2. 高原山地动物遗传育种与繁殖教育部重点实验室(贵州大学), 贵阳 550025;
3. 宁波大学海洋学院, 宁波 315211;
4. 中国水产科学研究院 黑龙江水产研究所, 哈尔滨 150070;
5. 北京市水产技术推广站, 北京 100176;
6. 贵州省动物疫病与兽医公共卫生重点实验室, 贵阳 550025
2. Breeding and Reproduction in The Plateau Mountainous Region, Ministry of Education(Guizhou University), Guiyang 550025, China;
3. University Faculty of Marine Sciences, Ningbo University, Ningbo 315211, China;
4. Heilongjiang River Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Harbin 150070, China;
5. Beijing Fisheries Technical Extention Station, Beijing 100176, China;
6. Key Laboratory of Animal Diseases and Veterinary Public Health in Guizhou Province, Guiyang 550025, China
虹鳟(Oncorhynchus mykiss)是我国重要冷水性经济鱼类[1]。近年来,随着虹鳟人工繁育和养殖技术的不断成熟,其养殖规模也不断扩大,当前我国虹鳟年产量已达到37 000 t[2]。我国虹鳟养殖的主要模式为集约化流水养殖及网箱养殖[3],该模式虽可获得较高的单产,但肌肉品质降低已是不争的事实。这成为限制虹鳟食用消费和加工利用的重要因素,也制约了虹鳟养殖产业的健康发展。随着人们生活水平的提高,人们也开始对虹鳟的肌肉品质提出了更高的要求。鉴于此,科研人员也在不断的探寻改善虹鳟肌肉品质的方法。已有学者通过调节水体盐度[4]、调节投喂机制[5],以及在基础饲料中添加虾青素、角黄素[6]、茶多酚[7]、蛋白酶[8]等方法对虹鳟肌肉品质进行改良。目前,天然植物作为饲料添加剂,以多功能性、天然性和绿色环保性的特点更加受到人们的重视,亦是研究方向之一。
杜仲(Eucommia ulmoides Oliver)属杜仲科,杜仲属,是我国重要的中草药资源,其资源丰富。杜仲中富含112种活性物质,其中绿原酸、桃叶珊瑚甙、京尼平苷和京尼平苷酸被认为是主要的活性成分[9-10]。在传统的中医学中,杜仲具有补肝肾、强筋骨、除腰膝酸痛、延缓衰老、改善糖代谢等功效[11]。杜仲除了在医学上得到广泛应用外,针对畜禽和水产动物的研究也逐渐成为热点。相关研究表明,杜仲及其主要活性物质绿原酸、京尼平苷和京尼平苷酸等具有提高猪[12-13]、鸡[14]、草鱼[15-18]、异育银鲫[19]、罗非鱼[20]、鲤鱼[21]等养殖动物生长性能、增强机体免疫机能、改善肌肉品质等功效。目前,尚未见杜仲在虹鳟饲料中应用的报道,因此,本试验以虹鳟为研究对象,通过在基础饲料中添加不同浓度杜仲皮水提物,探讨其对虹鳟生长和肌肉品质、质构特性的影响,以期为杜仲在水产饲料添加剂中的应用提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 试验设计和试验饲料选取体质健康、个体大小均匀、平均体重(145.56±4.12) g的虹鳟450尾,随机分为5个组,每组3个重复,每个重复30尾。各组分别在基础饲料中添加浓度为0(对照组)、0.5%、1.0%、2.0%和4.0%的杜仲皮水提物。以山东升索渔用饲料研究中心生产的商业虹鳟饲料(粗蛋白质含量为42.0%,粗脂肪含量为18.0%,粗灰分含量为8%,粗纤维含量为6%)作为基础饲料,基础饲料经粉碎、过40目筛后称重备用。
试验用杜仲树皮(以下称杜仲皮)采购于贵州省贵阳市援生医院(产地:四川省古蔺县),经研磨机制成粉末,过60目筛网,分别称取杜仲皮粉末0、5.0、10.0、20.0和40.0 g,分别放入1 000 mL的蒸馏水中煮沸4 h,经尼龙滤网(300目)过滤,获取滤液,将滤液浓缩至100 mL,获取杜仲皮水提物,杜仲皮水提物主要营养组成及活性物质含量见表 1。将100 mL不同质量分数杜仲皮水提物和300 mL蒸馏水与1 kg已粉碎的基础饲料混匀,经制粒机制作成直径1 mm的颗粒饲料,风干,保存在-20 ℃的密封塑料袋中备用。
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表 1 杜仲皮水提物主要营养组成及活性物质含量 Table 1 Main nutritional component and active substance content of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract |
