如何延长蛋鸡产蛋期,实现“100周龄500只蛋”是近年来国外育种公司的热点研究之一。众所周知,在蛋鸡产蛋后期,蛋鸡的产蛋性能降低[1-2]、蛋品质下降、破蛋率增加[3]、平均产蛋间隔增加[4]、卵巢上的卵泡数目减少、闭锁卵泡数目增加[5]。然而,在产蛋后期,卵巢加速老化的机制尚不完全清楚。因此,延缓卵巢衰老和预防卵巢功能障碍是家禽生产中首要解决的问题。褪黑素(N-乙酰基-5-甲氧基色胺)在20世纪50年代首次在松果腺中发现[6],是由松果体分泌的一种吲哚类的神经内分泌激素,其生物学作用十分广泛。褪黑素是协调光照信息与生殖系统关系的重要激素,作用于下丘脑-垂体-性腺轴中的多个位点,从而参与对动物生殖、内分泌、免疫和神经系统的生物调节[7-8],还有维持昼夜节律、改善睡眠、镇静镇痛、抗应激、抗衰老、抗氧化、抗肿瘤和增强机体的免疫力等诸多功能[9-11]。已有研究发现,血液中褪黑激素含量与鸡的年龄呈反比,在产蛋后期褪黑素含量显著降低[12]。产蛋后期蛋鸡产蛋率急剧下降,但是研究发现体内仍然有大量发育的卵泡。如果从生理学的角度出发,通过生理调节如外源注射褪黑素促进卵泡的生长发育,降低卵泡的闭锁率,从而提高产蛋后期的产蛋率是否可行?而且以前的褪黑激素研究主要集中在其对产蛋高峰期或家禽早期的影响,因此,本研究拟探讨褪黑激素对产蛋后期蛋鸡的影响,研究外源褪黑素处理是否可以延缓蛋鸡卵巢衰老,是否可以提高蛋鸡的产蛋率,以期为褪黑素在家禽生产中的应用提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 试验动物及饲粮随机选取健康、体重相近的70周龄大午金凤蛋鸡60只,随机分为3组,每组4个重复,每个重复5只。对照组腹腔注射等量生理盐水,试验Ⅰ组腹腔注射20 mg/(kg·d)褪黑素,试验Ⅱ组腹腔注射50 mg/(kg·d)褪黑素。所有试验动物单笼饲养,控制温度条件为(23±2) ℃,相对湿度为(65±10)%,严格控制光照条件为16L : 8D,试验期间自由采食,自由饮水。预试期7 d,正试期28 d。基础饲粮组成及营养水平见表 1。
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表 1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (air-dry basis) |
褪黑素购于美国Sigma-Aldrich公司(货号M5250),褪黑素先在10%无水乙醇充分溶解,再用生理盐水调整到试验浓度,并在每天的16:00进行注射,对照组的生理盐水无水乙醇浓度也调整为10%。试验鸡只在试验期进行称重,严格按照体重确定注射剂量。
1.3 样品采集与指标测定 1.3.1 样品采集以个体为单位,每天记录蛋鸡的投料量与剩余料量、蛋重、产蛋数等,并以周为单位计算平均日采食量、产蛋率、料蛋比。每周每组随机取10个鸡蛋进行蛋品质测定,测定后蛋黄置于-80 ℃保存,用于蛋黄其他指标的测定。每周每组随机取10只鸡于试验第1、7、14、21、28天当天16:00进行采血,采集的血样3 000 r/min离心15 min,分离血清,-20 ℃保存,用于血清指标的测定。试验结束时,通过颈脱位方法对试验鸡只处死,完整取出卵巢,将不同等级卵泡分离并记录卵泡的数量,然后将卵巢基质取一部分于-80 ℃冻存,用于卵巢基质相关指标的测定。
1.3.2 生产性能指标
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蛋形指数:利用蛋形指数测定仪(以色列NFN385)进行测定,测量鸡蛋最大纵径和横径,取纵径与横径之比为蛋形指数。
蛋壳厚度:采用游标卡尺进行测定,剥离蛋壳膜后,取钝端、锐端、中间部位3点进行测定,取平均值。
蛋壳强度:采用蛋壳强度分析仪(EFR-01,以色列)进行测定,将鸡蛋钝端向上,锐端向下放到蛋壳强度分析仪上,探头向下移动,当蛋壳出现第1道裂纹时即为蛋壳的强度。
蛋黄、蛋壳相对重:利用电子天平对蛋黄重、蛋壳重和蛋重进行测定后采用公式计算相对重。
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蛋重、蛋白高度和哈氏单位:采用蛋品质分析仪(EA-01,以色列)进行测定,将鸡蛋轻轻打碎后,将其内容物轻轻放于盛载样品的平板上,采用激光技术进行测定。
