影响必需氨基酸(EAA)泌乳转化效率的因素包括产奶量、饲粮氨基酸供应、消化道和肝脏的代谢特性。产奶量能够影响氨基酸在维持和泌乳之间的分配,饲粮氨基酸供应通过影响肝后EAA供给来影响EAA泌乳转化效率。
奶牛氨基酸的小肠吸收量和门静脉流量的测定结果表明,氨基酸在门静脉回流组织(PDV)的吸收量差异很大,组氨酸(His)的损失量很小,而亮氨酸(Leu)、苏氨酸(Thr)和一些非必需氨基酸(NEAA)的损失量很大[1]。Bequette等[2]在绵羊的PDV中发现了Leu和蛋氨酸(Met)氧化。Thr的门静脉回收率也很低,可能与胰腺氧化有关。因此,PDV EAA的代谢对进入血液循环的氨基酸数量和构成均有直接影响。
肝脏对氨基酸的移除差异同样很大,并因此影响肝后EAA供给。Cant等[3]依照肝脏氨基酸移除特征,将EAA分为2组,第1组EAA的肝脏清除量很低,包括支链氨基酸(BCAA)和赖氨酸(Lys),第2组EAA包括His、苯丙氨酸(Phe)和Met,通过肝脏时被大量移除,其降解酶也主要存在于肝脏中。His、Phe和Met的净移除率分别为门静脉吸收量的0.36、0.38和0.49倍。考虑到肝脏血流量很高,进入肝脏的EAA主要来源于动脉血液(供给PDV的动脉加肝动脉血),肝脏净吸收的EAA主要来源于外周体组织再循环,对外周组织未利用的氨基酸进行分解。因此消化道和肝脏的氨基酸代谢特性影响EAA泌乳转化效率。
Mabjeesh等[4]研究发现,EAA供应量降低时,乳腺能够调节血流速度和氨基酸的转运能力满足泌乳需要,因此在一定范围内,EAA供应量的降低可以引起缺失氨基酸泌乳转化效率升高。本试验通过单一EAA缺失灌注,研究泌乳转化效率升高程度,反映氨基酸消化道和肝脏的代谢特性,并最终为小肠可消化氨基酸合理构成提供了参考依据。
1 材料与方法 1.1 试验动物和饲粮选用4只体况良好经产泌乳中期萨能奶山羊[产奶量(1.5±0.25) kg/d,体重(50±5) kg],试验前1个月做真胃插管(用于灌注氨基酸)手术,剥离颈动脉至皮下固定,安装血管插管(用于采集血样),乳静脉直接安装血管插管(用于采集血样),在左侧的外阴动脉上安装超声波血流量检测探头(MC6PSS-LS-WCS10-GC, 美国Transonic Systems公司)(记录乳腺血流量)。试验羊单独在代谢笼内饲养,通过自动喂料器每间隔2 h饲喂1次全价颗粒料,保证试验羊自由采食量,饲喂量:1号羊70.5 g/次,2号羊73.9 g/次,3号羊66.1 g/次,4号羊68.1 g/次。
试验羊基础饲粮参照英国AFRC(1993)[5]奶山羊饲养标准设计,制成颗粒饲料。试验期间,羊只限饲颗粒状基础饲粮,满足维持能量和蛋白质需要。基础饲粮组成及营养水平见表 1。
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表 1 基础饲粮组成及营养水平(干物质基础) Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (DM basis) |
采用4×4拉丁方试验设计,对照组(C)灌注全混合氨基酸,3个试验组分别灌注缺失Arg(-Arg)、Thr(-Thr)和His(-His)的混合氨基酸。试验共进行4期,每个试验期7 d,前4天为灌注期,后3天为采样期。
依据每期试验前3天记录的每只试验羊的产奶量,按照AFRC(1993)[5]计算泌乳需要的代谢能(ME)和代谢蛋白质(MP)。根据泌乳需要计算氨基酸灌注量(表 2)。真胃灌注葡萄糖和按瘤胃微生物蛋白氨基酸构成[6]配制的混合氨基酸,提供泌乳所需能量和蛋白质。全混合氨基酸组成见表 3。
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表 2 氨基酸灌注量 Table 2 The perfusion amount of AA |
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表 3 全混合氨基酸组成(占总氨基酸百分比) Table 3 Composition of total mixed amino acids (percentage in TAA) |
