2. 农业部华南水产与畜禽饲料重点实验室, 湛江 524000
2. Key Laboratory of Aquatic, Livestock and Poultry Feed Science and Technology in South China, Ministry of Agriculture, Zhanjiang 524000, China
多鳞
高不饱和脂肪酸(highly unsaturated fatty acids,HUFAs)是指碳原子数目≥20且双键数目≥3的一类不饱和脂肪酸。根据甲基端第1个双键所连碳原子的位置,可将高不饱和脂肪酸分为n-3、n-6等系列,其中n-3HUFA主要包括二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳六烯酸(DHA)。n-3HUFA的生理功能主要包括:1)抑制促炎症因子产生,抑制炎症反应,减轻疾病症状;2)视网膜的重要结构成分,对视力发育有促进作用;3)作为细胞膜的重要组成成分,可影响甚至决定细胞膜的功能,同时可影响细胞膜的流动性,对细胞之间的信号传递起到重大的作用等[2-4]。在海水鱼中,EPA、DHA是类花生酸等高活性旁分泌激素类的前体[5],参与生理功能的调控。已有的报道证明,多数淡水鱼具有合成EPA和DHA的能力,饲料中只需补充其合成原料亚麻酸即可满足其对n-3HUFA的需要[6]。对于缺乏脂肪酸延长和去饱和能力的海水鱼而言,n-3HUFA则是其必需脂肪酸[6]。饲料中添加n-3HUFA能提高海水鱼的生长性能,有利于脂类代谢平衡,加强机体免疫功能[7-10]。
多鳞
以鱼粉、小麦谷朊粉等为蛋白质源,鱼油和玉米油为脂肪源,调整饲料中玉米油和鱼油的含量,配制n-3HUFA水平分别为0.53%、0.80%、1.22%、1.62%、2.12%和2.56%的6组等氮等能饲料,试验饲料组成及营养水平见表 1,试验饲料脂肪酸组成见表 2。饲料原料粉碎后过60目筛,根据饲料配方称取各原料。饲料制作过程中,微量成分采用逐级扩大法混合均匀,再添加不同含量的鱼油和玉米油并搅拌均匀,然后添加30%~40%的水制成团状,用双螺杆挤条机制成粒径为1.5 mm的饲料,在阴凉干燥环境中风干后封口带密封,-20 ℃保存。
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表 1 试验饲料组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis) |
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表 2 试验饲料脂肪酸组成(占总脂肪酸的百分比) Table 2 Fatty acid composition in experiment diets (percentage of total fatty acids) |
养殖试验在湛江市东海岛广东海洋大学海洋生物研究基地进行。试验所用的多鳞
试验前多鳞
养殖试验结束禁食24 h后取样。每桶鱼用丁香酚麻醉后称重,计数,计算生长指标。每桶随机选5尾鱼量取体长、称体重、肝脏重,计算形态学指标。再取5尾鱼,吸干体表水分,编号于-20 ℃冰箱中保存,备测常规成分。另取10尾鱼心脏采血,血液置于1.5 mL离心管中于-20 ℃冰箱过夜后4 000 r/min离心10 min,取上清液置于-80 ℃备用,待测血清生化指标。剖取肝脏及肌肉,液氮冷存,然后转移至-80 ℃冰箱,备测肝脏酶活性及肝脏和肌肉脂肪酸含量。
1.3.2 常规成分分析全鱼和饲料常规成分采用国际标准方法[12]进行分析。样品在105 ℃下烘干测定水分含量,凯氏定氮仪(KjeltecTM 8400,瑞典)测定样品中粗蛋白质含量,索氏抽提法(抽提剂为石油醚)测定样品中粗脂肪含量,550 ℃马弗炉灼烧法测定样品中粗灰分含量。
1.3.3 脂肪酸含量分析测定根据GB/T 21514—2008进行脂肪酸含量的测定,原理为用氢氧化钠-甲醇溶液皂化,皂化物与三氟化硼-甲醇溶液反应生成脂肪酸甲酯。用毛细管气相色谱分离,色谱峰用已知组成的标准品进行鉴定,以内标法定量。
1.3.4 血清生化指标测定使用全自动生化分析仪(日立7600-110型)测定血清中甘油三酯(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、总胆固醇(T-CHOL)含量及谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)活性,所需试剂盒均购自南京威特曼生物科技有限公司。
1.3.5 组织酶活性测定肝脏中的过氧化氢酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)、碱性磷酸酶(AKP)、酸性磷酸酶(ACP)活性均使用南京建成生物工程研究所提供的试剂盒测定,测定步骤按试剂盒说明书进行。
1.4 生长指标和形态学指标计算公式
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试验数据用平均值±标准差表示,采用SPSS 20.0对试验数据进行单因素方差分析(one-way ANOVA),若有显著性差异则进行Duncan氏法多重比较,P < 0.05表示差异显著。
2 结果 2.1 饲料n-3HUFA水平对多鳞
由表 3可见,WGR随着饲料n-3HUFA水平增加呈现先上升后下降趋势,2.12%组最高,显著高于0.53%组和0.80%组(P < 0.05),与其他各组差异不显著(P > 0.05)。SGR随着饲料n-3HUFA水平增加呈现先上升后下降的趋势,2.12%组最高,显著高于0.53%组和2.56%组(P < 0.05),与其他各组差异不显著(P > 0.05)。FCR随着n-3HUFA水平的增加呈现先下降后上升的趋势,2.12%组最低,显著低于0.53%组(P < 0.05),与其他各组差异不显著(P > 0.05)。各组之间SR没有显著差异(P > 0.05)。随着饲料n-3HUFA水平的增加,HSI呈现出先下降后稳定的趋势,在2.12%组达到最低值,显著低于0.53%组和0.80%组(P < 0.05),与其他各组无显著差异(P > 0.05);而CF则呈现出先上升后下降的趋势,在2.12%组达到最大值,显著高于除1.62%组外的其他各组(P < 0.05)。
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表 3 饲料n-3HUFA水平对多鳞![]() |
由图 1可见,以WGR为依据,折线模型得出多鳞
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图 1 饲料n-3HUFA水平与多鳞![]() |

