2014年我国的苹果种植面积和产量分别达到了235.53万hm²和3 915万t^[1]，其中有25%用于生产浓缩苹果汁、果醋等副产品，仅浓缩苹果汁产渣量已达120万t^[2]。研究发现，苹果渣中含有丰富的营养成分、维生素和苹果酸，有利于微生物的直接吸收和利用，可作为家畜的饲料在畜禽中使用，但作为动物饲料，其蛋白质含量偏低，影响了其他成分的利用^{[3, 4, 5]}。因此需采用特定工艺，通过微生物发酵提高苹果渣中蛋白质含量，将苹果渣转化为营养丰富的微生物蛋白质饲料，这是解决苹果渣出路的重要途径之一。另有研究指出，在苹果渣发酵生产饲料蛋白质过程中，不仅提高了果渣发酵产物的蛋白质含量，还产生大量生物酶、活性肽、游离氨基酸等对动物营养具有重要作用的活性成分^{[6, 7, 8]}。在一些研究中发现，通过发酵产品及其发酵过程中的代谢产物，可改善仔猪的生长性能、肠道健康，并可替代饲料中抗生素的使用^{[9, 10]}。因此，本试验拟用发酵苹果渣饲喂家畜，观察其对断奶仔猪生长性能、血清生化指标和粪便菌群的影响，以为其在家畜生产中应用提供参考依据。

本试验在陕西省兴平市鑫亥畜牧养殖有限责任公司鑫亥生猪良种繁育场进行，试验共进行38 d(预试期3 d，正试期35 d)，预试期饲喂基础饲粮，即不含抗生素和益生菌发酵苹果渣，其组成及营养水平见表 1。试验选取120头初始体重为(5.87±0.10) kg的(21±1)日龄断奶“杜×长×大”三元杂交仔猪，按单因子随机区组设计随机分成5组，每组3个重复，每个重复8头仔猪。试验分组情况如下：负对照(NC)组，饲喂基础饲粮；正对照(PC)组，在基础饲粮中添加0.1%的硫酸黏杆菌素、杆菌肽锌、金霉素混合型抗生素；试验Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组，分别在基础饲粮中添加4%、6%、8%益生菌发酵苹果渣。

表 1

Table 1

表 1(Table 1)

表 1 试验饲粮组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis) % 项目 Items 组别 Groups NC PC Ⅰ Ⅱ Ⅲ 原料 Ingredients 玉米 Corn 60.21 60.11 60.77 57.70 56.89 玉米蛋白质粉 Corn gluten meal 3.00 3.00 3.00 3.00 3.00 小麦次粉 Wheat short 15.00 15.00 10.41 15.00 15.00 麸皮 Wheat bran 1.77 高蛋白质豆粕 High protein soybean meal 16.00 16.00 14.09 9.02 3.62 益生菌发酵苹果渣 Probiotic fermented apple pomace 4.00 6.00 8.00 鱼粉(秘鲁) Fish meal (Peru) 1.50 1.50 1.50 1.50 1.50 发酵豆粕 Fermented soybean meal 0.40 0.40 2.86 6.48 石粉 Limestone powder 1.29 1.29 1.29 1.29 1.29 磷酸氢钙 CaHPO4 0.31 0.31 0.35 0.35 0.37 氯化钠 NaCl 0.35 0.35 0.35 0.35 0.34 碳酸氢钠 NaHCO3 0.02 0.02 0.01 0.01 0.02 沸石粉 Zeolite powder 0.20 0.20 0.62 0.99 1.48 氯化胆碱 Choline chloride 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 L-赖氨酸盐酸盐 L-Lys·HCl 0.46 0.46 0.52 0.56 0.60 DL-蛋氨酸 DL-Met 0.04 0.04 0.06 0.07 0.09 L-苏氨酸 L-Thr 0.10 0.10 0.13 0.16 0.18 L-色氨酸 L-Try 0.02 0.02 0.03 0.04 0.04 抗生素 Antibiotic 0.10 植酸酶 Phytase 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 香味剂 Flavor 0.04 0.04 0.04 0.04 0.04 预混料 Premix1) 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 合计 Total 100.00 100.00 100.00 100.00 100.00 营养水平 Nutrient levels2) 消化能 DE/(MJ/kg) 14.00 14.00 14.00 14.00 14.00 粗蛋白质 CP 18.00 18.00 18.00 18.00 18.00 钙 Ca 0.80 0.80 0.80 0.80 0.80 总磷 TP 0.43 0.43 0.41 0.41 0.41 总赖氨酸 Total Lys 1.14 1.14 1.16 1.16 1.16 可消化赖氨酸 Digestible Lys 1.04 1.04 1.04 1.04 1.04 蛋氨酸 Met 0.31 0.31 0.33 0.33 0.34 蛋氨酸＋半胱氨酸 Met+Cys 0.57 0.57 0.57 0.57 0.57 苏氨酸 Thr 0.64 0.64 0.64 0.64 0.64 色氨酸 Try 0.18 0.18 0.18 0.18 0.18 1)预混料为每千克饲粮提供Premix provided the following per kg of diets：VA 12 000 IU，VD3 2 400 IU，VE 30 IU，VK3 3.2 mg，VB1 2.4 mg，VB2 8 mg，VB6 4 mg，VB12 32 μg，叶酸 folic acid 1.32 mg，生物素 biotin 124 μg，烟酰胺 nicotinamide 34 mg，泛酸 pantothenic acid 20 mg，Cu 180 mg，Fe 100 mg，Zn 100 mg，Mn 5.2 mg，Se 0.48 mg，I 0.26 mg。 2)计算值 Calculated values。

