2. 山西欣东检测技术有限公司, 孝义 032300;
3. 山西农业大学动物医学学院, 太谷 030801
2. Shanxi Xindong Testing Technology Co., Ltd., Xiaoyi 032300, China;
3. College of Veterinary Medicine, Shanxi Agricultural University, Taigu 030801, China
据《中国奶业统计摘要》数据,我国奶牛平均单产从2000年至2018年提高了149.58%,一方面,随着奶牛生产潜力的不断挖掘,处于泌乳高峰期奶牛的能量负平衡将进一步加剧;而另一方面,牛奶中的饱和脂肪酸(SFA)占乳脂肪的60%~66%[1-2],SFA可提高人体血液中低密度脂蛋白胆固醇的含量,有引发心血管疾病的潜在危险[3]。在奶牛饲粮中添加植物油可以满足其对饲粮能量不断提高的需求,不仅能避免泌乳前期能量负平衡导致体重快速下降对其健康造成的影响[4],而且能提高乳中多不饱和脂肪酸的含量[5-6]。在荷斯坦改良牛的基础饲粮中添加1.8%的生大豆油、加热的大豆油及相应水平的全棉籽,不仅降低了干物质(DM)、中性洗涤纤维(NDF)和非纤维碳水化合物的表观消化率,同时也降低了乳脂率、乳蛋白率和无脂固形物含量[7]。饲喂3%的胡麻油,降低了娟姗牛牛奶中的乳脂率、乳蛋白率和酸性洗涤纤维(ADF)的表观消化率[8]。饲粮添加4.0%胡麻油、棕榈油和相应水平的全脂大豆均降低了瘤胃原虫数量,胡麻油组有机物(OM)和NDF的表观消化率均显著下降[9],添加10%的胡麻籽[10]或膨化的胡麻籽[11]时,均提高了牛奶中亚麻酸含量。当饲粮分别添加0、5%、10%和15%的粉碎胡麻籽时,饲粮OM、NDF和ADF的表观消化率随添加量增加而线性下降,牛奶中亚麻酸、共轭亚油酸(CLA)的含量则线性提高[12]。由于多不饱和脂肪酸对瘤胃微生物有毒害作用[13],尤其是亚麻酸会降低瘤胃原虫和甲烷菌数量[14],一般认为植物油适宜的添加量为4%[15],这在一定程度上限制了其应用范围和程度。过瘤胃脂肪(RPF)可以避免对瘤胃微生物的干扰,减少对瘤胃发酵的抑制作用。目前,国内普遍使用以富含棕榈油的饱和脂肪酸及脂肪酸钙皂等RPF产品。蔡瑞琪[16]在奶牛饲粮中添加200 g过瘤胃饱和脂肪(RPSF)的试验结果表明,干物质采食量(DMI)和产奶量差异不显著,但显著改善了奶牛体况(BCS);李兰等[17]在泌乳前期奶牛饲粮中添加RPSF,结果表明RPSF改善了奶牛的能量负平衡;袁雪等[18]在泌乳前期奶牛饲粮中添加脂肪酸钙(不饱和脂肪酸和饱和脂肪酸约各占50%)、氢化脂肪和分馏脂肪,改善了奶牛BCS,提高了生产性能。国内有关添加过瘤胃不饱和脂肪(RPUF)对泌乳早期奶牛生产性能、牛奶中脂肪酸组成和能量代谢的报道很少。因此,本试验旨在研究添加不同瘤胃脂肪源对奶牛生产性能、牛奶脂肪酸组成的影响,为不同饱和度的RPF应用于奶牛生产提供参考。
1 材料与方法 1.1 试验材料RPUF以胡麻油为原料,以不饱和脂肪酸钙皂形式添加,由山西农业大学动物科学学院研制。其DM含量为97.00%,以DM为基础,脂肪含量为83.14%,其中C12∶0、C14∶0、C16∶0、C16∶1含量均为0,C18∶0含量为3.74%,C18∶1n9c、C18∶2n6c和C18∶3n3含量分别为18.96%、12.16%和39.83%,其余长链脂肪酸含量均为0.61%。RPSF为硬脂酸钙,DM含量为96.69%,脂肪含量为84.19%,其中C16∶0含量为52.7%,硬脂酸含量为36.5%。
1.2 试验设计试验选用健康的中国荷斯坦奶牛24头[泌乳天数(18.42±8.17) d、胎次[(2.42±1.20)胎]、体重(620.16±40.44) kg],参照胎次、产奶量和产后天数,按随机区组法分为3组,每组8头牛,第1组饲喂基础饲粮,第2和3组在基础饲粮中分别添加200 g/d RPUF和RPSF。试验期67 d,其中预试期7 d,正试期为60 d,前30天为试验前期,后30天为试验后期。