1.3.4 血清指标测定采用酶联免疫吸附试验(ELISA)法测定血清中褪黑素(MT)、活性氧(ROS)、免疫球蛋白(Ig)A、IgG、IgM含量,总抗氧化能力(T-AOC),超氧化物歧化酶(SOD)活性及促卵泡素(FSH)、促黄体素(LH)含量,试剂盒购自上海江莱生物科技有限公司,按照说明书进行操作。
1.3.5 蛋黄指标测定将分离好的蛋黄离心称取1 g样品,加入9 mL预冷的磷酸盐缓冲液(PBS)于玻璃匀浆器充分混匀,最后将匀浆液于5 000 r/min离心10 min,取上清液检测。采用ELISA方法测定蛋黄中MT和ROS含量、T-AOC及SOD活性,试剂盒购自上海江莱生物科技有限公司,按照说明书进行操作。
1.3.6 卵巢指标测定将卵巢基质倒入玻璃匀浆器后,加入预冷的PBS进行匀浆处理,上下转动研磨6~8 min,使组织充分匀浆化。采用ELISA方法测定卵巢中MT和ROS含量、T-AOC及SOD活性,试剂盒购自上海江莱生物科技有限公司,按照说明书进行操作。
1.3.7 发育卵泡数量观察与统计将卵泡按直径进行分类:排卵前卵泡(PF):>10 mm,小黄卵泡(SYF):8~10 mm;大白卵泡(LWF):6~8 mm;中白卵泡(MWF):4~6 mm;小白卵泡(SWF):2~4 mm;初始卵泡(PE):< 2 mm[13]。
1.4 数据分析采用SPSS 23.0软件中的one-way ANOVA程序对数据进行单因素方差分析,用Duncan氏法进行多重比较,试验数据均以“平均值±标准差”表示,P < 0.05表示差异显著,P < 0.01表示差异极显著。对于不符合正态分布的试验数据用中位数表示。
2 结果与分析 2.1 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡生产性能的影响由表 2可知,外源褪黑素并没有对第1~7天产蛋后期蛋鸡的生产性能产生显著的影响(P>0.05),在第8~14天时,试验Ⅰ组的产蛋率显著高于对照组和试验Ⅱ组(P<0.05),且料蛋比极显著低于对照组和试验Ⅱ组(P<0.01)。在第15~21天和第22~28天时,试验Ⅰ、Ⅱ组产蛋率极显著高于对照组(P<0.01),料蛋比极显著低于对照组(P<0.01)。
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表 2 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡生产性能的影响 Table 2 Effects of exogenous melatonin on performance of laying hens during later laying period |
由表 3可知,试验Ⅰ、Ⅱ组排卵前卵泡、小黄卵泡和小白卵泡的数量都稍高于对照组,大白卵泡数量显著高于对照组(P < 0.05)。
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表 3 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡发育卵泡数量的影响 Table 3 Effects of exogenous melatonin on the number of follicles of laying hens during later laying period |
由表 4可知,在第1~7天时,试验Ⅱ组蛋白高度显著高于对照组和试验I组(P<0.05);在第15~21天及第22~28天时,试验Ⅱ组蛋壳厚度和蛋壳强度稍高于对照组,但差异不显著(P>0.05)。
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表 4 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡蛋品质的影响 Table 4 Effects of exogenous melatonin on egg quality of laying hens during later laying period |