表 1 试验饲粮组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis)

固态发酵培养基，由果渣∶油渣∶尿素=17∶2∶1组成，灭菌后基质含水量为60%；菌剂主要包括黑曲霉、安琪酵母、乳酸杆菌和芽孢杆菌。

将黑曲霉斜面菌种接入装有麸皮培养基的组培瓶中，30 ℃培养5 d后，以2%接种量接入装有麸皮培养基的塑料盘，30 ℃培养10 d，然后和安琪酵母一起接种到固态发酵培养基中进行固态发酵，烘干后按一定比例加入乳酸杆菌和芽孢杆菌掺混制成成品。

风干苹果渣添加油渣辅料后，经复菌发酵剂发酵，可明显提高饲料中蛋白质含量，同时添加了能改善动物肠道菌群的乳酸菌和芽孢菌，使果渣改良为具有提供饲料蛋白质和益生作用的生物活性蛋白质饲料。其营养成分如下：安琪酵母、乳酸杆菌和芽孢杆菌的含量分别为1.4×10⁴、5.5×10⁷和8.7×10⁵ CFU/g；饲料中粗蛋白质、总能、多肽和游离氨基酸的含量分别为29.29%、17.47 MJ/kg、4.04%、0.07%；蛋白质酶、纤维素酶和果胶酶活性分别为114.06、793.08和198.03 U/g。

试验饲粮参照NRC(2012)配制，各组饲粮组成及营养水平见表 1。试验前对猪舍进行彻底地消毒，并对试验仔猪进行统一驱虫及接种疫苗。饲养期间在每天的07：30、14：30、21：30进行饲喂，自由采食和饮水。每天准确记录给料量和剩料量，以计算平均日采食量。

在试验期第7、14、21、28和35天，于饲喂前分别从每个重复随机选取3头试验仔猪，采集新鲜粪样混匀后取10 g放入10 mL灭菌好的离心管中，加入甘油置于-80 ℃冰箱保存，用于粪便微生物菌群的测定。

分别于试验的第21天和第35天从每组的每个重复随机选取1头猪，前腔静脉采血10 mL，倾斜放置30 min，3 000 r/min离心15 min，收集血清，-20 ℃低温冷藏，用于血清生化指标的测定。

分别于试验开始和结束时空腹称重，根据初重和末重计算平均日增重。每天记录各组的采食量，计算平均日采食量和料重比。每天16：30观察仔猪粪便情况，记录腹泻头数，计算腹泻率。

腹泻率(%)＝[总腹泻次数/(总头数×试验天数)]×100。

血清生化指标：葡萄糖(GLU)、尿素氮(UN)、总蛋白(TP)、白蛋白(ALB)、甘油三酯(TG)和总胆固醇(TC)含量采用试剂盒法测定；血清激素指标：生长激素(GH)、胰岛素(INS)、三碘甲状腺原氨酸(T₃)和甲状腺素(T₄)含量采用酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒进行测定。试剂盒均购自南京建成生物工程研究所。