氨基酸灌注液和葡萄糖溶液均用生理盐水配制,用盐酸溶液和氢氧化钠溶液调整pH为7.4左右,将当天配制的灌注混合溶液倒入放于恒温磁力搅拌器上的烧杯中混匀,之后进行24 h连续真胃灌注。采样期在羊只颈动脉和乳静脉安装血管留置针以备采血,采集奶样,并测定血流量。
1.3 样品采集和测定每个采样期内,08:00和18:00为2个奶样采集时间点,奶样加双氧水数滴,-20℃冻存。奶样测定前,将奶样置于37℃水浴融化,使用红外乳成份分析仪(78110,美国Foss公司)测定乳糖、乳脂和乳蛋白产量,计算比率。利用液质联用外标法测定乳蛋白水解氨基酸浓度(液质联用仪,UPLC-MSMS,美国AB sciex公司)。
采血前1天用1:500肝素钠生理盐水浸泡20 mL注射器和连接留置针的静脉延长线。试验采用连续慢速采血方法,将留置针和注射器组成的自制采血装置连接到注射泵(W0109-1,河北保定兰格恒流泵有限公司),连续抽取10 mL/h,5 mL放于加有肝素钠的软管中,在3 000×g和4℃条件下离心15 min分离血浆,用于进行血成分分析;剩下的5 mL置于含有肝素钠(750 IU)的真空采血管中,将全血血样和血浆样均置于-20℃冷冻保存。血浆尿素氮﹑葡萄糖和总蛋白浓度采用全自动生化分析仪(7020,日本日立公司)测定;血浆一氧化氮(NO)浓度采用硝酸还原酶法测定(试剂盒购自南京建成生物工程研究所)。全血中的氨基酸浓度利用液质联用外标法测定(液质联用仪,UPLC-MSMS,美国AB sciex公司)。
血流量数据采集:超声波血流量检测探头(MC6PSS-LS-WCS10-GC, 美国Transonic Systems公司)全程测定外阴动脉血流量。
1.4 计算公式乳腺氨基酸清除率(L/d)=[(CA-CMV)/CMV]×MBF。
乳腺组织对全血中氨基酸吸收量(μmol/h)=(CA-CMV)×MBF/24。
乳腺吸收产出比=乳腺组织对全血中氨基酸吸收量(μmol/d)/乳氨基酸产量(μmol/d)。
氨基酸泌乳转化效率=乳氨基酸产量(μmol/d)/小肠中可吸收氨基酸的流量(μmol/d)。
式中:CA、CMV分别为氨基酸在颈动脉和乳腺静脉全血中的浓度(μmol/L),MBF为乳腺(阴外动脉)血流量(L/d),即单位时间内乳动脉中的血流量,用全期的平均值表示。
1.5 数据统计分析试验数据处理采用SAS 8.2下的Linear-Models-ANOVA的程序按拉丁方设计进行方差统计分析,采用Duncan氏法进行平均值的多重比较,统计的模型为:
Yijk=μ+αi+βj+γk+eijk。
式中:μ为随机变量,αi为分组影响变量,βj为时期影响变量,γk为动物影响变量,eijk为分组、时期及动物的交互作用。
统计结果给出由分组、时期及动物的3种P值,差异性显著依据处理P值判断,当P≤0.05时,表示差异显著;当0.05 < P≤0.10时,有差异的趋势。
2 结果 2.1 泌乳性能由表 4可见,缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对产奶量均无显著影响(P>0.05),对乳蛋白率和乳蛋白产量没有显著差异(P>0.05)。与C组相比,-Arg组乳脂率和乳脂产量显著上升(P≤0.05);-Arg组和-His组乳糖率显著下降(P≤0.05);-Arg组脂蛋白比显著上升(1.10 vs. 0.89,P≤0.05),-Thr组和-His组,脂蛋白比有升高趋势(0.05 < P≤0.10)。
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表 4 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊泌乳性能的影响 Table 4 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on lactation performance of lactating goats |
由表 5可见,缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对血浆葡萄糖、总蛋白和NO浓度都没有显著影响(P>0.05)。与C组相比,-Arg组总蛋白浓度有下降趋势(0.05 < P≤0.10),-Thr组有上升趋势(0.05 < P≤0.10);-Thr组尿素氮浓度显著上升(P≤0.05),-His组和-Arg组血浆尿素氮的浓度上升的趋势(0.05 < P≤0.10);-Thr组和Arg组乳腺血流量分别提高了22.2%和20.6%(P≤0.05)。
