2. 山西省文水县农业农村局, 文水 032101
2. Bureau of Rural and Agriculture of Wenshui County, Wenshui 032101, China
泌乳前期奶牛饲粮中添加脂肪不仅可满足高产对能量的需要,可避免体重快速下降对健康的负面影响[1]。胡麻籽已被广泛用作奶牛的脂肪补充物,因为能量和n-3脂肪酸(FA),尤其是α-亚麻酸(ALA)的含量很高[2],当奶牛饲喂胡麻籽时,牛奶中n-3 FA和共轭亚油酸(CLA)含量升高[2-5]。研究表明,n-3 FA和CLA对人类健康有诸多有益之处,例如调节免疫和炎症反应、改善大脑和视力发育以及预防心血管疾病和癌症[6-8]。人们也越来越倾向于购买含有多不饱和脂肪酸的奶产品[9]。但是,添加过多植物油对瘤胃微生物有毒并且会影响纤维的消化率[10],有研究发现,与饲喂不添加胡麻籽饲粮相比,饲喂添加10%胡麻籽饲粮的奶牛产奶量和养分表观消化率显著降低,而饲喂添加5%胡麻籽饲粮的奶牛的养分表观消化率和产奶量保持不变或稍微降低,并且提高了牛奶中n-3 FA和CLA含量[3, 11]。Palmquist等[12]发现,奶牛饲粮中脂肪的适宜添加水平为6.0%,当脂肪添加水平超过9.0%时,中性洗涤纤维(NDF)和酸性洗涤纤维(ADF)表观消化率显著降低。新的研究表明,植物油适宜的添加水平为4%左右[13]。通过给反刍动物饲喂过瘤胃脂肪(RPF),可以减少对瘤胃微生物的影响。RPF可以分为过瘤胃饱和脂肪(RPSF)和过瘤胃不饱和脂肪(RPUF)。Park等[14]研究发现,添加RPUF可以减少瘤胃中甲烷的产生,从而提高能量利用效率,还可提高ADF、NDF、粗脂肪(EE)和粗蛋白质(CP)表观消化率[15]。但在育肥肉牛饲粮中添加RPUF不能生产含CLA的牛肉[16],由于CLA来自于瘤胃微生物中溶纤维丁酸弧菌对饲粮中亚油酸的异构化,而过瘤胃脂肪不能提供合成CLA的底物,虽然胡麻籽能提供底物,但其用量却受到了限制,如果把RPUF和胡麻籽结合起来使用,既能满足高产奶牛对泌乳净能的需要,又能提供合成CLA的底物。然而目前对于胡麻籽和RPUF混合添加的适宜水平和比例还未见研究。因此,本试验通过研究不同脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对荷斯坦牛养分表观消化率和血清生化指标的影响,探究饲粮中混合脂肪源的最佳添加水平及比例。
1 材料与方法 1.1 试验材料、试验动物与试验设计RPUF以胡麻油为原料,以不饱和脂肪酸钙皂形式添加,由山西农业大学动物科学学院研制。其干物质含量为97.00%,以干物质为基础,脂肪含量为83.14%,其中C12 ∶ 0、C14 ∶ 0、C16 ∶ 0、C16 ∶ 1含量均为0,C18 ∶ 0含量为3.00%,C18 ∶ 1含量为27.77%,C18 ∶ 2含量为26.83%,C18 ∶ 3含量为24.93%,其余长链脂肪酸含量为0.61%,24和48 h瘤胃平均消失率分别为5.15%和8.63%。胡麻籽购自山西某饲料有限公司,其干物质含量为90.70%,以干物质为基础,脂肪含量为34.76%,其中C12 ∶ 0、C14 ∶ 0和C16 ∶ 1含量均为0,C16 ∶ 0、C18 ∶ 0、C18 ∶ 1、C18 ∶ 2和C18 ∶ 3含量分别为2.80%、1.93%、8.92%、5.31%和18.84%,其余长链脂肪酸含量为0.30%。
选取4头装有永久性瘤胃瘘管、年龄为(2.50±0.17)岁、体重为(580±50) kg的荷斯坦公牛,采用3×4两因素试验设计,在基础饲粮中添加RPUF和整粒胡麻籽2种脂肪源组成的混合脂肪源,脂肪添加水平分别占饲粮干物质的4%、5%和6%,2种脂肪源添加比例分别为100/0、85/15、70/30、55/45,以脂肪添加水平/脂肪源添加比例表示12个组,分别为4/100、4/85、4/70、4/55、5/100、5/85、5/70、5/55、6/100、6/85、6/70、6/55组。试验分为12个阶段,每个阶段预试期14 d,正试期5 d。每个阶段开始前对试验牛进行称重,在固定饲粮精粗比的前提下,根据体重并按照维持营养需要调整采食量。