由表 4可见,各组之间全鱼水分、粗蛋白质、粗灰分含量无显著差异(P > 0.05)。随着饲料n-3HUFA水平的增加,全鱼粗脂肪含量呈现先上升后下降的趋势,1.62%组和2.12%组之间全鱼粗脂肪含量无显著差异(P > 0.05),但显著高于其他各组(P < 0.05),其他各组之间无显著差异(P > 0.05)。
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表 4 饲料n-3HUFA水平对多鳞![]() |

由表 5可见,饲料HUFA水平在0.53%~1.62%之间时,血清HDL-C含量显著上升(P < 0.05),2.56%组血清HDL-C含量显著高于除2.12%组外的其他各组(P < 0.05)。血清LDL-C含量则是先上升后逐渐下降,在0.80%组达到最大值并显著高于其他各组(P < 0.05)。血清ALT、AST活性呈现出先下降后上升再下降的趋势,血清ALT活性在1.22%组达到最低值并显著低于其他各组(P < 0.05),血清AST活性则在0.80%组达到最低值并显著低于其他各组(P < 0.05)。随着饲料n-3HUFA水平的增加,血清T-CHOL含量呈先上升后下降并稳定的趋势,血清TG含量呈先上升后下降的趋势;0.53%组的血清T-CHOL、TG含量显著低于其他各组(P < 0.05),0.80%组的血清T-CHOL、TG含量显著高于其他各组(P < 0.05)。
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表 5 饲料n-3HUFA水平对多鳞![]() |

由表 6可见,各组之间的血清SOD和ACP活性没有显著差异(P > 0.05)。2.12%组和2.56%组之间的血清AKP活性无显著差异(P > 0.05),但显著低于除1.62%组外的其他各组(P < 0.05)。1.62%组的血清CAT活性最低,与1.22%组和2.12%组无显著差异(P > 0.05),但显著低于其他各组(P < 0.05)。
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表 6 饲料n-3HUFA水平对多鳞![]() |