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表 5 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊血浆生化指标和乳腺血流量的影响 Table 5 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on plasma biochemical indices and MBF of lactating goats |
由表 6可见,与C组相比,-Arg组颈动脉血Arg浓度显著下降(P≤0.05);-Thr组Thr浓度显著下降(P≤0.05),同时His浓度显著上升(P≤0.05);-His组His的浓度没有显著变化(P>0.05)。
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表 6 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊颈动脉血氨基酸浓度的影响 Table 6 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on blood AA concentrations in jugular arteries of lactating goatsμmol/L |
由表 7可见,与C组相比,-Arg组乳静脉血Arg浓度有下降趋势(0.05 < P≤0.10);-Thr组Thr的浓度显著下降(P≤0.05),同时His的浓度显著上升(P≤0.05);-His组His的浓度没有显著变化(P>0.05)。
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表 7 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊乳静脉血氨基酸浓度的影响 Table 7 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on blood AA concentrations in breast veins of lactating goatsμmol/L |
由表 8可见,与C组相比,-Arg组Arg的乳腺清除率没有显著影响(P>0.05),但在数值上由178.34上升至224.56,提高了25.9%;-Thr组Thr的乳腺清除率显著上升(P≤0.05),由232.4上升到695.4,提高了199.2%,同时,His的乳腺清除率显著下降(P≤0.05);-His组His乳腺清除率无显著变化(P>0.05)。
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表 8 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊乳腺氨基酸清除率的影响 Table 8 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on AA clear rates of mammary glands of lactating goats |
由表 9可见,单一氨基酸缺失灌注对缺失该氨基酸的乳腺吸收量无显著影响(P>0.05)。与C组相比,-Thr组His的乳腺吸收量显著降低(P≤0.05)。
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表 9 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊乳腺氨基酸吸收量的影响 Table 9 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on AA absorbed amount of mammary glands of lactating goats |
