β-葡聚糖(β-glucan)作为一种具有免疫刺激作用的生物活性物质，对水产动物的生长和生理功能表现出多方面的作用，是一种研究相对深入、应用广泛的免疫增强剂^{[1, 2, 3, 4, 5]}。体内和体外试验结果均表明，β-葡聚糖可以增强大西洋鲑(Salmo salar)抗病原感染的能力^[6]，改善奥尼罗非鱼(Oreochromis aureus ×Oreochromis niloticus ♀)的生长性能和抗嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)感染的能力^[7]，提高花鲈(Lateolabrax japonicus)增重率、免疫性能和抗氨氮应激能力^[8]。Ai等^[9]研究结果显示，不同剂量β-葡聚糖对大黄鱼(Pseudosciaena crocea)的生长性能表现出不同的影响，0.09%的低添加量可以显著提高生长性能，但0.18%的高添加量却没有出现此结果。目前，关于β-葡聚糖不同投喂方式对水产动物的影响也已有报道。王永宏等^[10]对暗纹东方鲀(Takifugu obscures)的研究结果表明，β-葡聚糖可以提高机体的免疫功能，投喂方式效果低于注射方式，但是间隔投喂方式和连续投喂方式对生长性能的影响没有显著差异。在甲壳动物的研究中，刘栋辉等^[11]发现啤酒酵母β-葡聚糖可以显著提高斑节对虾(Penaeus monodon)的增重率和存活率。亦有研究表明，β-葡聚糖对对虾的促生长效果可能与饲料配方有关。刘立鹤等^[12]的研究显示，不同饲料配方下β-葡聚糖对凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)生长性能的影响不同。对河蟹^[13](Eriocheir sinensis)和中华鳖幼鳖^[14](Trionyx sinensis)的研究中，饲料添加β-葡聚糖对其生长性能的影响不显著。上述研究表明，β-葡聚糖对不同水产动物的作用效果有所差异，其机制还不太清楚，可能与动物的种类、β-葡聚糖的添加剂量及给予方式等有关。

黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)又名黄腊丁，属鲶形目,鲿科,黄颡鱼属，是淡水水体中分布较广的底层经济杂食性鱼类，也是我国经济结构调整的优良品种。近年来，随着黄颡鱼集约化和规模化养殖的发展，病害防控越来越成为人们关注的焦点。应用β-葡聚糖等免疫增强剂提高黄颡鱼的非特异性免疫能力和对病害的抵抗力，是解决此类问题的有效途径之一。目前，关于β-葡聚糖对黄颡鱼生长性能和抗病力等的研究尚未见报道。因此，本试验通过在饲料中添加不同水平的β-葡聚糖，并采用连续和间隔2种投喂方式，研究β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼生长性能、体成分、血清生 化指标及抗嗜水气单胞菌感染能力的影响，以便 为β-葡聚糖在黄颡鱼饲料中的应用提供理论依据。

以鱼粉、豆粕为主要蛋白质源，高筋面粉为主要糖源，鱼油为主要脂肪源配制基础饲料，其组成及营养水平见表1。在基础饲料中分别添加200、600和1 000 mg/kg酵母β-葡聚糖配制3种试验饲料。酵母β-葡聚糖主链为β-1,3结构，纯度>90%，来自安琪酵母有限公司。饲料原料经粉碎后过40目筛，按配方准确称取。β-葡聚糖以高筋面粉作为载体，再逐级放大。各种饲料成分充分混匀，用SLX-80型双螺杆挤压机制成粒径为1.5 mm的颗粒饲料，55 ℃烘干，自然冷却后放入密封袋中，置于-20 ℃冰箱中保存备用。