由表 7可见,多鳞
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表 7 饲料n-3HUFA水平对多鳞![]() |
由表 8可见,随着饲料n-3HUFA水平的提高,肌肉C18:2n-6、C20:4n-6含量呈降低趋势,2.12%组和2.56组显著低于其他各组(P < 0.05);肌肉C20:5n-3、C22:6n-3含量呈升高趋势,2.56%组显著高于其他各组(P < 0.05);肌肉C16:0含量呈先升高后稳定趋势,在1.22%组达到最高。肌肉C16:1n-9含量在1.62%组达到最高。
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表 8 饲料n-3HUFA水平对多鳞![]() |

已有研究表明,适宜水平的n-3HUFA可促进海水鱼生长,提高饲料利用率[13]。各动物之间适宜n-3HUFA水平差异较大。饲料n-3HUFA水平为0.85%时,黑鲷(Sparus macrocephalus)幼鱼有最高的WGR[14]。常杰等[15]报道,饲料n-3HUFA水平为0.75%时能显著提高细鳞鲑(Brachymystax lenok)的WGR、SGR。Kim等[16]建议牙鲆(Paralichthys olivaceus)饲料n-3HUFA水平应在0.8%~1.0%。饲料n-3HUFA水平为0.98%时可显著提高大黄鱼(Larmichthys crocea)的生长性能[17]。饲料n-3HUFA水平为1%时可使金头鲷(Sparus aurata)幼鱼有最佳的生长性能和饲料效率[18]。饲料n-3HUFA水平分别为2.53%和3.93%时,斜带石斑鱼(Epinephluscoioides)幼鱼和中鱼有最高SGR[19]。本试验结果表明,饲料n-3HUFA水平显著影响多鳞
黄斑蓝子鱼(Siganus canaliculatus)[20]、俄罗斯鲟(Acipenser gueldenstaedti)幼鱼[21]的研究中发现,不同的饲料n-3HUFA水平对黄斑篮子鱼WGR、SGR和FCR均无显著影响,且随着饲料n-3HUFA水平的增加,HSI呈现出先上升后下降的趋势。试验结果的不同可能与试验鱼的食性差异有关,植性食物亚油酸含量较亚麻酸丰富,从而使得植食性鱼类形成对饲料中亚油酸的需求,黄斑蓝子鱼作为植食性鱼类,n-3HUFA的变化对其生长性能等的影响较小或无影响。试验鱼种也影响试验结果,部分鱼类如大西洋鲑(Salmo salar)[22]可以将18:2n-6合成EPA、DHA,且合成能力受环境等因素影响。在本次试验中,随着饲料n-3HUFA水平的增加,多鳞

本试验中,饲料n-3HUFA水平对多鳞

血清生化指标可作为衡量机体健康状况的指标,通过对血液的检测可了解机体的营养、代谢与疾病等情况。刘玉军等[35]研究发现,DHA可有效降低高脂血患者血清T-CHOL和TG含量。EPA和DHA可显著降低蛋鸡血清T-CHOL含量[36]。EPA和DHA可抑制机体T-CHOL和TG合成,降低其在人类血清中的含量[37]。EPA和DHA可改善血液循环,降低能诱发动脉硬化和血栓的低密度脂蛋白的含量[38]。本试验中,多鳞

在机体内,SOD、CAT与过氧化物酶POD组成体内活性氧防御系统,能有效地清除体内超氧自由基、过氧化氢及其他过氧化物[41]。CAT在机体内参与活性氧代谢过程,可催化细胞内过氧化氢的分解,维持自由基代谢平衡,防止过氧化对机体造成损伤[42]。AKP作为一种非特异性磷酸单酯酶,可催化所有磷酸单酯的水解并生成磷酸根离子和自由羟基[43],当存在于肝脏中时可参与肝细胞的排泄功能[44]。在本试验中,饲料n-3HUFA水平不影响肝脏SOD和ACP活性。但饲料n-3HUFA水平由0.80%增加到1.62%时,多鳞

饲料n-3HUFA水平可显著影响试验对象组织中脂肪酸含量[46-50],组织脂肪酸的组成能一定程度上反映饲料脂肪酸组成[51]。本试验中,随着饲料n-3HUFA水平的增加,多鳞
本试验条件下,各测定指标表明饲料中添加1.62%~2.12%的n-3HUFA能促进多鳞
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