由表 5可知,在第7天时,与对照组相比,试验Ⅰ、Ⅱ组血清褪黑激素含量极显著高于对照组(P < 0.01),且试验Ⅰ组显著高于对照组(P < 0.05);在第21天时,试验Ⅱ组血清褪黑素含量极显著高于对照组和试验Ⅰ组(P < 0.01);在第28天时,试验Ⅰ、Ⅱ组血清褪黑素含量极显著高于对照组(P < 0.01)。在第14、21天时,试验Ⅱ组蛋黄褪黑素含量极显著高于试验Ⅰ组和对照组(P < 0.01);在第28天时,试验Ⅰ、Ⅱ组蛋黄褪黑素含量显著高于对照组(P < 0.05)。在第28天时,试验Ⅱ组卵巢褪黑素含量极显著高于对照组(P < 0.01),试验Ⅰ组显著高于对照组(P < 0.05)。
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表 5 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡体内血清、蛋黄及卵巢中褪黑素含量的影响 Table 5 Effects of exogenous melatonin on melatonin contents in serum, egg yolk and ovary of laying hens during later laying period |
由表 6可知,在第14、21天时,试验Ⅱ组血清T-AOC极显著高于对照组(P < 0.01),且试验Ⅰ组显著高于对照组(P < 0.05);在第28天时,试验Ⅱ组血清T-AOC极显著高于试验Ⅰ组和对照组(P < 0.01)。在第14天时,试验Ⅱ组蛋黄T-AOC极显著高于试验I组和对照组(P < 0.01);在第21天时,试验Ⅱ组蛋黄T-AOC极显著高于试验I组(P < 0.01);在第28天时,试验Ⅱ组蛋黄T-AOC极显著高于对照组(P < 0.01),显著高于试验Ⅰ组(P < 0.05)。在第28天时,试验Ⅱ组卵巢T-AOC极显著高于对照组和试验Ⅰ组(P < 0.01)。
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表 6 外源褪黑素对产蛋后期血清、蛋黄及卵巢中蛋鸡抗氧化指标的影响 Table 6 Effects of exogenous melatonin on antioxidant indexes in serum, egg yolk and ovary of laying hens during later laying period |
在第7、14和21天时,试验Ⅱ组血清SOD活性极显著高于试验Ⅰ组和对照组(P < 0.01);在第28天时,试验Ⅱ组的血清SOD活性极显著高于对照组(P < 0.01),试验Ⅰ组血清SOD活性显著高于对照组(P < 0.05)。在第21天时,试验Ⅱ组蛋黄SOD活性极显著高于试验Ⅰ组和对照组(P < 0.01);在第28天时,试验Ⅱ组蛋黄SOD活性极显著高于对照组(P < 0.01),试验I组显著高于对照组(P < 0.05)。在第28天时,试验Ⅱ组卵巢SOD活性极显著高于对照组(P < 0.01),且试验Ⅰ组显著高于对照组(P < 0.05)。
在第7天时,试验Ⅱ组血清ROS含量极显著低于对照组(P < 0.01),试验Ⅰ组显著低于对照组(P < 0.05);在第14和21天时,与对照组相比,试验Ⅱ组血清ROS含量显著降低(P < 0.05);在第28天时,试验Ⅱ组血清ROS含量极显著低于试验Ⅰ组和对照组(P < 0.01)。在第14天时,试验Ⅰ、Ⅱ组蛋黄ROS含量显著低于对照组(P < 0.05);在第21天时,试验Ⅰ、Ⅱ组蛋黄ROS含量极显著低于对照组(P < 0.01)。试验第28天时,试验Ⅰ、Ⅱ组卵巢ROS含量极显著低于对照组(P < 0.01),且试验Ⅱ组极显著低于试验Ⅰ组(P < 0.01)。
2.6 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡血清中免疫球蛋白含量的影响由表 7可知,血清中的IgA含量结果显示,第1天时各组之间没有显著差异(P>0.05);第7天时,试验Ⅰ、Ⅱ组显著高于对照组(P < 0.05);在第14天时,试验Ⅱ组极显著高于试验Ⅰ组和对照组(P < 0.01);在第21和28天时,试验Ⅰ、Ⅱ组极显著高于对照组(P < 0.01)。血清中的IgG含量结果显示,在第7天时,试验Ⅰ、Ⅱ组极显著高于对照组(P < 0.01);在第14天时,试验Ⅱ组极显著高于对照组(P < 0.01),显著高于试验Ⅰ组(P < 0.05);在第21和28天时,试验Ⅰ、Ⅱ组极显著高于对照组(P < 0.01)。血清中的IgM含量结果显示,在第21天时,试验Ⅱ组极显著高于对照组(P < 0.01),试验Ⅰ组显著高于对照组(P < 0.05),在第28天时,试验Ⅱ组显著高于对照组(P < 0.05)。