由表 10可见,单一氨基酸缺失灌注对缺失氨基酸的乳腺吸收产出比无显著影响(P>0.05)。与C组相比,-Thr组His的乳腺吸收产出比显著下降(P≤0.05),Arg、Met、Leu、Phe、Ile和Asp的乳腺吸收产出比显著升高(P≤0.05),总EAA的乳腺吸收产出比由1.10上升到1.48(P≤0.05)。
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表 10 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊乳腺氨基酸吸收产出比的影响 Table 10 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on absorbed amount to yield of AA of mammary glands of lactating goats |
由表 11可见,与C组相比,-Arg组Arg的泌乳转化效率显著增高(P < 0.05),由4.02上升到5.04;-Thr组Thr的泌乳转化效率显著升高(P≤0.05),由9.09上升到12.23;-His组His的泌乳转化效率有上升的趋势(0.05 < P≤0.10)。
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表 11 缺失Arg、Thr和His的混合氨基酸灌注对泌乳山羊乳腺氨基酸泌乳转化效率影响 Table 11 Effects of infusion of mixed AA excluding Arg, Thr and His on AA conversion efficiency of lactation of mammary glands of lactating goats |
Bequette等[7-8]做的2项静脉灌注氨基酸缺失Leu和真胃灌注氨基酸缺失His的试验中,血流量分别提高了17%和36%。另有其他研究证明,当灌注氨基酸缺失或者不平衡时,乳腺血流量均显著升高或有升高的趋势[9]。本试验真胃灌注混合氨基酸单一缺失Arg或Thr,乳腺血流量均有显著的升高,分别升高了22.2%和20.6%,与以往报道结果相一致。但是,影响乳腺血流量的或许不是缺失氨基酸的直接作用。Bequette等[8]曾经提出,这种乳腺血流量的上升可能与供给乳腺的His浓度降低有关,因为His在乳腺中脱羧反应可以产生组胺,组胺具有收缩血管的作用,当乳腺阴外动脉中的His浓度降低时,乳腺组织合成的组胺减少,对血管的收缩作用便减弱,从而引起乳腺血流量的升高。而本试验中,缺失Thr虽使动脉中的His浓度显著升高,乳腺血流量仍有显著上升,证明His在乳腺血流量中的作用并不是决定性的。Weekes等[9]报道乳腺血流量的增加通常伴随着NO浓度的升高,NO作为血管舒张因子具有增加乳腺血流量的作用,本试验的血浆NO浓度变化也未与乳腺血流量有明显对应关系,特别是缺失Arg时,血浆NO浓度降低了38.3%,乳腺血流量反而增加了22.2%。因此,若是排出NO产生部位与采血部位的差异,排出试验方法造成的误差,本试验的结果也证明NO也并非乳腺血流量的决定性因素。至于当乳腺组织内的营养物质供给发生改变时,乳腺血流量的调控机理还有待进一步研究。
3.2 动静脉氨基酸浓度目前有很多研究已经证明,无论是静脉灌注还是真胃和十二指肠灌注,单一的氨基酸灌注,往往造成该氨基酸的动脉浓度升高,相反地,单一氨基酸的缺失灌注试验,可以造成该氨基酸的动脉浓度降低。Bequette等[8]通过对泌乳山羊的真胃灌注全混合氨基酸溶液发现,全混合氨基酸溶液中缺失His,可以使His的动脉浓度从73μmol/L下降到8μmol/L,而其余大部分氨基酸动脉浓度并没有显著变化。Cant等[10]的1项泌乳奶牛的灌注试验中,向髂动脉灌注的缺失His的混合氨基酸溶液,在灌注速度达到30 g/d时,His的动脉浓度显著降低,由42μmol/L降到13μmol/L,这与本试验的研究结果基本一致。Arg或Thr的缺失,使其动脉浓度均显著下降,只有His的动脉浓度没有显著影响。研究其原因,Bequette等[8]在做缺失His灌注试验时,全混合氨基酸组的His的灌注量为4.4 g/d, His的灌注量增加了250%。而Korhonen等[11]的灌注试验,在0到2 g/d的梯度灌注下,His浓度也变化不显著。本试验全混合氨基酸溶液中氨基酸组成参照山羊瘤胃微生物蛋白中氨基酸的组成[6],灌注His量为0.60~1.06 g,加上试验饲粮中过瘤胃His的影响,因此没有引起His动脉浓度的显著变化。