采用平板稀释法和最大可能数(MPN)法对粪便样品中的菌群总数和大肠杆菌进行计数。

菌群总数：根据样品批次不同，选择10^-4～10^-6连续稀释度的3个样品匀液，分别吸取1 mL于无菌平皿内，每个稀释度做2个平皿。同时，分别吸取1 mL空白稀释液加入2个无菌平皿内作空白对照，并及时将15～20 mL冷却至46 ℃的平板计数琼脂培养基[放置于(46±1) ℃恒温水浴箱中保温]倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。待琼脂凝固后，将平板翻转，(37±1) ℃培养(48±2) h。菌落计数以菌落形成单位(CFU)表示。每个稀释度的菌落数采用2个平板的平均值，平均值乘以相应稀释倍数作为每克样品中菌落总数结果。

大肠杆菌：选择10^-4～10^-6连续稀释度的3个样品匀液，每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤，每管接种1 mL，(37±1) ℃培养(24±2) h，观察倒管内是否有气泡产生，(24±2) h产气者进行复发酵试验，如未产气则继续培养至(48±2) h，产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)管中，(36±1) ℃培养(48±2) h，观察产气情况。产气者，计为大肠菌群阳性管。按确证的大肠菌群LST阳性管数，检索MPN表，报告每克样品中大肠菌群的MPN值。

采用SPSS 17.0统计软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA)，并用Duncan氏法进行多重比较。利用t检验，比较PC组与添加4%、6%、8%益生菌发酵苹果渣组的差异。线性和二次检验饲粮中随着益生菌发酵苹果渣添加量的增加对仔猪各项测定指标的影响。以P＜0.05为差异显著性判断标准，以P＜0.01为差异极显著判断标准。

由表 2可知，各组之间初始重无显著差异(P>0.05)；与NC组和Ⅲ组相比，其他组末重显著提高(P＜0.05)；Ⅱ组平均日增重较NC组、Ⅰ组和Ⅲ组分别极显著提高了4.90%、2.44%和4.84%(P＜0.01)，PC组显著高于NC组和Ⅲ组(P＜0.05)；与NC组相比，Ⅱ组平均日采食量极显著提高了2.45%(P＜0.01)，PC组和Ⅰ组平均日采食量也显著提高(P＜0.05)；PC组和Ⅱ组料重比极显著低于NC组和Ⅲ组(P＜0.01)。与PC组相比，饲粮中添加益生菌发酵苹果渣对试验全期的料重比有提高的趋势(P=0.077)。随着饲粮中添加益生菌发酵苹果渣比例的增加，仔猪的平均日增重、平均日采食量和料重比呈现二次变化趋势(P＜0.05)，其中6%添加组效果最好。

表 2

Table 2

表 2(Table 2)

表 2 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪生长性能的影响 Table 2 Effects of probiotic fermented apple pomace on growth performance of weaned piglets 项目 Items 组别 Groups SEM P值 P-value PC vs. AP* NC vs. AP* NC PC Ⅰ Ⅱ Ⅲ 线性 Linear 二次 Quadratic 初始重 Initial weight/kg 5.78 5.79 5.79 5.78 5.79 0.01 0.924 0.969 0.797 末重 Final weight/kg 16.46Cc 16.88ABa 16.72Bb 16.98Aa 16.47Cc 0.06 0.289 0.278 0.001 平均日增重 ADG/g 305.05Cc 316.97ABab 312.40Bb 320.01Aa 305.25Cc 1.71 0.293 0.285 0.001 平均日采食量 ADFI/g 445.02Bb 451.25ABa 451.36ABa 455.91Aa 445.58Bb 1.21 0.921 0.365 0.001 料重比 F/G 1.46Aa 1.42Bb 1.44ABab 1.42Bb 1.46Aa 0.01 0.077 0.589 0.008 同行数据肩标相同小写字母或无字母表示差异不显著(P>0.05)，肩标不同小写字母表示差异显著(P＜0.05)，肩标不同大写字母表示差异极显著(P＜0.01)。下表同。 In the same row, values with the same small letter or no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05), while with different small letter superscripts mean significant difference (P＜0.05), and with different capital letter superscripts mean extremely significant difference (P＜0.01). The same as below. *AP：益生菌发酵苹果渣组，下表同。AP mean probiotic fermented apple pomace groups, the same as below.