1.3 试验饲粮及饲养管理试验饲粮组成及营养水平见表 1。试验于2017年6月20日至2017年8月26日在山西永济市超人奶业有限公司进行。试验奶牛集中于同一牛舍,配置有运动场、自由卧床和水槽,饲粮以全混合日粮(TMR)形式饲喂,日饲喂(05:30、11:30和18:00)和挤奶各3次,单槽饲喂,每日脂肪添加量平均分3次饲喂,每次添加TMR后立即把RPF和少量TMR搅拌后饲喂,然后再采食其余的TMR。自由饮水,每天测定和记录实际采食量,记录每天07:00和14:00牛舍和运动场温度与湿度。
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表 1 试验饲粮组成及营养水平(干物质基础) Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (DM basis) |
试验开始、前期及后期结束时,连续2 d挤奶后空腹称重,取平均值作为试验奶牛体重。饲料转化率为标准奶日产量除以日饲粮摄入量。
试验期间每周采集TMR样品和剩余饲粮,经粉碎、过筛、混匀后用四分法制样500 g。测定DM、粗蛋白质(CP)、粗脂肪(EE)、NDF和ADF的含量。饲粮样品中水分含量用恒温(105 ℃)干燥法(GB T 6435—2014)测定;CP和EE含量分别用凯氏定氮法(GB 5009.5—2010)和索氏抽提法(GB 5009.6—2010)测定;NDF和ADF含量采用Van Soest方法测定;用Drackley法计算牛舍温湿度指数(THI)。
每10 d采集奶样1次,每次采集24 h,按3次挤奶量的比例取样后混合制成样本,用于牛奶中乳脂率、乳蛋白率和体细胞数(SCC)等常规成分的分析。其中每期的第2次奶样分成2份,一份用于常规分析,另一份于-80 ℃冷冻保存,用于测定牛奶中脂肪酸的组成。
用福斯公司Milko Scan FT1多功能乳品分析仪分析牛奶中乳脂率、乳蛋白率和体细胞数等常规指标。采用GB 5009.168—2016的方法测定牛奶中脂肪酸组成[19],所用仪器为气相色谱-质谱联用仪(岛津2010),色谱条件:用HP-5弹性石英毛细管色谱柱(300 m×25 mm×0.25 μm),进样口温度280 ℃,分流比20∶1,进样量0.2 μL;质谱条件:离子源为EI源,电离电压70 eV,离子源温度280 ℃,发射电流34.6 mA,扫描范围30~500 amp。
从每组固定选择4头试验奶牛,在每期的第15天对该4头奶牛进行尾静脉采血,装在促凝管中以3 000 r/min离心20 min,抽取上层血清并分装于0.5 mL的离心管中,用于测定血清中的生化指标。血清中葡萄糖(GLU)含量用氧化酶法测定;白蛋白(ABL)含量用溴甲酚绿比色法测定;谷丙转氨酶(ALT)活性用微板法测定;谷草转氨酶(AST)活性用赖氏法测定;尿素氮(UN)含量用二乙酰肟比色法测定;丙二醛(MDA)含量用硫代巴比妥酸法(GB 5009.181—2016)测定,这些指标的检测仪器均为UV-2802紫外可见分光光度计。血清β-羟丁酸(BHBA)、非酯化脂肪酸(NEFA)、胰岛素(INS)、生长激素(GH)、胰高血糖素(GC)和类胰岛素生长因子-Ⅰ(IGF-Ⅰ)的含量和肉碱棕榈酰转移酶-Ⅰ(CPT-Ⅰ)、乙酰辅酶A羧化酶(ACC)、脂肪酸甘油三酯脂肪酶(ATGL)的活性使用酶标仪测定。
在试验前后由本场体况评分师对所有试验奶牛用5分制进行BCS,同时在挤奶后进行体尺测量,根据胸围和体斜长估测体重。
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式中:胸围和体斜长单位均为cm。
1.5 数据统计处理方法用Excel 2010对试验结果进行简单数据整理后,用SAS 8.0的ANOVA模块对除体重和体况之外的指标进行单因素方差分析,体重和体况指标进行2×3两因素方差分析,用Duncan氏法进行多重比较,分析结果用平均值±标准差来表示。P<0.05为差异显著。