Bequette等[8]研究总结表明,乳腺静脉中氨基酸的浓度与其在动脉的浓度相关性很强,即静脉氨基酸浓度会随动脉浓度的变化而变化。本试验也验证了这一点,Thr的静脉浓度随动脉浓度的降低而显著降低,缺失Arg,静脉血中游离Arg的浓度也有下降的趋势。
3.3 乳腺氨基酸代谢乳腺对乳动脉中氨基酸清除率可以反映乳腺组织对氨基酸的吸收利用情况。乳腺氨基酸清除率综合了乳腺氨基酸动静脉差和乳腺血流量上的变化,比乳腺氨基酸吸收率更能说明乳腺对氨基酸的吸收利用情况。Bequette等[7]报道的静脉灌注氨基酸缺失Leu试验中,Leu缺失使动脉浓度由94.0μmol/L下降到72.6μmol/L,静脉浓度由54.4μmol/L降到35.9μmol/L,Leu的乳腺吸收率由52%上升到71%。Bequette等[8]报道的真胃灌注混合氨基酸缺失His的试验中,His的动脉浓度显著下降,由73μmol/L下降到8μmol/L,其乳腺清除率显著提高了43倍,而其他氨基酸乳腺清除率降低至1/3~1/2。因此,氨基酸的供给缺失或不平衡时,乳腺可以通过对氨基酸吸收能力的改变,提高氨基酸的清除率,实现对氨基酸供应变化的自身调节。本试验中,真胃灌注缺失Arg的混合氨基酸,Arg的乳腺清除率没有显著变化,但在数值上由178.34上升至224.56,提高了25.9%。真胃灌注缺失Thr的混合氨基酸,Thr的乳腺清除率显著上升,由232.4上升到695.4,提高了199.2%。因此,当氨基酸缺失导致单一氨基酸动脉浓度降低时,乳腺提高对缺失氨基酸的吸收转运能力。
乳腺对氨基酸的吸收量,就是乳腺通过自身的调节能力,提高了氨基酸的转运吸收能力的最直观的结果。目前的观点是,乳腺对EAA的吸收量,一定程度上不受氨基酸缺失的影响,可以通过自身的调节维持稳定。Bequette等[7]报道的静脉灌注氨基酸缺失Leu试验中,Leu缺失使动脉浓度由94μmol/L显著下降到72.6μmol/L,但是乳腺对Leu的氨基酸的净吸收量却没有显著变化。Bequette等[8]在1项真胃灌注混合氨基酸缺失His的试验中,His的动脉浓度显著下降,由73μmol/L下降至8μmol/L,乳腺对His的净吸收量仍然没有显著变化,只在原有基础上有少许下降。本试验所做的氨基酸灌注单一缺失试验,乳腺对该氨基酸的吸收量均没有随动脉中其浓度的下降而显著变化,在一定程度上维持稳定,印证了乳腺对氨基酸的吸收与血浆氨基酸浓度无关的论点。乳腺对氨基酸的吸收转运具有高效性,但吸收和转运不是限制乳蛋白合成的关键性步骤[12]。
综上所述,当供给乳腺的某种氨基酸缺失时,乳腺可以通过提高血流量,提高对该氨基酸自身的清除率,显著地提高对该氨基酸的吸收能力,以消除或至少是缓解由于某种氨基酸缺失而造成的用以乳腺合成乳蛋白的营养底物的缺失状态。这也与Bequette等[8]和Mackle等[13]提出的,乳腺能够根据自身需要来调节血流量和氨基酸的转运能力,用以满足泌乳的需要的观点相一致。
本试验中,灌注缺失Thr的混合氨基酸,His的乳腺吸收产出比显著下降,Arg、Met、Leu、Phe、Ile和Asp的乳腺吸收产出比显著升高,总EAA的乳腺吸收产出比由灌注全混合氨基酸的1.10上升到1.48。考虑到之前所述,Thr的缺失使His的动脉浓度显著上升,His的乳腺吸收率显著降低,His的吸收量显著下降,应该是Thr的缺失,严重阻碍了乳腺上皮细胞对His的吸收,致使His的吸收量显著下降,致使His成为合成乳蛋白的限制性因素,乳蛋白合成的产量降低,用于乳蛋白合成的EAA也降低,而乳腺吸收的多余的EAA,则被氧化代谢或参与其他非泌乳性功能,致使其他EAA的乳腺吸收产出比上升。Thr缺失,影响乳腺对His吸收的机制仍不明确。
另外,本试验测得乳腺内EAA的乳腺吸收产出比变化差异很大。Arg的乳腺吸收产出比最高(2.77~4.38),His的乳腺吸收产出比均小于1。Raggio等[14]发现,在高供给量下,His的乳腺吸收量等于净内脏流量,低供应量下则低于净内脏流量,供给量可能无法满足泌乳需要。这就表明,在低供应量下,需要来自含His肽或蛋白质的内源补充。本试验His的乳腺对游离组氨酸的吸收量远低于乳腺分泌到乳中的His总量,便有可能与His肽或蛋白质的内源补充的有关。