1.2 试验饲粮及饲养管理根据试验牛维持能量需要的1.1倍设计基础饲粮[17],其精粗比为40 ∶ 60,饲粮采取等氮设计,4%、5%、6%脂肪水平下的4个脂肪源添加比例(100/0、85/15、70/30和55/45)间以100/0为基础的饲粮组成及营养水平见表 1,综合净能按照上述4个比例顺序依次降低,平均分别相差0.08、0.10和0.12 MJ/kg,NDF和ADF按照上述4个比例顺序下降,平均分别相差1.52%、1.90%、2.29%和1.32%、1.66%、1.99%。试验牛采食量采取限制方式,除增重净能外,试验组其他养分供给量相似。试验期日喂2次(07:00、19:00),单槽饲养,自由饮水。
每阶段试验前采集基础精补料样品,试验中逐日采集玉米青贮样品,正试期每天记录每头牛的采食量以及剩料量。每天对每头牛剩料按一定的比例进行取样,饲粮样和剩料样采集后在65 ℃烘箱中烘至恒重,将每头牛每天采集的剩料样分别粉粹和贮存,用于养分分析。
1.3.2 粪样的采集在每个阶段的正试期,采用全收粪法测定每头牛每天的排粪量,按照五点取样法采集每天排粪量总重的1/10,然后将100 g/L的酒石酸溶液(粪重的1/4)和粪样混合。将正试期每头牛每天采集的粪样混合,在65 ℃烘箱中烘至恒重、粉粹、混合和保存,用于养分分析。
1.3.3 血液的采集在每个正试期最后2 d晨饲前采集血样,使用采血管通过颈静脉采集血样,每头牛采集20 mL,采集后在3 000 r/min下离心15 min制备血清,冷冻在-20 ℃下保存备用待测。
1.3.4 常规养分的测定采用GB/T 6435—2006[18]方法测定水分含量;采用凯氏定氮法(GB/T 6432—1994)[19]测定CP含量;分别采用GB/T 20806—2006[20]和NY/ T 1459—2007[21]方法测定NDF和ADF含量;采用GB/T 6433—2006[22]方法测定EE含量;采用GB/T 6438—2007[23]方法测定粗灰分含量。
1.3.5 血清生化指标的测定按照相应的试剂盒说明书(南京建成生物工程研究所),使用酶标仪(Synergy H1,美国伯腾)测定血清中葡萄糖(Glu)、总蛋白(TP)、丙二醛(MDA)、总胆固醇(T-CHO)、甘油三酯(TG)含量及谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)活性。血清高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、极低密度脂蛋白胆固醇(VLDL-C)、胰岛素(INS)、胰高血糖素(GC)、生长激素(GH)含量及肉碱棕榈酰转移酶-Ⅰ(CPT-Ⅰ)、脂肪酸甘油三酯脂肪酶(ATGL)、乙酰辅酶A羧化酶(ACC)、脂肪酸酸性合成酶(FAS)、β-羟基-β-甲基戊二酸单酰辅酶A还原酶(HMGR)和β-羟基-β-甲基戊二酸单酰辅酶A合成酶(HMGS)活性采用相应的酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒(上海都马生物科技有限公司),用相同的酶标仪进行测定。
1.4 数据统计处理方法数据用DPS 7.05版统计软件按两因素随机区组设计进行方差分析,用Duncan氏法进行多重比较。P < 0.05为差异显著,P < 0.01为差异极显著。
2 结果 2.1 脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对荷斯坦牛养分表观消化率的影响由表 2可知,除EE和NDF表观消化率之外,脂肪添加水平对其他养分表观消化率有极显著的影响(P < 0.01),脂肪添加水平与不同脂肪源添加比例的交互作用对各养分表观消化率均没有显著影响(P>0.05)。4%和5%脂肪组CP表观消化率极显著高于6%脂肪组(P < 0.01),4/100组CP表观消化率极显著高于6/100和6/55组(P < 0.01),显著高于6/85和6/70组(P < 0.05),4/70、4/55和5/70组极显著高于6/55组(P < 0.01),显著高于6/100、6/85和6/70组(P < 0.05),4/85和5/55组显著高于6/85和6/70组(P < 0.05)。
4%脂肪组NFE表观消化率极显著高于6%脂肪组(P < 0.01),而其他添加水平组之间差异不显著(P>0.05)。4%和5%脂肪组ADF表观消化率极显著高于6%脂肪组(P < 0.01),而4%和5%脂肪组之间养分表观消化率差异不显著(P>0.05)。