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表 7 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡血清中免疫球蛋白含量的影响 Table 7 Effects of exogenous melatonin on immunoglobulin contents in serum of laying hens during later laying period |
由表 8可知,在第14和21天时,试验组Ⅰ、Ⅱ组血清FSH含量极显著高于对照组(P < 0.01),在第28天时,试验Ⅱ组血清FSH含量极显著高于对照组(P < 0.01),显著高于试验Ⅰ组(P < 0.05)。血清LH含量的结果显示,在第21和28天时,试验组Ⅰ、Ⅱ组均极显著高于对照组(P < 0.01)。
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表 8 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡血清中生殖激素含量的影响 Table 8 Effects of exogenous melatonin on reproductive hormones contents in serum of laying hens during later laying period |
家禽卵巢以卵泡作为基本功能单位。卵泡的生长和发育是一个非常复杂的过程,具有严格有序的层次结构。通常只有1个小黄卵泡(直径 < 8 mm)进入排卵前卵泡序列,最后排卵。其余的小黄卵泡被闭锁或吸收[14]。鸡的卵泡数量的多少决定着产蛋性能。蛋鸡卵巢卵泡数量随着年龄的增长而减少,且随年龄的增长,卵泡排卵时的体积不断增大[5]。研究发现,处于排卵时期的卵泡新陈代谢十分旺盛,此过程会产生大量的自由基,而高含量的褪黑素是使排卵过程顺利完成的重要保证[15]。产蛋后期蛋鸡体内的褪黑素含量降低,本研究结果表明,对70周龄产蛋后期蛋鸡腹腔注射褪黑素后可以显著提高大白卵泡的数量,且褪黑素组的产蛋率在添加第2周后显著升高。Jia[12]研究发现,在550日龄蛋鸡皮下埋入褪黑素(10 mg)时,产蛋率显著高于对照组。杨博等[16]研究发现,每天用3 mg褪黑素处理蛋鸭后其产蛋率显著高于对照组。褪黑激素-牛血清蛋白主动免疫促进了皖西白鹅的排卵,并提高了2年龄皖西白鹅的产蛋率[17]。这些结果都与本试验研究结果一致。褪黑素通过减少卵母细胞数量和质量的下降来延缓卵巢衰老[18]。这可能是由于褪黑素受体存在于鸡的卵巢[19]和卵巢颗粒细胞[20],褪黑素可以通过受体直接调节卵巢的功能。褪黑素可能发挥了其直接和间接抗氧化作用进而清除氧化应激产生的ROS,从而防止卵泡闭锁[21],褪黑素还可以调节颗粒细胞和卵泡内膜细胞中甾体生成酶的活性及其基因表达,调节性激素的生成,从而促进卵泡的生长发育,提高产蛋率,并且使产蛋后期产蛋率下降的趋势变得缓慢。
3.2 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡蛋品质的影响本试验研究发现,外源补充褪黑素并没有对产蛋后期蛋鸡的蛋品质产生显著的影响,但是褪黑素组的蛋壳厚度和蛋壳强度都稍高于对照组。禽类松果体分泌的褪黑素可能通过介导降钙素、甲状旁腺素及雌激素分泌,节律性地调节体内钙代谢[22],从而影响蛋壳的形成。