3.4 泌乳性能目前,在灌注混合氨基酸单一缺失氨基酸,对产奶量、乳蛋白率和乳蛋白产量的影响结果并不一致。Doepel等[15]真胃灌注混合氨基酸缺失Arg,Arg的吸收量显著下降,但在产奶量、乳蛋白率和乳蛋白产量上均无显著差异。Bequette等[7]用颈静脉灌注缺失Leu的混合氨基酸发现,动脉血中Leu的浓度显著下降,却未影响Leu的动静脉浓度差和Leu的乳腺吸收量,对产奶量和乳蛋白产量也均无影响。但是Bequette等[8]真胃灌注缺失His的研究中,缺失His,流入乳腺的His量和流出乳腺的His量均显著降低,但是流出乳腺的减少量了不足以抵消流入乳腺的减少量,最终使乳蛋白率显著降低,产奶量也有降低的趋势。乳蛋白的产量由118 g/d将至97 g/d。不同是试验结果很有可能与饲粮的干扰有关,存在基础饲粮提供的氨基酸已经满足需要的可能,所以不能达到氨基酸缺失的目的。本试验的灌注混合氨基酸单一缺失氨基酸对产奶量,乳蛋白率和乳蛋白产量的影响均不显著,排除饲粮影响,试验结果印证了乳腺强大的自身调节能力。但应注意的是,缺失Thr的下降,虽未影响乳腺对Thr的吸收量,但是His的吸收量显著下降,成为乳腺乳蛋白合成过程中的限制因素,限制了乳蛋白合成与分泌,所以乳蛋白的产量在数值上有所降低。
氨基酸不平衡常导致乳脂率升高,脂蛋白比升高[9-10, 16]。氨基酸缺失和不平衡导致脂蛋白比增加的原因可能有2个:首先,氨基酸缺失时,乳腺血流量大幅增加,导致单位时间到达乳腺的乳脂合成底物增加,乳脂合成增加;其次,当某些氨基酸缺失时乳腺内乳蛋白合成减少,相对多余的其他氨基酸在乳腺内转化为乳脂合成底物,促进乳脂的合成。本试验中,缺失Arg的混合氨基酸灌注,乳脂率和乳脂产量显著上升,脂蛋白比显著上升(0.89 vs. 1.01);缺失Thr和His的混合氨基酸灌注,脂蛋白比虽变化不显著,但有升高趋势。所以脂蛋白比可以从一定程度上反映动物吸收氨基酸的平衡情况。
3.5 泌乳转化效率根据康奈尔模型推测,真胃灌注混合氨基酸单一缺失Arg、Thr和His,分别使小肠可消化氨基酸流量下降18.4%(57.8 mmol/d vs. 47.2 mmol/d)、41.7%(53.2 mmol/d vs. 31.0 mmol/d)和19.6%(23.1 mmol/d vs. 18.7 mmol/d);乳动脉氨基酸流量分别下降3.4%(13.9 mmol/d vs. 13.4 mmol/d)、34.8%(10.1 mmol/d vs. 6.6 mmol/d)和14.7%(5.2 mmol/d vs. 4.4 mmol/d);泌乳转化效率分别提高25.4%(4.02 vs. 5.04)、34.5%(9.09 vs. 12.23)和14.6%(10.51 vs. 12.04)。试验结果显示,内脏组织对Arg、Thr和His缺失均有缓冲作用,可能的原因是氨基酸缺失,使肝脏(对His)或胰腺(对Thr)等内脏组织的氨基酸分解代谢作用减弱造成的。其中Arg的缓冲作用最为明显,很有可能与肾脏的Arg从头合成有关。氨基酸缺失均可以提高氨基酸的泌乳转化效率,表明了氨基酸在泌乳转化效率方面潜力很大,Arg的潜力可能更大一些,可能的原因有2个:首先,Arg体内合成可以补充灌注造成的缺失;其次,Arg的乳腺吸收产出比较高,吸收量远大于乳中的产出量,乳腺可以通过降低乳腺内的Arg氧化代谢水平,提高Arg的泌乳转化效率。
4 结论①真胃灌注混合氨基酸单一缺失Arg、Thr和His,对产奶量、乳蛋白率没有显著影响,对乳腺该氨基酸吸收量无显著影响,表明乳腺在氨基酸吸收转运方面具有自我调节能力。
②真胃灌注混合氨基酸单一缺失Arg、Thr和His,可以提高该氨基酸的泌乳转化效率。
③真胃灌注混合氨基酸单一缺失Thr,显著升高了Thr的乳腺清除率,而单一缺失Arg和His对该氨基酸的乳腺清除率无显著影响。
[1] |
BERTHIAUME R, THIVIERGE M C, PATTON R A, et al. Effect of ruminally protected methionine on splanchnic metabolism of amino acids in lactating dairy cows[J].