试验用黄颡鱼幼鱼购自广东省清远市黄沙渔业基地，养殖试验在广东省农业科学院动物科学研究所水产研究室室内循环水养殖系统中进行。养殖系统包括24个350 L圆柱形纤维玻璃缸(直径80 cm，高70 cm，水体体积约为300 L)，进水速率为1.5 L/min。养殖用水为曝气的自来水，经珊瑚石、活性炭过滤。将购买的鱼苗先放在室外水泥池中暂养2周，期间投喂不含β-葡聚糖的商品饲料，每天2次。试验开始时，选取初始体重(1.53±0.04) g的黄颡鱼幼鱼720尾，随机分为7组，分别为投喂基础饲料组(G0组，作为对照组)、连续投喂添加200、600和1 000 mg/kg β-葡聚糖饲料的3个连续投喂组(SG200、SG600和SG1000组)和先投喂添加200、600、1 000 mg/kg β-葡聚糖饲料7 d、再投喂基础饲料7 d的3个间隔投喂组(IG200、IG600和IG1000组)。其中，连续投喂组每组4个重复，对照组和间隔投喂组每组3个重复，每个重复均为30尾鱼。每天08:30和18:30各投喂1次，初次投喂量约为初始体重的5%，按摄食情况调整投喂量。试验过程中自然光照，每天测定溶氧浓度、水温、pH等，记录死亡鱼尾数和重量。养殖期间氨氮浓度<0.2 mg/L，亚硝酸盐浓度<0.02 mg/L，溶氧浓度>6.0 mg/L，水温28~32 ℃，pH 7.5~8.0。每周换水2次，每次换水量为总体积的1/3。养殖试验为期42 d。

表 1 (Table 1)

表 1 基础饲料组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (air-dry basis) % 项目 Items 含量 Content 原料 Ingredients 鱼粉 Fish meal 28.00 豆粕 Soybean meal 32.00 菜籽粕 Rapeseed meal 8.00 棉籽粕 Cottonseed meal 8.00 高筋面粉 High strength flour 14.65 鱼油 Fish oil 4.00 磷脂油 Lecithin oil 1.00 胆碱 Choline 0.50 海藻酸钠 Sodium alginate 0.50 磷酸二氢钙 Ca(H2PO4)2 1.50 维生素预混料 Vitamin premix1) 0.10 矿物质预混料 Mineral premix2) 0.50 蛋氨酸 Met 0.25 赖氨酸 Lys 1.00 合计 Total 100.00 营养水平 Nutrient levels3) 粗蛋白质 CP 40.25 粗灰分 Ash 9.38 粗脂肪 EE 6.08 水分 Moisture 7.52  1)每千克维生素预混料含有One kilogram of vitamin premix contained the following：VA 3 200 000 IU，VB1 4 g，VB2 8 g，VB6 4.8 g，VB12 16 mg，VD 31 600 000 IU，VE 16 g，VK 4 g，泛酸钙 calcium pantothenate 16 g，叶酸 folic acid 1.28 g，烟酸 nicotinic acid 28 g，肌醇 inositol 40 g，生物素 biotin 64 mg，水分 moisture≤10%。  2)每千克矿物质预混料含One kilogram of mineral premix contained the following：MgSO4·H2O 12 g，Ca(IO3)2 9 g，KCl 36 g，Met-Cu 1.5 g，ZnSO4·H2O 10 g，FeSO4·H2O 1 g，Met-Co 250 mg，NaSeO3 0.003 6 g。  3)营养水平为实测值Nutrient levels were measured values。

表 1 基础饲料组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (air-dry basis)

养殖试验结束后停食24 h，记录每个重复鱼的尾数，称量鱼体总重。每个重复随机取5尾鱼，用于全鱼体成分的测定。每个重复随机取15尾鱼，经MS-222麻醉后用1 mL无菌注射器于尾静脉取血，静置4 h，4 000 r/min离心10 min制备血清，取上清液分装，保存于-80 ℃冰箱中备用。

式中：W₀为初始体重(g)；W_t为终末体重(g)；N_f为终末尾数(尾)；N_i为初始尾数(尾)；F为饲料摄入量(g)；P为饲料粗蛋白质含量(%)；W_h为肝脏重量(g)；L为体长(cm)。

粗蛋白质含量采用凯氏定氮法(GB/T 6432—1994)、粗脂肪含量采用乙醚抽提法(GB/T 6433—1994)、粗灰分含量采用550 ℃灼烧法(GB/T 6438—1992)、水分含量采用105 ℃烘箱干燥法(GB/T 6435—1986)进行测定。

血清球蛋白(gobulin,GLO)、总蛋白(total protein,TP)、甘油三酯(triglyceride,TG)、胆固醇(cholesterol,CHO)、尿素(urea,UR)、葡萄糖(glucose，GLU)含量及谷丙转氨酶(glutamic pyruvic transaminase,GPT)和谷草转氨酶(glutamic oxalacetic transaminase,GOT)活性委托广州金域医学检验中心测定。