2.2 脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对荷斯坦牛血清中脂肪动员和合成相关酶活性的影响由表 3可知,脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对血清脂肪动员和合成相关酶活性交互作用没有显著影响(P>0.05),5%和6%脂肪组的血清ATGL、CPT-Ⅰ和HMGR活性显著高于4%脂肪组(P < 0.05),5%和6%脂肪组之间差异不显著(P>0.05),脂肪添加水平对其余血清酶活性没有显著影响(P>0.05)。与血清体脂合成有关的ACC和FAS活性在不同脂肪添加水平组间差异不显著(P>0.05),但FAS活性随着脂肪添加水平的提高而下降。
由表 4可知,脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对血清INS、GC和GH含量影响不显著(P>0.05),各组间血清激素含量差异也不显著(P>0.05),但6%脂肪组的INS含量相比4%和5%脂肪组水平有下降的趋势。
由表 5可知,6%脂肪组的血清总蛋白含量极显著高于4%脂肪组(P < 0.01),70/30比例组显著高于其余比例(100/0、85/15和55/45)组(P < 0.05),6/70组极显著高于4/100组(P < 0.01),显著高于4/55和5/100组(P < 0.05)。各组间血清T-CHO、TG、Glu和MDA含量差异不显著(P>0.05),随着脂肪添加水平的提高,血清TG含量有下降趋势,而T-CHO含量随脂肪添加水平的升高而增加。5%和6%脂肪组的血清HDL-C含量极显著高于4%脂肪组(P < 0.01),5%和6%脂肪组之间差异不显著(P>0.05)。4%脂肪组的血清LDL-C含量显著高于6%脂肪组(P < 0.05),与5%脂肪组之间差异不显著(P>0.05)。6%脂肪组的血清VLDL-C含量显著高于4%脂肪组(P < 0.05),与5%脂肪组差异不显著(P>0.05)。
对反刍动物来说,饲粮养分在瘤胃的降解对表观消化率影响较大,饲喂脂肪后,油脂会吸附在微生物表面从而影响细胞膜的通透性,导致瘤胃微生物活性下降,而过瘤胃脂肪的应用可以缓解反刍动物饲粮中添加脂肪对瘤胃微生物发酵的影响。Ngidi等[24]研究发现,给育肥牛饲喂2%、4%和6%的过瘤胃脂肪,对ADF和NDF表观消化率没有显著影响。然而,较高含量的过瘤胃脂肪可能会对瘤胃微生物活性产生潜在的副作用。Haaland等[25]研究发现,给育肥牛饲喂8.7%过瘤胃脂肪组与饲喂4.8%过瘤胃脂肪组相比,8.7%过瘤胃脂肪组的ADF和NDF表观消化率显著下降。在本试验中,6%脂肪组的ADF表观消化率极显著低于4%和5%脂肪组。除过瘤胃不饱和脂肪外,本试验中还添加了未保护脂肪胡麻籽,较高水平脂肪的添加(6%)和胡麻籽的存在可能导致养分表观消化率的降低。
Bhatt等[15]发现补饲2%和4%的过瘤胃脂肪时,CP表观消化率增加。然而,邢壮等[26]研究发现,补饲过多过瘤胃脂肪(饲粮EE含量为9.6%)会显著降低CP的消化率。本试验也发现,6%脂肪组的CP表观消化率极显著低于4%和5%脂肪组,可能是饲喂过多的脂肪会影响小肠蛋白质的消化。此外,随脂肪添加水平的增加,EE表观消化率降低。Haresign[27]研究发现,饲喂10%过瘤胃脂肪时,EE表观消化率降低。Bayourth等[28]研究也发现,喂食6%钙盐组的EE表观消化率高于喂食12%钙盐组。Wiseman[29]认为,当牛的饲粮中含有大量的钙皂时,脂肪消化率通常较低,这是由于小肠吸收脂肪的能力有限。因此,当喂食较高水平的脂肪时,EE表观消化率降低。