Journal of Dairy Science, 2006, 89(5): 1621–1634.
(![]() |
[2] |
BEQUETTE B J, HANIGAN M D, LAPIERRE H.Mammary uptake and metabolism of amino acids by lactating ruminants[M]//D'MELLO J P F.Amino acids in animal nutrition.Cambridge:CABI Publishing, 2003:347-365.
(![]() |
[3] |
CANT J P, BERTHIAUME R, LAPIERRE H, et al. Responses of the bovine mammary glands to absorptive supply of single amino acids[J].
Canadian Journal of Animal Science, 2003, 83(3): 341–355.
(![]() |
[4] |
MABJEESH S J, KYLE C E, MACRAE J C, et al. Lysine metabolism by the mammary gland of goats at two stages of lactation[J].
Journal of Dairy Science, 2000, 83(5): 996–1003.
(![]() |
[5] |
AFRC.Agricultural and food research council[S].Wallingford:CAB International, 1993.
(![]() |
[6] |
甄玉国.内蒙古白绒山羊氨基酸利用和蛋白质周转规律的研究[D].博士学位论文.呼和浩特:内蒙古农业大学, 2002.
(![]() |
[7] |
BEQUETTE B J, BACKWELL F R C, MACRAE J C, et al. Effect of intravenous amino acid infusion on leucine oxidation across the mammary gland of the lactating goat[J].
Journal of Dairy Science, 1996, 79(12): 2217–2224.
(![]() |
[8] |
BEQUETTE B J, HANIGAN M D, CALDER A G, et al. Amino acid exchange by the mammary gland of lactating goats when histidine limits milk production[J].
Journal of Dairy Science, 2000, 83(4): 765–775.
(![]() |
[9] |
WEEKES T L, LUIMES P H, CANT J P. Responses to amino acid imbalances and deficiencies in lactating dairy cows[J].
Journal of Dairy Science, 2006, 89(6): 2177–2187.
(![]() |
[10] |
CANT J P, TROUT D R, QIAO F, et al. Milk composition responses to unilateral arterial infusion of complete and histidine-lacking amino acid mixtures to the mammary glands of cows[J].
Journal of Dairy Science, 2001, 84(5): 1192–1200.
(![]() |
[11] |
KORHONEN M, VANHATALO A, VARVIKKO T, et al. Responses to graded postruminal doses of histidine in dairy cows fed grass silage diets[J].
Journal of Dairy Science, 2000, 83(11): 2596–2608.
(![]() |
[12] |
HUHTANEN P, VANHATALO A, VARVIKKO T. Effects of abomasal infusions of histidine, glucose, and leucine on milk production and plasma metabolites of dairy cows fed grass silage diets[J].
Journal of Dairy Science, 2002, 85(1): 204–216.
(![]() |
[13] |
MACKLE T R, DWYER D A, INGVARTSEN K L, et al. Evaluation of whole blood and plasma in the interorgan supply of free amino acids for the mammary gland of lactating dairy cows[J].
Journal of Dairy Science, 2000, 83(6): 1300–1309.
(![]() |
[14] |
RAGGIO G, PACHECO D, BERTHIAUME R, et al. Effect of level of metabolizable protein on splanchnic flux of amino acids in lactating dairy cows[J].
Journal of Dairy Science, 2004, 87(10): 3461–3472.
(![]() |
[15] |
DOEPEL L, LAPIERRE H. Deletion of arginine from an abomasal infusion of amino acids does not decrease milk protein yield in Holstein cows[J].
Journal of Dairy Science, 2011, 94(2): 864–873.
(![]() |
[16] |
VARVIKKO T, VANHATALO A, JALAVA T, et al. Lactation and metabolic responses to graded abomasal doses of methionine and lysine in dairy cows fed grass silage diets[J].
Journal of Dairy Science, 1999, 82(12): 2659–2673.
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