinal ribosomal p70 (S6K) signaling is increased in piglet rotavirus enteritis[J]. American Journal of Physiology:Gastrointestinal and Liver Physiology,2007,292(3):G913-G922. (1)
[32]YAO K,YIN Y L,CHU W,et al.Dietary arginine supplementation increases mTOR signaling activity in skeletal muscle of neonatal pigs[J]. The Journal of Nutrition,2008,138(5):867-872. (1)
[33]XI P B,JIANG Z Y,DAI Z L,et al.Regulation of protein turnover by L-glutamine in porcine intestinal epithelial cells[J]. The Journal of Nutritional Biochemistry,2012,23(8):1012-1017. (1)
[34]KIMBALL S R,JEFFERSON L S.Regulation of protein synthesis by branched-chain amino acids[J]. Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic Care,2001,4(1):39-43. (1)
[35]DAVIS T A,FIOROTTO M L,BURRIN D G,et al.Intrauterine growth restriction does not alter response of protein synthesis to feeding in newborn pigs[J]. The American Journal of Physiology,1997,272(5):E877-E884. (1)
[36]O'CONNOR P M,KIMBALL S R,SURYAWAN A,et al.Regulation of translation initiation by insulin and amino acids in skeletal muscle of neonatal pigs[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology Metabolism,2003,285(1):E40-E53. (2)
[37]DAVIS T A,BURRIN D G,FIOROTTO M L,et al.Protein synthesis in skeletal muscle and jejunum is more responsive to feeding in 7-than in 26-day-old pigs[J]. The American Journal of Physiology,1996,270(5 Pt 1):E802-E809. (2)
[38]SURYAWAN A,ORELLANA R A,NGUYEN H V,et al.Activation by insulin and amino acids of signaling components leading to translation initiation in skeletal muscle of neonatal pigs is developmentally regulated[J]. American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2007,293(6):E1597-E1605. (1)
[39]WILSON F A,SURYAWAN A,ORELLANA R A,et al.Feeding rapidly stimulates protein synthesis in skeletal muscle of neonatal pigs by enhancing translation initiation[J]. The Journal of Nutrition,2009,139(10):1873-1880. (1)
[40]GAZZANEO M C,ORELLANA R A,SURYAWAN A,et al.Differential regulation of protein synthesis and mTOR signaling in skeletal muscle and visceral tissues of neonatal pigs after a meal[J]. Pediatric Research,2011,70(3):253-260. (1)