2 结果 2.1 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛生产性能及乳品质的影响由表 2可知,添加不同过瘤胃脂肪源对泌乳量、乳脂率、乳脂产量、乳蛋白产量和饲料转化率的影响不显著(P>0.05),前期第1组DMI显著高于第3组(P<0.05),对后期和试验期的DMI影响不显著(P>0.05),后期和试验期第2组和第3组的乳蛋白率和SCC分别显著高于和低于第1组(P<0.05)。
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表 2 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛生产性能及乳品质的影响 Table 2 Effects of dietary different RPF sources on performance and milk quality of dairy cattle |
由表 3可知,前期第3组血清ATGL活性显著高于第1组和第2组(P<0.05),后期第3组血清ATGL活性显著高于第2组(P<0.05);前期和后期血清ACC、CPT-Ⅰ、AST和ALT活性各组间差异不显著(P>0.05)。
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表 3 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛血清酶活性的影响 Table 3 Effects of dietary different RPF sources on serum enzyme activities of dairy cattle |
由表 4可知,前期第2组和第3组血清INS和IGF-Ⅰ含量均显著高于第1组(P<0.05),第1组和第2组之间差异不显著(P>0.05),而血清GC和GH含量在各组之间差异不显著(P>0.05);后期第2组血清INS含量显著高于第1组和第3组(P<0.05),而第1组和第3组之间差异不显著(P>0.05),后期血清GC、GH和IGF-Ⅰ含量在各组间差异不显著(P>0.05)。
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表 4 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛血清激素含量的影响 Table 4 Effects of dietary different RPF sources on serum hormone contents of dairy cattle |
由表 5可知,前期添加RPF显著降低了血清BHBA和NEFA含量(P<0.05),后期血清MDA含量显著下降(P<0.05),其余指标各组间差异不显著(P>0.05)。
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表 5 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛血清生化指标的影响 Table 5 Effects of dietary different RPF sources on serum biochemical indices of dairy cattle |
由表 6可知,在试验前、后期体重均呈现不同程度的下降,但各组间差异不显著(P>0.05)。试验前、后期BCS各组间差异显著(P<0.05),在试验前、后期第1组BCS差异显著(P<0.05),试验后期第2组和第3组BCS评分显著高于第1组(P<0.05)。