表 2 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪生长性能的影响 Table 2 Effects of probiotic fermented apple pomace on growth performance of weaned piglets

由表 3可知，试验1~21 d，PC组、Ⅰ组和Ⅱ组较Ⅲ组的腹泻率分别显著下降了17.98%、13.47%和15.73%(P＜0.05)，PC组比NC组显著下降了15.11%(P＜0.05)，Ⅰ组和Ⅱ组与NC组相比分别下降了10.45%和14.29%(P>0.05)。试验22~35 d，NC组和Ⅲ组较PC组和Ⅱ组显著升高(P＜0.05)，同时，Ⅰ组较NC组显著下降(P＜0.05)。可见，无论前期还是后期，腹泻率随着益生菌发酵苹果渣添加量的增加都是先下降后升高，呈现二次变化趋势(P＜0.05)，且6%添加组腹泻率最低。

表 3

Table 3

表 3(Table 3)

表 3 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪腹泻率的影响 Table 3 Effects of probiotic fermented apple pomace on diarrhea rate of weaned piglets 项目 Items 组别 Groups SEM P值 P-value PC vs. AP* NC vs. AP* NC PC Ⅰ Ⅱ Ⅲ 线性 Linear 二次 Quadratic 1~21 d 18.86ab 16.01c 16.89bc 16.45bc 19.52a 0.47 0.191 0.673 0.012 22~35 d 11.46a 7.99c 8.68bc 7.64c 10.42ab 0.48 0.399 0.189 0.003

表 3 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪腹泻率的影响 Table 3 Effects of probiotic fermented apple pomace on diarrhea rate of weaned piglets

由表 4可知，各组血清TP、ALB、GLU和TG含量差异均不显著(P>0.05)，但Ⅱ组和PC组血清TP和ALB含量较NC组均有明显上升。在UN含量方面，与NC组相比，试验21 d PC组和Ⅱ组分别下降了34.67%和38.21%(P＜0.05)，试验35 d PC组和Ⅱ组分别下降了15.94%和16.52%(P＜0.05)；在TC含量方面，与NC组相比，PC组、Ⅰ组和Ⅱ组均呈下降趋势，且差异显著(P＜0.05)。随着益生菌发酵苹果渣添加量的增加，血清UN和TC含量呈现二次变化趋势(P＜0.05)，且试验21 d血清TC含量呈线性降低(P=0.011)。与PC组相比，益生菌发酵苹果渣组各血清生化指标均无显著变化(P>0.05)。结果表明，在饲粮中添加6%益生菌发酵苹果渣可以明显升高血清中TP和ALB含量，显著降低UN和TC含量。

表 4

Table 4

表 4(Table 4)

表 4 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪血清生化指标的影响 Table 4 Effects of probiotic fermented apple pomace on serum biochemical indicators of weaned piglets 项目 Items 组别 Groups SEM P值 P-value PC vs. AP* NC vs. AP* NC PC Ⅰ Ⅱ Ⅲ 线性 Linear 二次 Quadratic 21 d 总蛋白 TP/(g/L) 53.13 58.50 54.27 58.43 53.80 0.93 0.284 0.483 0.163 白蛋白 ALB/(g/L) 27.20 29.17 27.23 29.60 27.10 0.54 0.262 0.729 0.354 尿素氮 UN/(mmol/L) 4.24a 2.77b 3.93ab 2.62b 4.40a 0.25 0.266 0.649 0.026 葡萄糖 GLU/(mmol/L) 5.11 5.47 5.28 5.50 5.16 0.09 0.403 0.696 0.232 总胆固醇 TC/(nmol/L) 1.79a 1.49b 1.54b 1.33b 1.48b 0.05 0.202 0.011 0.032 甘油三酯 TG/(mmol/L) 0.30 0.37 0.34 0.36 0.31 0.01 0.636 0.750 0.165 35 d 总蛋白 TP/(g/L) 53.03 58.60 54.90 58.90 54.60 0.92 0.267 0.329 0.138 白蛋白 ALB/(g/L) 27.57 28.83 27.37 29.13 27.13 0.40 0.391 0.911 0.351 尿素氮 UN/(mmol/L) 3.45a 2.90bc 3.15abc 2.88c 3.32ab 0.08 0.239 0.318 0.030 葡萄糖 GLU/(mmol/L) 5.08 5.41 5.18 5.52 5.12 0.10 0.541 0.680 0.341 总胆固醇 TC/(nmol/L) 1.63a 1.31b 1.36b 1.31b 1.43ab 0.04 0.476 0.053 0.016 甘油三酯 TG/(mmol/L) 0.33 0.38 0.36 0.38 0.33 0.01 0.402 0.726 0.041