试验在贵州丽水生态农业有限公司大山三文鱼养殖场进行,共计15口网箱,分别置于3口室外流水水泥池中(18 m×3.8 m×1.2 m)。网箱规格为1.0 m×1.0 m×1.2 m,有效水体积为600 L,每口网箱投放30尾虹鳟。
在自然光照条件下,养殖10周,每日投喂4次,缓慢投喂(每隔5 min投喂1次),连续投喂至饱食为准。投喂时间分别为09:00、12:00、15:00和18: 00。试验过程主要水质参数如下:流速为0.04 m/s,水温为12.8~14.1 ℃,溶氧浓度≥7.5 mg/L,氨氮浓度 < 0.05 mg/L,pH 7.6~8.4。
1.3 测定指标与方法 1.3.1 生长性能饲养试验开始及结束时称量鱼体重量,称量前鱼体饥饿24 h,逐网箱称重并计数,计算下列指标:
增重率(WG,%)=100×(末重-初重)/初重。
成活率(SR,%)=100×试验末鱼尾数/试验初鱼尾数。
特定生长率(SGR,%/d)=100×(ln终末均重-ln初始均重)/试验天数。
1.3.2 杜仲皮水提物成分测定干物质含量采用常压干燥法,在105 ℃的烘箱中烘至恒重;采用凯氏定氮法(GB/T 6432—1986)测定粗蛋白质含量;采用索氏抽提法(GB/T 5009.6—2016)测定粗脂肪含量;采用550 ℃灼烧法(GB/T 5009.4—2016)测定粗灰分含量。
杜仲皮水提物经处理后用高效液相色谱仪进行检测。色谱柱为资生堂CAPCELL PAK-C18(柱长250 mm×内径2.5 mm,粒径5 μm);流动相:0.5%乙酸水溶液-甲醇,洗脱条件:0~20 min,15%~15%甲醇;20~25 min,15%~25%甲醇;25~40 min,25%~30%甲醇;45~50 min,30%~50%甲醇。流速为1 mL/min。柱温为25 ℃,检测波长为203 nm,进样量为5 μL。
1.3.3 肌肉pH测定肌肉pH按照GB/T 5009.237—2016进行测定,具体测定方法为:每口网箱随机选取接近平均体重的虹鳟2尾,取右侧侧线上方背鳍后方的白肌用于pH测定。样品4 ℃放置45 min,取10 g肌肉制备肉浸液,采用pH计(奥豪斯-2100,美国)测定pH,记为pH45 min;样品4 ℃保存24 h后取10 g肌肉制备肉浸液,再次测定pH,记为pH24 h。
pH下降率(%)=[(pH45 min-pH24 h)/pH45 min]×100。
1.3.4 肌肉系水力试验采用滴水损失、离心失水率和冷冻渗出率反映肌肉系水力,参照Srikanchai等[22]、Barrera等[23]的方法测定,并作修改,具体方法为:每口网箱随机选取接近平均体重的虹鳟2尾,采集右侧背鳍以下、侧线以上的白肌,称取5 g的肌肉吊挂于自封袋中,放在4 ℃冰箱中24 h后称重,计算滴水损失;称取5 g肌肉放入-20 ℃冰箱24 h后用吸水纸擦干表面称重,计算冷冻渗出率;称取5 g肌肉,然后用滤纸把肌肉包好放在离心管中(离心管的底部需要垫有适当的吸水纸),室温4 000 r/min,离心20 min,取出肉样,再用吸水纸把肌肉表面的水分吸干后称重,计算离心失水率。
1.3.5 质构特性每口网箱随机选取接近平均体重的虹鳟2尾,去皮、去内脏后,取左侧背鳍前方侧线上方的白肌,将其修整为1.0 cm×1.0 cm×0.5 cm的块状,采用美国BrookFIELD CT3-1000型质构分析仪通过质地剖面分析法(textureprofile analysis, TPA)进行测定,探头为TA4A000,直径38.1 mm,测前速率、测中速率和测后速率均为1 mm/s,测定间隔时间为5 s,压缩比为50%,触发力为98 mN,数据获得速率为100.00 pps。检测其肌肉的弹力、硬度、黏性、弹性、胶着性、咀嚼性、内聚性等指标。
1.3.6 肌肉组织学每口网箱随机选取接近平均体重的虹鳟2尾,分别从鱼体左侧背鳍下方和臀鳍上方侧线以上位置取下白肌,切块(大小约1.0 cm×1.0 cm×0.5 cm),放入肌肉固定保存液(4%多聚甲醛),石蜡包埋、切片(徕卡RM2016,德国),用苏木精-伊红染色以观察肌肉形态。用数码三目摄像显微镜(BA400Digital,麦克奥迪实业集团有限公司)对肌肉横截面拍照,每个样品选3个区域拍照10张。用图像分析软件Motic Images Advanced 3.2来分析肌肉图片的肌纤维特性。肌纤维密度通过每个样品至少数300根来计算(40倍镜下),肌纤维直径通过数300根肌纤维来计算(40倍镜下),以尽可能的减少误差。
1.4 数据统计与方法试验数据以平均值±标准差(mean±SD)表示,采用SPSS 19.0软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA),差异显著时,用Duncan氏法多重检验分析组间差异显著性,显著性为P < 0.05。
2 结果 2.1 杜仲皮水提物对虹鳟生长性能的影响由表 2可见,各组之间的终末体重、增重率、成活率和特定生长率均无显著差异(P>0.05)。