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表 6 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛体况及体重的影响 Table 6 Effects of dietary different RPF sources on BCS and body weight of dairy cattle |
由表 7可知,前期牛奶中各种脂肪酸的含量组间差异均不显著(P>0.05),后期第2组中牛奶中C18∶1n9c、C18∶2n6c和总不饱和脂肪酸含量比其余组显著增加(P<0.05),而总饱和脂肪酸含量比第3组显著下降(P<0.05),第3组中牛奶中C16∶0和总饱和脂肪酸含量比其余组显著增加(P<0.05),其余各种脂肪酸含量组间差异不显著(P>0.05)。
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表 7 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛牛奶中脂肪酸组成的影响 Table 7 Effects of dietary different RPF sources on milk fatty acid composition of dairy cattle |
本试验结果表明,饲粮中添加RPF对DMI、泌乳量、乳脂率、乳脂产量、乳蛋白产量和饲料转化率的影响不显著,第2组和第3组的乳蛋白率和SCC分别显著高于和低于第1组。袁雪等[18]和蔡瑞琪[16]在奶牛饲粮中分别添加500 g不同类型脂肪(脂肪酸钙、氢化脂肪和分馏脂肪)和200 g RPSF,泌乳前期各组的DMI、产奶量和乳脂率差异均不显著;Isenberg等[10]研究表明,饲喂10%亚麻籽对DMI、产奶量、乳脂率、乳蛋白率、乳脂产量、乳蛋白产量、乳糖产量、饲料转化率等影响不显著,除乳蛋白率的结果不同外,其他指标与本试验结果一致。添加普通脂肪使DMI下降的原因是因为粗纤维部分的消化率下降[20]。本试验使用的是RPF,对瘤胃功能影响很小,这可能是DMI未改变的原因,并由此引起对产奶量、乳脂率、乳脂产量、乳蛋白产量、乳糖产量、饲料转化率的影响不显著。对于乳蛋白率的不同结果,这可能是由于牛的品种、生产性能、不同生理阶段、不同饲粮结构等导致的。由于糖异生是反刍动物糖的最重要来源,丙酸是反刍动物体内糖异生的主要来源,其次是氨基酸[21]。本试验中产奶量平均达到34 kg,由于第2组和第3组添加了RPF,减少了氨基酸的糖异生作用,有利于提高乳蛋白率。
SCC是反映乳房健康程度的重要指标,本试验中,添加RPF均降低了SCC,可能是添加脂肪具有抗热应激的结果,试验期奶牛经历了轻度热应激,前期和后期的THI分别达到了76和75,各种应激均可以降低免疫力;另外,可能是因为添加RPUF后这些必需脂肪酸在一定条件下可以从细胞膜磷脂池中释放出来,经过代谢产生具有抗炎症作用的脂质调节物质[22]。
3.2 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛血清酶活性的影响ATGL是反映体脂肪代谢时脂肪水解的关键酶和限速酶,参与并启动脂质代谢,CPT-Ⅰ是脂肪酸β氧化的限速酶[21]。这2种酶是反映机体脂肪组织动员和脂肪酸的β-氧化的重要参考指标。第3组血清ATGL活性在后期高于第2组的原因可能是采食量较低引起的,这种影响无论在前期和后期均存在。虽然很多资料显示添加脂肪影响了采食量,但本试验并不是因为添加量较多引起的,而是RPF特有的气味影响的。
ACC是脂肪酸合成的限速酶,同时也是变构酶,经磷酸化后失去活性,从而抑制脂肪酸的合成,胰岛素则能促进去磷酸化作用,提高ACC活性,加速脂肪酸合成[21]。本试验中,3组间血清ACC活性差异不显著,但试验牛添加RPF后的ACC活性较高。
AST和ALT是动物机体内部最重要的2种转氨酶,能促进蛋白质的合成和抑制分解。虽然2种酶的活性在试验期差异不显著,但在前期第2组和第3组血清AST和ALT的活性均高于第1组。由此可以判断,添加RPF有促进蛋白质合成作用。