表 4 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪血清生化指标的影响 Table 4 Effects of probiotic fermented apple pomace on serum biochemical indicators of weaned piglets

由表 5可知，与NC组和Ⅲ组相比，PC组和Ⅱ组血清GH、INS、T₃和T₄含量都显著升高(P＜0.05)，其中PC组和Ⅱ组血清GH含量升高达到极显著水平(P＜0.01)。随着益生菌发酵苹果渣添加量的增加，试验21 d血清INS、T₃、T₄含量均呈现先上升后降低的二次趋势(P＜0.05)，血清GH含量有二次变化趋势(P=0.059)；试验35 d血清GH、INS、T₃含量呈现先上升后降低的二次趋势(P＜0.05)。结果表明，饲粮添加6%益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪血清GH、INS、T₃和T₄含量的影响最为明显。

表 5

Table 5

表 5(Table 5)

表 5 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪血清激素指标的影响 Table 5 Effects of probiotic fermented apple pomace on serum hormone indicators of weaned piglets 项目 Items 组别 Groups SEM P值 P-value PC vs. AP* NC vs. AP* NC PC Ⅰ Ⅱ Ⅲ 线性 Linear 二次 Quadratic 21 d 生长激素 GH/(ng/mL) 2.26b 2.73a 2.36ab 2.75a 2.25b 0.08 0.172 0.557 0.059 胰岛素 INS/(μIU/mL) 32.83b 39.28a 35.36ab 39.25a 32.62b 0.97 0.156 0.663 0.021 三碘甲状腺原氨酸 T3/(ng/mL) 1.31b 1.79a 1.44ab 1.75a 1.32b 0.07 0.108 0.527 0.044 甲状腺素 T4/(ng/mL) 35.38b 42.58a 37.67ab 42.67a 35.16b 1.15 0.165 0.638 0.040 35 d 生长激素 GH/(ng/mL) 2.41Bb 2.81Aa 2.59ABab 2.83Aa 2.41Bb 0.06 0.184 0.550 0.006 胰岛素 INS/(μIU/mL) 34.45b 41.50a 37.64ab 41.62a 34.41b 1.09 0.216 0.658 0.025 三碘甲状腺原氨酸 T3/(ng/mL) 1.46b 1.74a 1.55ab 1.76a 1.45b 0.04 0.189 0.629 0.020 甲状腺素 T4/(ng/mL) 38.47b 43.56a 38.27b 43.60a 37.97b 0.88 0.106 0.585 0.108

表 5 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪血清激素指标的影响 Table 5 Effects of probiotic fermented apple pomace on serum hormone indicators of weaned piglets

由表 6可知，在整个饲养阶段，PC组总菌数均显著低于NC组和益生菌发酵苹果渣组(P＜0.05)，益生菌发酵苹果渣组较NC组呈明显上升趋势，但差异不显著(P>0.05)。在大肠杆菌方面，与NC组和Ⅲ组相比，第7天PC组和Ⅱ组极显著降低(P＜0.01)，第14和21天显著降低(P＜0.05)；第28和35天，与NC组相比，PC组、Ⅰ组和Ⅱ组均显著降低(P＜0.05)，Ⅲ组也明显下降，但差异不显著(P>0.05)。随着益生菌发酵苹果渣添加量的增加，大肠杆菌呈现显著的二次变化趋势(P＜0.05)。PC组与益生菌发酵苹果渣组相比，菌群总数极显著下降(P＜0.01)。结果表明，在仔猪断奶饲粮中添加益生菌发酵苹果渣可以明显地提高菌群总数，降低大肠杆菌数，其中以6%添加量效果最佳。

表 6

Table 6

表 6(Table 6)