3.2 脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对荷斯坦牛血清脂肪动员和合成相关酶活性的影响ATGL是反映体脂肪代谢时脂肪水解的关键酶和限速酶,参与并启动脂质代谢,CPT-Ⅰ是脂肪酸β氧化的限速酶[30]。在5%和6%脂肪水平下,血清ATGL和CPT-Ⅰ的活性显著高于4%脂肪水平,这表明在5%和6%的脂肪水平下,奶牛体脂的分解代谢和脂肪酸的β氧化作用较强。本研究同时发现,血清VLDL-C、T-CHO含量随着脂肪添加水平的提高而提高。VLDL-C是把肝脏合成(内源性)的甘油三酯和载脂蛋白从肝脏运送到其他组织,并被其他组织摄取利用其脂肪酸,而后形成低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C),这是机体脂肪组织动员后进入肝脏的信号。5%和6%脂肪组的EE表观消化率虽然下降,但消化吸收的EE总体是增加的(4%、5%和6%添加水平每日可吸收的EE分别为0.24、0.30和0.33 kg),引起机体脂肪组织动员的原因可能是体内蛋白质代谢过程的影响,即试验动物正处于生长阶段,虽然按照维持状态的营养需要设计饲粮,但CP实际供给量略高于需要量(日需要量为0.72 kg,实际供给量为0.75 kg),且由于试验动物处于室内,减少了逍遥运动所消耗的养分,另外,可能是胡麻籽中的亚油酸在瘤胃内异构化为CLA,CLA具有降低体脂沉积、增加瘦肉率和营养重分配的作用[31],这些多余的可利用能和CP使机体进入合成代谢,引起体成分的变化。由于CP实际供给量与需要量之差较小的原因,2种脂肪合成酶ACC和FAS的活性差异不显著。
3.3 脂肪添加水平及不同脂肪源添加比例对荷斯坦牛血清生化指标的影响Lake等[32]发现,补充脂肪不会影响泌乳牛的血清Glu含量。Kang等[33]还指出,血清Glu含量在较冷的天气通常较高,但不受过瘤胃脂肪补充的影响。在许多其他研究中,以亚麻籽或向日葵等种子的形式将脂肪添加到牛的饲粮中,也没有发现血清中Glu含量的增加或降低[34-35]。
尽管4%和5%脂肪组的碳水化合物表观消化率较高,6%脂肪组消化吸收的有效能值(在添加4%、5%和6%脂肪水平下,每日可吸收的EE分别为0.24、0.30和0.33 kg)是增加的,因此,该组形成更多的挥发性脂肪酸,在其代谢过程中可缓解饲粮能量不足引起的蛋白质被能量化。因此,随着RPUF添加水平的提高,血清中TP含量同步提高;随着胡麻籽添加水平增加,养分消化率下降,所以,当2种脂肪源添加比例达到70/30时达到高峰。
MDA的含量是反映机体抗氧化潜力的重要参数,也间接反映组织过氧化损伤试验牛体内的活性氧会氧化细胞膜上的多不饱和脂肪酸的磷酸残基,不饱和脂肪酸特异性减少,保持膜坚硬状态的饱和脂肪酸相对增加,引起膜结构被破坏[31],生成的脂质过氧化物分解时可产生MDA。2种脂肪源均可以提供必需脂肪酸,因此,6%脂肪组的血清MDA含量较低。
在本研究中,随着脂肪添加水平的增加,血清中T-CHO含量也增加,这与血清HMGR和HMGS活性较高结果相一致。Matras等[36]发现,饲喂含亚麻籽饲料的奶牛在哺乳期的血清平均T-CHO含量更高。另一项研究[37]也发现,补充脂肪通常会增加反刍动物血清T-CHO含量。根据Rabiee等[38]研究报道,血液中T-CHO含量的增加可能有助于改善动物的健康状况和生殖性能。脂肪分解代谢的产物是乙酰辅酶A,在HMGS催化下合成β-羟-β-甲戊二酰辅酶A,在HMGR作用下还原为二甲羟基戊酸,最终合成胆固醇,本研究结果表明,随着脂肪添加水平的增加,5%和6%脂肪组的血清HMGR活性显著高于4%脂肪组,分别高出8.05%和35.62%,这可能是5%和6%脂肪组血清T-CHO含量更高的原因。
Matras等[36]在饲粮中添加富含n-3 FA的脂肪时,发现血液中的TG含量降低,本试验同样饲喂富含n-3 FA的亚麻籽,血清TG含量随脂肪添加水平的增加而降低。这可能与CLA降低体脂沉积和营养重分配有关。在本研究中,随着脂肪添加水平的增加,血清中HDL-C和LDL-C含量分别增加和下降,这与CLA功能有关,因为CLA具有降低血清LDL含量和LDL/HDL比值的功能[31]。
INS、GC一起维持机体内血糖平衡,由于血清中Glu含量在各组间无显著差异,所以INS和GC含量在不同脂肪组之间差异不显著。
4 结论使用过瘤胃不饱和脂肪和胡麻籽作为脂肪源,按照4%、5%和6% 3个添加水平及100/0、85/15、70/30和55/45 4个比例研究其对荷斯坦牛养分表观消化率和血清生化指标影响,结果表明,脂肪添加水平以4%~5%、不同脂肪源(瘤胃不饱和脂肪/胡麻籽)添加比例以70/30最为适宜。
[1] |