3.3 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛血清激素含量、生化指标和体况的影响反刍动物能量代谢的调节主要由INS和GC控制。泌乳前期处于能量负平衡时,机体动员体脂肪使血清葡萄糖升高,进一步引起INS分泌增加。
血清葡萄糖含量是机体对糖的消化、转运和代谢的综合反映。李兰等[17]在奶牛饲粮中添加200~400 g的RPF,20 d后血清葡萄糖含量显著提高。本试验在试验前期的结果与该结果一致。泌乳前期奶牛由于泌乳量高、消化能力受限,绝大部分高产牛会出现能量负平衡。添加RPF能提高饲粮能量,这些脂肪通过提供脂肪酸形式能促进糖异生作用,能在一定程度上缓解能量负平衡作用,这是添加RPF组血清葡萄糖含量较高的原因。
UN含量可以反映机体的蛋白质代谢和氨基酸平衡状况,UN含量受进食氮的影响较大。李兰等[17]的研究表明,添加RPF对血清UN含量没有显著影响,本研究结果与李兰等[17]研究结果一致,说明添加RPF对血清UN含量没有显著影响。
MDA含量是反映机体抗氧化能力的重要参数,也间接反映组织过氧化损伤。奶牛在炎热的夏季和泌乳高峰阶段会产生大量活性氧,会氧化乳腺细胞膜上的多不饱和脂肪酸的磷酸残基,不饱和脂肪酸特异性减少,保持膜坚硬状态的饱和脂肪酸相对增加,引起膜结构破坏[23],生成的脂质过氧化物分解时可产生MDA。本试验后期正处于8月份,所以,后期的血清MDA含量不仅比前期高,且添加RPF组显著低于第1组。第2组添加的是RPUF,其具有抗氧化特性,而第3组出现血清MDA含量下降现象,可能是乳腺中的去饱和脂肪酶作用的结果。
奶牛产后大量泌乳导致机体处于低血糖状态时,脂肪组织中脂肪会大量动员产生大量游离脂肪酸,血中游离脂肪酸含量的升高会促使肝脏摄取这些游离脂肪酸酯化为甘油三酯,甘油三酯可以作为极低密度脂蛋白的一部分被转运或贮存,游离脂肪酸也能被肝脏完全氧化为二氧化碳,不完全氧化时生成酮体,这是试验前期血清NEFA和BHBA含量较高的原因。
袁雪等[18]、王瑜等[24]在奶牛饲粮中添加不同剂量(300~500 g)的RPF后显著改善了试验牛体况。杨金波等[25]证明,在基础饲粮中添加棕榈油脂对低产牛体况的改善和膘情的恢复作用显著。随着DMI增加,饲粮中添加RPF满足了产奶量快速上升期间奶牛对能量的需要,使得奶牛体脂肪动员减少,这可能是体况下降不显著的原因。
3.4 饲粮添加不同过瘤胃脂肪源对奶牛牛奶中脂肪酸组成的影响试验前期各组的各种脂肪酸含量差异均不显著,原因可能在于试验前期体脂肪降解对于添加外源脂肪的干扰。试验前期奶牛处于泌乳高峰阶段,会出现体脂肪的大量分解,这些内源脂肪同摄入脂肪一起进入乳腺合成牛奶,当内源脂肪多于摄入脂肪时,乳腺内脂肪酸的合成以内源脂肪为主,而奶牛体脂肪以饱和脂肪为主。而在试验后期第2组的牛奶C18∶1n9c、C18∶2n6c和总不饱和脂肪酸含量比其余组显著增加的原因,则可能是泌乳高峰期过后,随着泌乳量的下降和奶牛消化功能的逐渐恢复,体脂肪的分解逐渐下降并消失,此时添加的外源脂肪就会对乳腺脂肪酸的合成产生影响。因为第2组的RPUF中含有较多的C18∶2和C18∶3,可能分别是C18∶2和C18∶3在乳腺内经过生物氢化作用合成C18∶1n9c和C18∶2n6c,这点也被Kennelly[26]早期研究证实。前人研究表明,在奶牛饲粮中添加胡麻籽降低了牛奶中饱和脂肪酸含量和增加了单不饱和脂肪酸和多不饱和脂肪酸含量,但n-3脂肪酸含量未增加[27],这与本试验结果一致。第3组由于添加的RPSF是以C16∶0和C18∶0为主,所以,第3组中的牛奶C16∶0含量显著高于其余组,可能是C18∶0在乳腺经脱饱和作用转化为C18∶1n9c,使第3组中的牛奶C18∶0含量和其他组差异不显著。
4 结论添加RPF可提高牛奶中乳蛋白率,降低血清中MAD含量,改善体况,其中RPUF还能提高牛奶中油酸和亚油酸含量,改善乳品质量。
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