表 6 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪粪便微生物菌群的影响 Table 6 Effects of probiotic fermented apple residue on fecal microbial flora of weaned piglets 项目 Items 组别 Groups SEM P值 P-value PC vs. AP* NC vs. AP* NC PC Ⅰ Ⅱ Ⅲ 线性 Linear 二次 Quadratic 7 d 菌群总数 Total bacteria/[lg(CFU/g)] 6.94a 6.17b 7.03a 7.03a 7.21a 0.12 0.001 0.185 0.724 大肠杆菌 E. coli/(MPN/g) 5.67Aa 4.33Bb 5.29ABa 4.48Bb 5.74Aa 0.18 0.058 0.529 0.005 14 d 菌群总数 Total bacteria/[lg(CFU/g)] 6.93a 6.29b 7.06a 7.05a 7.17a 0.10 0.001 0.265 0.971 大肠杆菌 E. coli/(MPN/g) 5.27a 4.23b 4.81ab 4.08b 5.15a 0.16 0.261 0.426 0.028 21 d 菌群总数 Total bacteria/[lg(CFU/g)] 6.99a 6.29b 7.04a 7.05a 7.13a 0.11 0.002 0.531 0.901 大肠杆菌 E. coli/(MPN/g) 5.12a 4.10b 4.53ab 4.07b 4.93a 0.14 0.218 0.320 0.011 28 d 菌群总数 Total bacteria/[lg(CFU/g)] 7.04a 6.47b 7.06a 7.10a 7.12a 0.08 0.002 0.594 0.989 大肠杆菌 E. coli/(MPN/g) 5.03a 4.04b 4.13b 4.00b 4.67ab 0.14 0.478 0.267 0.008 35 d 菌群总数 Total bacteria/[lg(CFU/g)] 6.99a 6.39b 7.01a 7.05a 7.09a 0.09 0.003 0.645 0.923 大肠杆菌 E. coli/(MPN/g) 4.81a 4.11b 4.13b 4.08b 4.68ab 0.11 0.496 0.606 0.007

表 6 益生菌发酵苹果渣对断奶仔猪粪便微生物菌群的影响 Table 6 Effects of probiotic fermented apple residue on fecal microbial flora of weaned piglets

仔猪断奶后容易出现采食量下降、免疫力降低、生长停滞和腹泻等一系列的“早期断奶应激综合征”，严重影响早期断奶仔猪的成活率和养猪业的经济效益。本试验中添加的益生菌发酵苹果渣是由新鲜果渣通过由酵母菌、乳酸菌和芽孢杆菌组成的混合型微生态制剂固态发酵制得。益生菌发酵苹果渣中除了含有大量活菌，还有益生菌代谢产生的蛋白质酶、淀粉酶和纤维素酶以及活性肽和游离氨基酸，可以提高仔猪的消化能力和饲料利用率，进而提高生长性能。此外，芽孢杆菌和酵母菌等好氧菌的代谢为肠道乳酸菌的繁殖提供良好的厌氧环境从而产生大量乳酸，抑制致病性大肠杆菌的大量繁殖：一方面使肠道pH降低，改善肠道微生态平衡，提高消化能力^{[11, 12]}，提高动物的免疫力，降低发病率和腹泻率；另一方面，可以改善饲粮的适口性，提高动物采食量。

从本试验结果来看，并非益生菌发酵苹果渣的添加比例越高，断奶仔猪的生长性能越好，存在一个最佳添加量的问题。在综合平均日增重、平均日采食量、料重比和腹泻率指标基础上，添加6%益生菌发酵苹果渣和PC组效果最好，可以显著提高仔猪平均日增重和平均日采食量，降低料重比和腹泻率，提高生长性能。吴红翔等^[13]研究表明，用3%苹果渣发酵饲料代替基础饲粮饲喂鹌鹑，能够改善鹌鹑蛋品质，提高生产性能。García等^[14]研究发现，在饲粮中添加益生菌能明显改善断奶仔猪生长性能，提高饲料转化率，减少腹泻的发生，提高养殖效益。这都与本试验的结果基本一致。