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表 2 杜仲皮水提物对虹鳟生长性能的影响 Table 2 Effects of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract on growth performance of rainbow trout |
由表 3可见,各组之间的肌肉pH45 min、pH24 h均无显著差异(P>0.05)。2.0%组肌肉pH下降率显著低于对照组(P < 0.05),4.0%组肌肉pH下降率显著低于0.5%、1.0%和对照组(P < 0.05)。
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表 3 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉pH的影响 Table 3 Effects of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract on muscle pH of rainbow trout |
由表 4可见,各组之间的肌肉离心失水率、冷冻渗出率均无显著差异(P>0.05)。1.0%组肌肉滴水损失显著高于其他各组(P < 0.05)。
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表 4 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉系水力的影响 Table 4 Effects of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract on muscle water holding capacity of rainbow trout |
由表 5可见,在基础饲料中添加一定浓度的杜仲皮水提物对虹鳟肌肉弹力、弹性、胶着性、咀嚼性、内聚性均会产生一定程度影响。肌肉弹力随着杜仲皮水提物浓度的增加而变大,4.0%组显著大于对照组(P < 0.05);4.0%组肌肉弹性显著大于1.0%和对照组(P < 0.05);4.0%组肌肉胶着性、咀嚼性显著大于1.0%组(P < 0.05);4.0%组肌肉内聚性显著大于1.0%、2.0%和对照组(P < 0.05);各组之间肌肉硬度和黏性均无显著差异(P>0.05)。
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表 5 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉质构特性的影响 Table 5 Effects of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract muscle physical characteristics of rainbow trout |
由表 6可见,1.0%和4.0%组的肌纤维直径显著低于对照组(P < 0.05);肌纤维密度随着杜仲皮水提物浓度的增加而增大,0.5%、1.0%、2.0%和4.0%组的肌纤维密度均显著高于对照组(P < 0.05)。
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表 6 杜仲皮水提物对虹鳟肌纤维直径和密度的影响 Table 6 Effects of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract myofiber diameter and density of rainbow trout muscle |
各组肌纤维形态结构见图 1,由图可见,与对照组相比,0.5%、1.0%、2.0%和4.0%组的肌纤维密度增加,肌纤维直径降低。
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A:对照组control group;B:0.5%组0.5% group;C:1.0%组1.0% group;D:2.0%组2.0% group 2%;E:4.0%组4.0% group。 图 1 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉组织学结构的影响 Fig. 1 Effects of Eucommia ulmoides Oliver bark aqueous extract on muscle histological structure of rainbow trout |