试验用嗜水气单胞菌菌种来自中国水产科学院南海水产研究所。菌种用营养肉汤琼脂培养基在37 ℃培养箱中摇床培养24 h，复壮2次。选取对数生长期的菌体，4 000 r/min离心1 min，收集沉淀菌体，用灭菌生理盐水清洗。集菌后进行梯度稀释，预试验确定半数致死浓度。在600 nm下，制备吸光度(OD)值为0.2的菌体悬液(约10⁷ CFU/mL)，置于4 ℃冰箱中保存备用。

养殖试验采样结束后，每组选取大小一致的鱼40尾，随机分为4个桶，其中3个桶每尾鱼腹腔注射40 μL的嗜水气单胞菌悬液，另外1个桶腹腔注射等量的生理盐水。观察感染鱼体出现症状，并及时捞出死亡个体，记录死亡尾数。感染期间投喂基础饲料，不间断充气，水体不循环。感染试验时间为96 h，计算累积死亡率(accumulative mortality rate,AMR)。

试验结果用平均值±标准差(mean±SD)表示，采用SPSS 17.0软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA)，利用Duncan氏法多重比较进行组间显著差异分析，差异显著性水平为P<0.05。

由表2可见，除IG600组鱼的增重率低于对照组外，其他β-葡聚糖添加组鱼的增重率均高于对照组，而且连续投喂组的增重率高于对应的间隔投喂组，但是各组之间均无显著差异(P>0.05)。在3个连续投喂组中，增重率以SG600最高，但组间差异不显著(P>0.05)。各组之间的存活率、饲料系数和蛋白质效率无显著差异(P>0.05)。饲料中添加β-葡聚糖有降低肝体比的趋势，IG1000组的肝体比显著低于对照组(P<0.05)。除SG1000组鱼的肥满度低于对照组外，β-葡聚糖添加组鱼的肥满度均高于对照组，而且连续投喂组的肥满度低于对应的间隔投喂组，但是各组之间均无显著差异(P>0.05)。

由表3可见，β-葡聚糖添加组鱼体的粗蛋白质、粗脂肪和粗灰分含量均高于对照组，但未出现显著差异(P>0.05)。除SG200组的粗蛋白质含量低于IG200组外，另外2个连续投喂组均高于对应的间隔投喂组，但组间差异不显著(P>0.05)。β-葡聚糖添加组鱼体的水分含量均低于对照组，但差异不显著(P>0.05)。

表 2 (Table 2)

表 2 饲料中添加β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼生长性能的影响 Table 2 Effects of dietary β-glucan on growth performance of juvenile yellow catfish 项目 Items 组别 Groups G0 SG200 SG600 SG1000 IG200 IG600 IG1000 初始体重IBW/g 1.53±0.04 1.55±0.03 1.53±0.04 1.54±0.02 1.54±0.00 1.53±0.02 1.56±0.01 终末体重FBW/g 8.94±0.78 9.43±0.31 9.38±0.43 9.12±0.31 9.28±0.08 8.89±0.34 9.12±0.25 增重率WGR/% 483.08±48.65 508.21±18.53 514.65±41.30 493.56±24.38 502.56±4.85 481.09±16.15 483.75±19.78 存活率 SR/% 98.89±1.92 100.00±0.00 100.00±0.00 100.00±0.00 100.00±3.33 98.89±1.92 100.00±0.00 饲料系数FCR 1.46±0.10 1.39±0.04 1.41±0.07 1.34±0.08 1.39±0.11 1.45±0.02 1.43±0.06 蛋白质效率 PER/% 156.44±11.96 163.60±5.19 169.15±13.57 160.58±8.07 165.02±1.59 158.97±10.64 158.86±6.29 肝体比HSI/% 2.29±0.20ab 2.04±0.13bc 2.03±0.14bc 2.10±0.15bc 2.04±0.15bc 2.35±0.09a 1.83±0.12c 肥满度 CF/(g/cm3) 2.19±0.07 2.36±0.18 2.21±0.21 2.16±0.02 2.44±0.18 2.38±0.29 2.42±0.21  同行数据肩标无字母或相同字母表示差异不显著(P＞0.05)，不同小写字母表示差异显著(P＜0.05)。下表同。  In the same row,values with no letter or the same letter superscripts mean no significant difference (P＞0.05),while with different small letter superscripts mean significant difference (P＜0.05). The same as below.