莫放. 养牛生产学[M]. 2版. 北京: 中国农业大学出版社, 2010: 162-163, 219-222. MO F. Cattle production[M]. 2nd ed. Beijing: China Agriculture University Press, 2010: 162-163, 219-222 (in Chinese). |
[2] |
PETIT H V. Review: feed intake, milk production and milk composition of dairy cows fed flaxseed[J]. Canadian Journal of Animal Science, 2010, 90(2): 115-127. DOI:10.4141/CJAS09040 |
[3] |
RESENDE T L, KRAFT J, SODER K J, et al. Incremental amounts of ground flaxseed decrease milk yield but increase n-3 fatty acids and conjugated linoleic acids in dairy cows fed high-forage diets[J]. Journal of Dairy Science, 2015, 98(7): 4785-4799. DOI:10.3168/jds.2014-9115 |
[4] |
STERK A, JOHANSSON B E O, TAWEEL H Z H, et al. Effects of forage type, forage to concentrate ratio, and crushed linseed supplementation on milk fatty acid profile in lactating dairy cows[J]. Journal of Dairy Science, 2011, 94(12): 6078-6091. DOI:10.3168/jds.2011-4617 |
[5] |
FERLAY A, DOREAU M, MARTIN C, et al. Effects of incremental amounts of extruded linseed on the milk fatty acid composition of dairy cows receiving hay or corn silage[J]. Journal of Dairy Science, 2013, 96(10): 6577-6595. DOI:10.3168/jds.2013-6562 |
[6] |
WILLIAMS C M. Dietary fatty acids and human health[J]. Annales de Zootechnie, 2000, 49(3): 165-180. DOI:10.1051/animres:2000116 |
[7] |
MCCRORIE T A, KEAVENEY E M, WALLACE J M W, et al. Human health effects of conjugated linoleic acid from milk and supplements[J]. Nutrition Research Reviews, 2011, 24(2): 206-227. DOI:10.1017/S0954422411000114 |
[8] |
DILZER A, PARK Y. Implication of conjugated linoleic acid (CLA) in human health[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2012, 52(6): 488-513. DOI:10.1080/10408398.2010.501409 |
[9] |
KRISTINE S.Study shows consumers want more omega-3s[EB/OL].https://www.cargill.com/news/releases/2014/NA31701258.jsp, 2014-10-6.