3.3 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡抗氧化性能的影响体内的自由基在正常生理条件下与抗氧化系统处于平衡状态。一旦平衡被打破,机体清除自由基的能力就会降低,导致ROS过度积累从而引起氧化应激。由ROS引起的氧化应激被认为是影响卵巢衰老的最直接因素[23]。机体的抗氧化酶主要是SOD。SOD活性是衡量机体抗氧化能力的重要指标之一[24]。SOD通过清除体内细胞中的自由基来保护细胞免受氧化应激的损伤。T-AOC反映生物体的总抗氧化能力。在本研究中,褪黑素组在注射第2周后显著增加了产蛋后期蛋鸡血清、蛋黄和卵巢的SOD活性和T-AOC。Ozturk等[25]研究发现,给予10 mg/kg褪黑素7 d后可显著提高大鼠的肝脏SOD活性。Kim等[26]报道了褪黑素(715 g/kg)处理14 d后大鼠血液中T-AOC和SOD活性增加。这些结果与本研究的结果一致。褪黑素被称为高效的自由基清除剂[21]。其自由基清除能力是维生素E的2倍、谷胱甘肽的4倍、甘露醇的14倍。在本研究中,与对照组相比,褪黑素组处理2周后血清、蛋黄的ROS含量显著降低。由于褪黑素独特的物理和化学特性,同时具备脂溶性和水溶性,使其能自由通过任何生理屏障,可以直接到达线粒体,因此与其他抗氧化剂相比更具有优势[27]。褪黑素可直接清除自由基[28]。而且褪黑素广泛分布于组织和细胞中[29],并通过其受体发挥广泛作用。本研究结果发现,褪黑素具有高效的ROS清除能力,并通过增强内源性抗氧化剂的产生间接抑制氧化应激。
3.4 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡免疫性能的影响免疫性能是维持家禽健康的重要参数,研究发现鸽子的免疫性能在松果腺切除后减少,表明免疫功能受褪黑素调节[30]。在本研究中,外源补充褪黑素显著改善了血清中IgA、IgG、IgM含量。在第28天时,试验Ⅱ组的血清免疫球蛋白含量与对照组相比达到了极显著的水平。褪黑素的免疫调节作用可以通过与免疫细胞中的受体直接相互作用来介导。褪黑素受体存在于脾和淋巴组织中[31],褪黑激素与受体2-[125I]碘褪黑素结合位点反应,刺激免疫细胞产生免疫阿片类和淋巴因子,介导褪黑素的免疫调节功能。研究发现,外源补充褪黑素可以提高日本鹌鹑[32]和鸡[33]的细胞和体液免疫反应。褪黑素还可通过增加机体免疫器官的重量,并通过神经-内分泌-免疫网调控[34]。卢玉发[35]研究表明10 mg/kg褪黑素能够促进肉鸡主要免疫器官的发育,提高免疫器官指数。这与本研究结果一致,表明褪黑素直接作用于免疫系统从而提高机体的免疫性能。
3.5 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡繁殖性能的影响褪黑素通过下丘脑-垂体-性腺轴,在下丘脑水平上调节促性腺激素的分泌,进而影响生殖系统功能,并且与卵巢受体结合,直接调节性腺激素的合成和分泌[36]。本试验研究结果显示,对产蛋后期的蛋鸡进行外源补充褪黑素后,血清FSH含量在第2周,LH含量在第3周都开始显著升高。Jia[12]研究发现,在360日龄母鸡皮下埋入10 mg褪黑素后发现,血清FSH和LH含量显著升高,与本试验研究结果一致。高水平的褪黑素可以增加血清中LH和FSH的含量。而低含量的LH和FSH可以抑制排卵[37]。褪黑素及其受体在动物生殖过程的调节中起着至关重要的作用。因此,褪黑素的这些活动也可以帮助母鸡在产蛋高峰期后保持产蛋率。
3.6 外源褪黑素对产蛋后期蛋鸡体内褪黑素含量的影响内源褪黑素主要由松果体合成、分泌,是脂溶性的,因此可以通过松果体细胞内的细胞膜进入到血液中,分解代谢主要是在肝脏和脑中进行,代谢产物则随尿液排出[38]。褪黑素只有与特异的受体结合才能发挥生物学作用。已有研究证实,褪黑素受体存在于鸡的卵巢[19]、鸡卵巢颗粒细胞[20]及鸡脑、肾脏、脾脏、肺[31]。蛋鸡随周龄增加体内褪黑素分泌水平变低,而且下丘脑-垂体-性腺轴对生殖激素的敏感性变弱,外源注射褪黑素处理后,褪黑素可能与相应受体结合从而提高了蛋鸡血液、蛋黄和卵巢基质中的褪黑素含量,这表明外源性注射褪黑激素显著增加了蛋鸡体内的褪黑素含量。
4 结论① 50 mg/(kg·d)外源褪黑素处理2周后可以显著提高产蛋后期蛋鸡的产蛋率及大白卵泡的数量。
② 50 mg/(kg·d)外源褪黑素处理2周后显著提高了血清和蛋黄中的褪黑素含量、SOD活性及T-AOC,显著降低了ROS含量。
③ 50 mg/(kg·d)外源褪黑素处理2周后显著提高了血清中免疫球蛋白含量及生殖激素FSH和LH含量。
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