表 2 饲料中添加β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼生长性能的影响 Table 2 Effects of dietary β-glucan on growth performance of juvenile yellow catfish

表 3 (Table 3)

表 3 饲料中β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼体成分的影响(湿重基础) Table 3 Effects of dietary β-glucan on body composition of juvenile yellow catfish (wet weight basis) % 项目 Items 组别 Groups G0 SG200 SG600 SG1000 IG200 IG600 IG1000 粗蛋白质 CP 13.81±0.77 13.91±0.35 14.42±0.17 14.57±0.60 14.16±0.26 14.25±0.38 14.19±0.25 粗脂肪 EE 6.21±0.37 6.62±0.66 7.25±0.22 6.80±0.68 6.39±0.10 7.37±1.48 7.51±0.13 粗灰分 Ash 2.68±0.07 2.70±0.13 2.84±0.05 2.81±0.15 2.75±0.05 2.71±0.12 2.73±0.02 水分 Moisture 75.73±0.75 75.17±0.76 74.24±0.30 74.42±0.95 75.19±0.31 74.25±1.56 74.34±0.20

表 3 饲料中β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼体成分的影响(湿重基础) Table 3 Effects of dietary β-glucan on body composition of juvenile yellow catfish (wet weight basis)

由表4可见，饲料中添加β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼各血清生化指标均没有显著影响(P>0.05)。其中，对照组血清球蛋白和总蛋白含量低于SG1000和IG600组，各β-葡聚糖添加组血清谷丙转氨酶和谷草转氨酶活性均低于对照组。

表 4 (Table 4)

表 4 饲料中添加β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼血清生化指标的影响 Table 4 Effects of dietary β-glucan on serum biochemical indices of juvenile yellow catfish 项目 Items 组别 Groups G0 SG200 SG600 SG1000 IG200 IG600 IG1000 球蛋白 ALB/(g/L) 20.67±0.76 20.40±0.95 19.68±0.84 20.90±1.24 19.73±0.72 21.00±1.05 20.43±0.15 总蛋白 TP/(g/L) 34.07±0.71 33.85±1.18 32.43±1.28 34.35±2.08 32.50±0.90 34.30±1.11 33.63±0.40 甘油三酯 TG/(mmol/L) 5.57±2.09 5.71±1.62 4.04±0.28 5.61±1.99 4.77±0.53 6.21±2.01 3.56±0.58 胆固醇 CHO/(mmol/L) 4.27±0.40 4.44±0.30 4.04±0.28 4.39±0.52 3.90±0.14 4.38±0.52 4.03±0.24 尿素 UR/(mmol/L) 0.47±0.06 0.48±0.05 0.45±0.06 0.48±0.05 0.43±0.06 0.50±0.00 0.43±0.06 葡萄糖 GLU/(mmol/L) 7.50±0.38 7.42±0.67 7.10±0.68 7.37±0.73 7.74±1.27 7.54±0.29 7.37±0.48 谷丙转氨酶 GPT/(U/L) 25.00±7.94 22.25±4.79 21.00±3.27 23.00±1.41 24.00±1.00 24.67±4.16 21.00±2.64 谷草转氨酶 GOT/(U/L) 412.67±5.03 417.25±70.47 399.25±39.85 390.25±20.90 412.67±5.03 409.00±41.87 416.33±26.08

表 4 饲料中添加β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼血清生化指标的影响 Table 4 Effects of dietary β-glucan on serum biochemical indices of juvenile yellow catfish

注射生理盐水的各桶试验鱼直到试验结束都没有出现鱼体死亡现象。注射嗜水气单胞菌后20 h，各组试验鱼开始出现死亡，病鱼离群，活动量 减少，游动异常，体表及腹腔内出现不同程度的充血。感染96 h后各组试验鱼的累计死亡率见表5。7组黄颡鱼的累计死亡率在35%～46%之间，组间未出现显著差异(P>0.05)。

表 5 (Table 5)

表 5 感染嗜水气单胞菌96 h后黄颡鱼幼鱼的累计死亡率 Table 5 Accumulative mortality rate of juvenile yellow catfish after infection of Aeromonas hydrophila for 96 h 项目 Items 组别 Groups G0 SG200 SG600 SG1000 IG200 IG600 IG1000 感染鱼尾数 No. of infecting fish 30 30 30 30 30 30 30 死亡鱼尾数 No. of death fish 16 14 18 18 16 18 14 累计死亡率 AMR/% 41.02±4.44 35.90±27.02 46.15±0.00 46.15±33.53 41.03±11.76 43.59±11.75 35.90±24.73