|
[10] |
JENKINS T C. Lipid metabolism in the rumen[J]. Journal of Dairy Science, 1993, 76(12): 3851-3863. DOI:10.3168/jds.S0022-0302(93)77727-9 |
[11] |
SODER K J, BRITO A F, RUBANO M D, et al. Effect of incremental flaxseed supplementation of an herbage diet on methane output and ruminal fermentation in continuous culture[J]. Journal of Dairy Science, 2012, 95(7): 3961-3969. DOI:10.3168/jds.2011-4981 |
[12] |
PALMQUIST D L, JENKINS T C. Fat in lactation rations: review[J]. Journal of Dairy Science, 1980, 63(1): 1-14. DOI:10.3168/jds.S0022-0302(80)82881-5 |
[13] |
YANG S L, BU D P, WANG J Q, et al. Soybean oil and linseed oil supplementation affect profiles of ruminal microorganisms in dairy cows[J]. Animal, 2009, 3(11): 1562-1569. DOI:10.1017/S1751731109990462 |
[14] |
PARK B K, CHOI N J, KIM H C, et al. Effects of amino acid-enriched ruminally protected fatty acids on plasma metabolites, growth performance and carcass characteristics of Hanwoo steers[J]. Asian-australasian Journal of Animal Sciences, 2010, 23(8): 1013-1021. DOI:10.5713/ajas.2010.90559 |
[15] |
BHATT R S, SAHOO A, SHINDE A K, et al. Change in body condition and carcass characteristics of cull ewes fed diets supplemented with rumen bypass fat[J]. Livestock Science, 2013, 157(1): 132-140. DOI:10.1016/j.livsci.2013.06.025 |
[16] |
ANDRADE E N, POLIZEL NETO A, ROÇA R O, et al. Beef quality of young Angus×Nellore cattle supplemented with rumen-protected lipids during rearing and fatting periods[J]. Meat Science, 2014, 98(4): 591-598. DOI:10.1016/j.meatsci.2014.05.028 |
[17] |
冯仰廉. 肉牛营养需要和饲养标准[M]. 北京: 中国农业大学出版社, 2000: 23. FENG Y L. Nutritional requirements and feeding standards of beef cattle[M]. Beijing: China Agricultural University Press, 2000: 23 (in Chinese). |
[18] |
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局, 中国国家标准化管理委员会. GB/T 6435-2006饲料中水分和其他挥发性物质含量的测定[S]. 北京: 中国标准出版社, 2007. General Administration of Quality Supervision, Inspection and Quarantine of the People's Republic of China, Standardization Administration.GB/T 6435-2006 Determination of moisture and other volatile substances in feed[S].Beijing: Standards Press of China, 2007. (in Chinese) |
[19] |
国家技术监督局. GB/T 6432-1994饲料中粗蛋白测定方法[S]. 北京: 中国标准出版社, 1994. State Bureau of Technical Supervision.GB/T 6432-1994 Determination of crude protein in diet[S].Beijing: Standards Press of China, 1994. (in Chinese) |
[20] |
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局, 中国国家标准化管理委员会. GB/T 20806-2006饲料中中性洗涤纤维(NDF)的测定[S]. 北京: 中国标准出版社, 2007. General Administration of Quality Supervision, Inspection and Quarantine of the People's Republic of China, Standardization Administration.GB/T 20806-20064 Determination of neutral detergent fiber in feed[S].Beijing: Standards Press of China, 2007. (in Chinese) |
[21] |
中华人民共和国农业部. NY/T 1459-2007饲料中酸性洗涤纤维的测定[S]. 北京: 农业出版社, 2008. The ministry of agriculture of the People's Republic of China.NY/T 1459-2007 Agricultural industry standard for determination of acid detergent fiber in feed[S].Beijing: Agricultural Press, 2007. (in Chinese) |
[22] |
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局, 中国国家标准化管理委员会. GB/T 6433-2006饲料中粗脂肪的测定[S]. 北京: 中国标准出版社, 2006. General Administration of Quality Supervision, Inspection and Quarantine of the People's Republic of China, Standardization Administration.GB/T 6433-2006 Determination of crude fat in feed[S].Beijing: Standards Press of China, 2006. (in Chinese) |
[23] |
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局, 中国国家标准化管理委员会. GB/T 6438-2007饲料中粗灰分的测定[S]. 北京: 中国标准出版社, 2007. General Administration of Quality Supervision, Inspection and Quarantine of the People's Republic of China, Standardization Administration.GB/T 6438-2007 Determination of crude ash in feed[S].Beijing: Standards Press of China, 2007. (in Chinese) |
[24] |
NGIDI M E, LOERCH S C, FLUHARTY F L, et al. Effects of calcium soaps of long-chain fatty acids on feedlot performance, carcass characteristics and ruminal metabolism of steers[J]. Journal of Animal Science, 1990, 68(8): 2555-2565. DOI:10.2527/1990.6882555x |
[25] |
HAALAND G L, MATSUSHIMA J K, JOHNSON D E, et al. Effect of replacement of corn by protected tallow in a cattle finishing diet on animal performance and composition[J]. Journal of Animal Science, 1981, 52(4): 696-702. DOI:10.2527/jas1981.524696x |
[26] |
邢壮, 张微, 莫放, 等. 肉牛过瘤胃脂肪进食量对营养物质消化、氮沉积和嘌呤衍生物排出量的影响[J]. 中国农学通报, 2008, 24(3): 24-29. XING Z, ZHANG W, MO F, et al. Influence of supplemental prilled fat on total tract nutrient digestion, nitrogen retain and urinary excretion of purine derivatives in steers[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2008, 24(3): 24-29 (in Chinese). |
[27] |
HARESIGN W. Recent advances in animal nutrition[M]. Oxford: Butterworth-Heinemann, 1981: 3-33.