相关研究表明,杜仲可改善水产动物的生长性能,石英等[19]在基础饲料中添加0.15%的杜仲叶提取物显著提高异育银鲫的增重率以及降低饲料系数;林建斌等[24]在基础饲料中添加0.3%的杜仲可显著提高团头鲂的增重率;胡映霞等[21]在配合颗粒饲料中添加4%的杜仲叶粉可促进鲤鱼生长,提高成活率,增加产量;刘波等[25]在基础饲料中添加2%的杜仲可显著提高凡纳对虾的增重率,降低饲料系数。同样,对于草鱼[26-28]、青鱼[29-30]的研究也获得相似的结论。然而,在本研究中,在基础饲料中添加杜仲皮水提物对虹鳟的生长性能并无显著影响,这与许晓莹等[18]在草鱼的研究结果一致。研究结论不一致的原因可能是由于试验动物种类、规格、饲料组分、养殖环境条件、选取杜仲的部位和产地等方面存在差异造成的,这有待于深入研究。
3.2 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉pH的影响鱼体死亡后,糖原有氧分解途径中断,肌肉中的糖原通过糖酵解反应生成乳酸[31],同时,三磷酸腺苷为无氧酵解提供能量,自身分解产生磷酸等酸性物质。这些酸性物质的增多会导致肌肉pH下降[32-33],从而使肌肉水分渗出增多,蛋白质变性,营养价值降低[34]。动物宰杀后肌肉pH变化与宰后能量物质的含量密切相关,肌酸/磷酸肌酸系统可以为宰后肌肉提供ATP以起到能量缓冲作用[35]。刘世强[36]发现,绿原酸可提高脂多糖(LPS)应激大鼠血清中乳酸脱氢酶(LDH)活性,LDH是将乳酸脱氨后转换成丙酮的关键酶。绿原酸可能是通过提高LDH活性,减少了肌肉内乳酸沉积,而使肌肉pH下降速率变慢。周艳[12]研究也发现,绿原酸具有增强肌肉产生ATP的能力,延迟宰后肌肉中糖原乳酸系统的发生,降低肌肉中乳酸的生成[32],从而延缓了宰后肌肉pH的下降。本研究中,2.0%和4.0%组pH下降率显著低于对照组,4.0%组pH下降率显著低于0.5%、1.0%和对照组。这说明饲料中添加适宜的杜仲皮水提物能延缓虹鳟宰后pH的下降,改善肌肉品质。
3.3 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉系水力的影响系水力是指当肌肉受外力作用(加压、切碎、加热、冷冻)时仍保持原有水分的能力,是重要的肉品质指标之一。常见评价系水力的指标包括滴水损失、冷冻渗出率、离心失水率等[22]。肌肉拥有较强的系水力时,肌肉蛋白质的降解速率将会显著降低,肉或肉制品的货架期也将明显延长;相反,当肌肉系水力较弱时,水分流失的同时伴随着肌肉中可溶性蛋白质和风味物质含量的降低[37-38]。许晓莹等[18]在草鱼基础饲料中添加2%杜仲可显著降低草鱼肌肉的冷冻渗出率以及离心损失。段俊红等[39]在乌骨杂交鸡的饲粮中添加1%的杜仲可显著降低肌肉的滴水损失。而张军民等[40]在饲粮中添加杜仲提取物对鸡肉的滴水损失无显著影响。本研究中,各组之间的离心失水率和冷冻渗出率均无显著差异。而1.0%组的滴水损失显著高于其他各组,与相关试验得出的结论不一致,其原因可能与动物种类、屠宰方式[41]等因素有关。
3.4 杜仲皮水提物对虹鳟肌肉质构特性的影响质构与外观、营养、风味共同构成了食品的四大品质要素,是食品组织特性的重要指标之一[42]。质构分析法是模拟人口腔的咀嚼运动,对样品进行压缩,根据样品压缩时变形所需要的压力、压缩完毕后恢复的程度及压缩峰面积等计算各种指标的值,包括硬度、弹性、咀嚼性、胶着性等。尤其是硬度、弹性和咀嚼性等是评价鱼肉质品质的重要指标。肉类含有丰富的蛋白质,蛋白质与其水化层形成网状结构,有一定抵抗外力的能力,这种抵抗力即表现为肉的弹性;内聚性反映的是咀嚼食物时食物抵抗受损,并紧密连接,使食物保持完整的性质;咀嚼性是指与硬度、内聚性和弹性有关,将固体食品咀嚼到可吞咽时需做的功的大小[43]。目前,关于杜仲对虹鳟肌肉质构特性的影响尚未见报道。本试验结果显示,在基础饲料中添加4.0%的杜仲皮水提物均能提高虹鳟肌肉弹力、弹性、胶着性、咀嚼性和内聚性,说明杜仲皮水提物可使虹鳟肌肉细胞间结合能力增强,鱼肉抵抗受损保持完整性的能力增强,使得鱼肉在被咀嚼时更加弹牙,口感更佳。
3.5 杜仲皮水提物对虹鳟肌纤维结构的影响肌纤维作为构成肌肉的基本单位,组织结构的变化影响肌肉的嫩度、多汁性、保水性和口感等指标,其特性(直径、密度等)在一定程度上决定了肌肉的品质[18]。本研究发现,随着饲料中杜仲皮水提物浓度的增加,肌纤维密度逐渐增大,且均显著高于对照组。这与鲤鱼[44]、草鱼[15-17]的研究结论相似。在基础饲料中分别添加杜仲及活性成分绿原酸[15]、京尼平苷[16]和京尼平苷酸[17]均能显著增加草鱼肌纤维密度和降低肌纤维直径。本研究对杜仲水提物进行测定时发现,其中含有绿原酸、桃叶珊瑚甙、京尼平苷和京尼平苷酸4种主要活性成分,这些活性物质可能是引起虹鳟肌纤维密度增加、肌纤维直径降低的主要因素。已有研究表明,绿原酸可促进小鼠成纤维细胞增殖[45],京尼平甙能够促进小鼠β-细胞再生成,刺激导管细胞分化[46],促进韧带细胞增殖[47]。饲料中添加杜仲皮水提物能够促进虹鳟肌肉品质的改善,但确切机制有待于进一步探讨。
4 结论本试验结果表明,饲料中添加浓度为4%杜仲皮水提物虽然对虹鳟的生长性能无显著影响,但可以改善虹鳟肌肉的质构特性和肌纤维密度与直径,进而改善虹鳟的肌肉品质。
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