表 5 感染嗜水气单胞菌96 h后黄颡鱼幼鱼的累计死亡率 Table 5 Accumulative mortality rate of juvenile yellow catfish after infection of Aeromonas hydrophila for 96 h

β-葡聚糖对水产动物生长性能的作用已有大量研究，但是作用效果却因饲料配方^[12]、添加剂量^[15]或生长阶段^[16]等不同而表现出差异性。吴春玉等^[8]对花鲈的研究表明，饲料中添加β-1,3-葡聚糖可以显著提高生长性能，但周艳萍^[17]的研究结果显示，β-葡聚糖对异育银鲫(Carassius auratus gibelio)的生长性能无显著影响。另外有报道指出，长期连续投喂β-葡聚糖会抑制齐口裂腹鱼(Schizothorax prenanti Tchang)的生长^[18]。作为一种免疫增强剂，β-葡聚糖对水产动物生长性能的作用机制尚不清楚，有学者指出，β-葡聚糖可以作为营养物质被消化吸收提供能量^[19]，但谭北平等^[20]认为β-葡聚糖提供的能量有限，应该是通过提高抗氧化能力来促进生长。本试验中，在饲料中添加不同水平的β-葡聚糖，并采用连续和间隔2种投喂方式，养殖42 d后，可以一定程度提高黄颡鱼幼鱼的增重率，而且连续投喂的效果优于间隔投喂，但是并没有因为添加水平或投喂方式的不同而出现显著性差异。这与β-葡聚糖对暗纹东方鲀^[8]的作用效果一致。在对鲤鱼(Cyprinus carpio)的研究中也发现，投喂葡聚糖60 d对其生长性能没有显著影响^[21]。在本试验中，连续投喂组的增重率随β-葡聚糖添加量的增加出现先升高后降低的趋势，这与吴春玉等^[8]对花鲈的研究结果相似，表明β-葡聚糖对黄颡鱼生长性能的影响亦与添加量相关。有研究发现，采用间隔投喂β-葡聚糖的方式可以缓解长期投喂对水产动物生长的抑制作用^[22]，但是本试验中，3个间隔投喂组的增重率均低于相应的连续投喂组，而且随添加量的增加出现先下降后上升的趋势，与连续投喂组的趋势相反，出现这种结果可能与鱼的种类、生长时期、养殖周期或者β-葡聚糖的添加量等有关。因此，关于β-葡聚糖对黄颡鱼幼鱼生长性能影响的作用效果和机制的研究还有待继续深入，包括生长阶段、饲料营养水平、投喂频率以及投喂方式等多方面的因素，以便进一步明确β-葡聚糖在黄颡鱼健康养殖中的应用效果。

本试验中，β-葡聚糖没有对黄颡鱼幼鱼的蛋白质效率产生显著影响，但是出现升高趋势，这与其对增重率的作用效果一致。肝体比和肥满度是反映鱼体形体的指标。本研究结果显示，饲料中添加β-葡聚糖可以降低肝体比，提高肥满度，这与β-1,3-葡聚糖对花鲈^[8]、几丁聚糖对吉富罗非鱼^[23](Oreochromis niloticus)的研究结果一致，其中间隔投喂1 000 mg/kg组肝体比显著低于对照组，推测β-葡聚糖可能通过提高黄颡鱼幼鱼的消化酶活性来提高饲料利用效率，进而增加营养物质在机体的沉积，引起肝体比降低。覃志彪^[24]曾报道，饲料中添加β-葡聚糖能显著提高奥尼罗非鱼蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶和纤维素酶活性，肌肉粗蛋白质含量随β-葡聚糖添加量的增加而增加。

本试验结果表明，β-葡聚糖对黄颡鱼鱼体粗蛋白质、粗脂肪和粗灰分含量的影响差异不显著，这与赵红霞等^[25]及谭崇桂等^[26]对凡纳滨对虾的研究结果一致。周艳萍等^[17]的试验中，饲料中添加β-葡聚糖对异育银鲫的肌肉成分也无显著影响。本试验的结果可能是因为试验中各组饲料的营养水平基本一致，在此养殖阶段内黄颡鱼机体组成保持相对稳定没有达到差异显著水平。