|
[28] |
BAYOURTHE C, VERNAY M, MONCOULON R, et al. Effect of calcium salts of fatty acids on rumen function and the digestibility of rations by sheep[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 1994, 64(3): 341-347. DOI:10.1002/jsfa.2740640316 |
[29] |
WISEMAN J. Fats in Animal Nutrition[M]. Oxford: Butterworth-Heinemann, 1984: 357-381.
|
[30] |
周顺伍. 动物生物化学[M]. 北京: 化学工业出版社, 2008: 134-139. ZHOU S W. Animal biochemistry[M]. Beijing: Chemical Industry Press, 2008: 134-139 (in Chinese). |
[31] |
计成. 动物营养学[M]. 北京: 高等教育出版社, 2008: 77-86. JI C. Animal nutrition[M]. Beijing: Higher Education Press, 2008: 77-86 (in Chinese). |
[32] |
LAKE S L, SCHOLLJEGERDES E J, ATKINSON R L, et al. Body condition score at parturition and postpartum supplemental fat effects on cow and calf performance[J]. Journal of Animal Science, 2005, 83(12): 2908-2917. DOI:10.2527/2005.83122908x |
[33] |
KANG H J, PIAO M Y, PARK S J, et al. Effects of ambient temperature and rumen-protected fat supplementation on growth performance, rumen fermentation and blood parameters during cold season in Korean cattle steers[J]. Asian-australasian Journal of Animal Sciences, 2019, 32(5): 657-664. DOI:10.5713/ajas.18.0621 |
[34] |
AMBROSE D J, KASTELIC J P, CORBETT R, et al. Lower pregnancy losses in lactating dairy cows fed a diet enriched in α-linolenic acid[J]. Journal of Dairy Science, 2006, 89(8): 3066-3074. DOI:10.3168/jds.S0022-0302(06)72581-4 |
[35] |
HADDAD S G, YOUNIS H M. The effect of adding ruminally protected fat in fattening diets on nutrient intake, digestibility and growth performance of Awassi lambs[J]. Animal Feed Science and Technology, 2004, 113(1/2/3/4): 61-69. |
[36] |
MATRAS J, KOWALCZUK-VASILEV E, KLEBANIUK R, et al. Influence of flaxseed of two varieties, differing in fatty acid profile, in dairy cow diets on selected blood indices and reproduction[J]. Medycyna Weterynaryjna, 2014, 70(7): 422-427. |
[37] |
GARCIA-BOJALIL C M, STAPLES C R, RISCO C A, et al. Protein degradability and calcium salts of long-chain fatty acids in the diets of lactating dairy cows: productive responses[J]. Journal of Dairy Science, 1998, 81(5): 1374-1384. DOI:10.3168/jds.S0022-0302(98)75701-7 |
[38] |
RABIEE A R, LEAN I J. Uptake of glucose and cholesterol by the ovary of sheep and cattle and the influence of arterial LH concentrations[J]. Animal Reproduction Science, 2000, 64(3/4): 199-209. |