仔猪血清生化指标可综合反映机体的新陈代谢状况。比如血清中TP和UN含量能够准确反映动物机体对蛋白质的代谢吸收情况和饲粮中氨基酸的平衡状况^{[15, 16]}。本试验中各组血清TP和ALB含量均无显著变化，但添加6%益生菌发酵苹果渣可以显著降低血清UN含量，表明益生菌发酵苹果渣可以增加机体氮沉积量，有利于蛋白质合成，促进生长发育，这可能与益生菌发酵苹果渣中的活性肽和游离氨基酸含量密切相关。曾李等^[17]研究表明，渣类饲料通过益生菌发酵后能够显著提高饲粮中小肽、寡肽和游离氨基酸的含量，从而提高饲粮中蛋白质利用率，有利于提高动物生长性能。

血脂和脂蛋白含量反映了机体在稳态下的代谢调节，特别是脂肪酸在脂肪组织和肝脏之间循环的基本调节^[18]。血清中TG和TC含量可反映脂肪在动物机体的代谢状况。本试验各组间血清TG含量没有显著变化，但当益生菌发酵苹果渣添加量达到6%时，血清TC含量较NC组显著降低，表明在饲粮中添加一定比例的益生菌发酵苹果渣能提高机体对脂肪的利用能力，从而为蛋白质的合成提供能量，促进机体的生长发育，进而提高仔猪的生长性能。

“下丘脑-垂体-靶器官”轴上GH、INS和甲状腺激素等激素对动物生长起重要的调节作用^[19]。GH处于生长轴的中心环节，其主要生理作用是促进蛋白质沉积和骨骼生长，具体表现为通过胰岛素样生长因子(IGF)促进氨基酸进入细胞，加强DNA、RNA的合成进而促进蛋白质合成，促进机体呈正氮平衡。对于仔猪来说，GH是提高蛋白质沉积的主要生理因子。INS是调控机体糖代谢的主要激素，能够促进组织细胞对葡萄糖的摄取和利用，加速糖原合成，还能够促进细胞对氨基酸的摄取、抑制蛋白质分解和糖原异生，利于细胞的生长^[19]。同时，INS还可与GH协同促进机体的生长发育。甲状腺激素对蛋白质的合成具有重要作用，并且可通过调节糖类和脂肪的代谢来促进器官和组织的分化。T₃是甲状腺激素在动物体内发挥生理作用的主要部分，主要通过调控垂体中GH基因的表达和GH的合成以及调节INS水平来促进蛋白质的合成，影响动物的生长发育。

本试验结果表明，在断奶仔猪饲粮中添加6%益生菌发酵苹果渣可使体内与生长有关的内源激素(GH、INS和甲状腺激素)含量有显著性升高，从而促进生长。王书凤等^[20]研究发现，在饲粮中添加组合抗生素可显著提高内源激素(GH、ISN和T₃)含量；卢昱屹等^[21]研究发现，在仔猪饲粮中添加10%和20%的发酵豆粕可以显著提高血清中GH含量，促进生长，降低料重比。以上研究结果都与本试验一致。

断奶应激的主要表现之一是仔猪肠道微生物菌群之间比例失调，使肠道优势菌群发生更替，致使大肠杆菌、沙门氏菌等一些致病菌或者条件致病菌大量繁殖，打破肠道微生态平衡，排放内毒素或产生其他毒副作用，从而引起机体消化机能紊乱，导致动物生长性能下降。有研究发现，在仔猪断奶阶段应用以乳酸菌为主的单一或者复合益生菌能够干预并纠正肠道微生态体系失衡现象，从而保证其良好生长性能发挥^[11,22]。Dong等^[23]研究表明，为断奶仔猪饲喂益生菌可以显著降低粪便中大肠杆菌的数量，提高生长性能和免疫力。本试验研究表明，在断奶仔猪饲粮中添加6%益生菌发酵苹果渣能够显著降低粪便中大肠杆菌数量，对病原菌具有较好的抑菌效果，说明在饲粮中添加适宜水平的益生菌发酵苹果渣产生了与抗生素相似的结果，从而降低腹泻率，提高生长性能。

① 饲粮添加益生菌发酵苹果渣可显著提高断奶仔猪平均日增重和平均日采食量，显著降低料重比。

② 饲粮添加益生菌发酵苹果渣可显著降低断奶仔猪粪便中大肠杆菌数量，降低腹泻率。

③ 断奶仔猪饲粮中益生菌发酵苹果渣较为适宜的添加量为6%。