血清生化指标可以反映机体物质代谢和某些组织器官的变化，常用来评价鱼体健康和营养状况等。血清中的蛋白质主要维持渗透压，其含量变化与机体的生理密切相关，可反映动物的健康状况，具有免疫功能。本试验中，各组血清总蛋白和球蛋白含量未出现显著差异，两者的变化趋势基本一致。胡毅等^[27]在饲料中添加复合芽孢杆菌制剂养殖凡纳滨对虾10周后发现血清总蛋白含量显著提高。血清中甘油三酯和胆固醇含量的变化可反映机体脂质代谢功能，尿素为衡量机体蛋白质分解代谢的指标，葡萄糖是机体主要的能量物质。本试验中，β-葡聚糖对上述指标表现出不同程度的影响，但差异均未达显著水平，原因有待进一步研究。转氨酶是反映肝功能的重要指标，其活性升高是肝细胞损伤的标志。本研究结果显示，饲料中添加β-葡聚糖有降低血清中谷丙转氨酶和谷草转氨酶活性的趋势，但并未达到显著水平，表明β-葡聚糖可在一定程度内保护肝脏，此结果与β-1,3-葡聚糖在鲈鱼^[8]、酵母细胞壁免疫多糖在草鱼(Ctenopharyngodon idellus)^[28]上的研究结果一致。Dawood等^[29]对海鲷(Pagellus erythrinus)的研究结果显示，饲料中添加β-葡聚糖对血清中谷草转氨酶、谷丙转氨酶活性及尿素含量无显著影响。周传朋等^[30]的研究表明，寡糖-中草药复合物可降低异育银鲫血清中谷丙转氨酶的活性。贺国龙等^[28]发现，在饲料中添加0.5%的酵母细胞壁免疫多糖可显著降低草鱼血清中谷丙转氨酶活性。

水产动物作为一种低等的脊椎动物，主要依靠非特异性免疫提高机体防御功能。作为一种免疫活性物质，β-葡聚糖已经被广泛应用到水产养殖中以提高动物的抗感染能力。Misra等^[31]在基础饲料中分别添加0、100、250和500 mg/kg β-葡聚糖，投喂南亚野鲮(Labeo rohita)56 d后进行感染，结果显示，β-葡聚糖添加组的死亡率显著低于对照组。另外有研究表明，β-葡聚糖可以提高斑点叉尾 (Ictalurus punctatus Rafineque)抗爱德华氏菌感染的能力^[32]。但是，亦有报道指出，单独高剂量投喂葡聚糖会对动物造成“免疫抑制”^[16]。对鲤鱼的研究发现，投喂β-葡聚糖60 d，感染后对照组的死亡率显著低于添加组^[21]，而Couso等^[33]对鲤的研究结果显示，注射方式可以显著提高相对保护率，浸泡和口服方式对相对保护率没有显著影响。这表明，即使对同种水产动物，葡聚糖的给予方式或投喂时间等都可能导致抗感染能力不同。刘群芳等^[34]的研究结果显示，β-葡聚糖与硒联合添加能提高凡纳滨对虾的免疫防御功能，可以作为凡纳滨对虾的复合免疫增强剂。另外，β-葡聚糖也可以作为一种佐剂提高异育银鲫的抗感染能力^[35]。

在本试验中，饲料中添加β-葡聚糖，无论是连续投喂还是间隔投喂，均没有显著降低黄颡鱼幼鱼感染嗜水气单胞菌后的累计死亡率。这说明，在本试验条件下，β-葡聚糖没有提高黄颡鱼抵抗嗜水气单胞菌感染的能力，这与其对生长性能的影响相一致，其原因和机理有待结合免疫指标分析等进一步深入探讨。同样，对罗非鱼进行海豚链球菌感染，结果显示各组的存活率没有受到显著影响，葡聚糖对罗非鱼抗海豚链球菌感染能力没有显著影响^[36]。这提示，β-葡聚糖对水产动物的抗菌活性及对外源病菌和病毒抵抗力的研究范围和深度尚需要进一步加强，不同处理方式的作用效果、对不同病原菌的抵抗反应机制等均有待深入研究。

饲料中添加200、600和1 000 mg/kg β-葡聚糖，不论采取连续投喂还是间隔投喂方式，除间隔投喂1 000 mg/kg组肝体比显著低于对照组外，对黄颡鱼幼鱼的生长性能、体成分、血清生化指标及抗嗜水气单胞菌感染能力均没有显著影响。