动物营养学报 >

2026 , Vol. 38 >Issue 9: 6616 - 6628

DOI: https://doi.org/10.12418/CJAN2026.530

研究论文

酸化剂、酶制剂和益生菌联用对黄羽肉鸡生长性能、抗氧化能力、免疫功能及盲肠菌群结构的影响

  • 黄钰杰 , 1, 2 ,
  • 杨旗 1, 2 ,
  • 丁发源 2 ,
  • 张赛 2 ,
  • 苟钟勇 2 ,
  • 林厦菁 2 ,
  • 叶金玲 2 ,
  • 王薇薇 3 ,
  • 杨琳 1 ,
  • 阮栋 , 2, *
展开
  • 1 华南农业大学动物科学学院, 广东省动物营养调控重点实验室, 广州 510642
  • 2 广东省农业科学院动物科学研究所, 猪禽种业全国重点实验室,农业农村部华南动物营养与饲料重点实验室,广东省畜禽育种与营养重点实验室, 广州 510640
  • 3 国家粮食和物资储备局科学研究院, 粮油生物技术重点实验室, 北京 100037
* 阮 栋,研究员,硕士生导师,E-mail:

黄钰杰(2001—),男,广东珠海人,硕士研究生,研究方向为动物营养与饲料科学。E-mail:

Office editor: 菅景颖

收稿日期: 2026-01-29

  网络出版日期: 2026-09-12

基金资助

国家重点研发计划项目(2022YFD1300502)

广东省饲料产业技术体系项目(2026CXTD14)

国家自然科学基金项目(32402816)

广东省自然科学基金项目(2024A1515012121)

广东省科技计划项目(2026B0202150004)

收起

Effects of Combined Supplementation of Enzymes, Acidifiers and Probiotics on Growth Performance, Antioxidant Capacity, Immune Function and Cecal Microbiota Structure of Yellow-Feathered Broilers

  • HUANG Yujie , 1, 2 ,
  • YANG Qi 1, 2 ,
  • DING Fayuan 2 ,
  • ZHANG Sai 2 ,
  • GOU Zhongyong 2 ,
  • LIN Xiajing 2 ,
  • YE Jinling 2 ,
  • WANG Weiwei 3 ,
  • YANG Lin 1 ,
  • RUAN Dong , 2, *
Expand
  • 1 Guangdong Provincial Key Laboratory of Animal Nutrition Regulation, College of Animal Science, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, China
  • 2 Guangdong Provincial Key Laboratory of Animal Breeding and Nutrition, Key Laboratory of Animal Nutrition and Feed Science in South China, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, State Key Laboratory of Swine and Poultry Breeding, Institute of Animal Science, Guangdong Academy of Agricultural Sciences, Guangzhou 510640, China
  • 3 Key Laboratory of Grain and Oils Biotechnology, Academy of National Food and Strategic Reserves Administration, Beijing 100037, China
* professor, E-mail:

Received date: 2026-01-29

  Online published: 2026-09-12

Fold

摘要

本研究旨在探讨酸化剂、酶制剂与益生菌联用对黄羽肉鸡生长性能、抗氧化能力、免疫功能及盲肠菌群结构的影响。将900羽1日龄中速型黄羽肉鸡随机分为5组,每组6个重复,每个重复30羽。对照组(CON组)饲喂基础饲粮;4个试验组分别在基础饲粮中添加0.15%酸化剂+300 mg/kg酶制剂(AE组)、0.15%酸化剂+200 mg/kg益生菌(AP组)、300 mg/kg酶制剂+200 mg/kg益生菌(EP组)及0.15%酸化剂+300 mg/kg酶制剂+200 mg/kg益生菌(AEP组)。试验期为30 d。结果表明:1)各组间的终末体重、平均日采食量、平均日增重、料重比和死亡率均无显著差异(P>0.05)。2)与CON组相比,EP、AP和AEP组空肠中谷胱甘肽过氧化物酶、总超氧化物歧化酶活性及总抗氧化能力显著提高(P<0.05)。3)EP组血浆中免疫球蛋白G含量较CON组和其他试验组显著提高(P<0.05);与CON组相比,AE、AP和EP组空肠中免疫球蛋白G含量显著提高(P<0.05)。4)与CON组相比,EP组盲肠菌群中拟杆菌门(Bacteroidota)、粪杆菌属(Faecalibacterium)相对丰度上升,弯曲杆菌门(Campylobacterota)相对丰度下降。综上所述,酸化剂、酶制剂与益生菌两两或三者联用可改善黄羽肉鸡肠道抗氧化能力与免疫功能,并优化盲肠菌群结构,其中以酶制剂与益生菌联用效果最优。

关键词： 菌酶酸协同; 黄羽肉鸡; 生长性能; 抗氧化能力; 免疫功能; 盲肠菌群

本文引用格式

黄钰杰 , 杨旗 , 丁发源 , 张赛 , 苟钟勇 , 林厦菁 , 叶金玲 , 王薇薇 , 杨琳 , 阮栋 . 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对黄羽肉鸡生长性能、抗氧化能力、免疫功能及盲肠菌群结构的影响[J]. 动物营养学报, 2026 , 38(9) : 6616 -6628 . DOI: 10.12418/CJAN2026.530

Abstract

This study was conducted to investigate the effects of combined supplementation of acidifiers, enzymes and probiotics on growth performance, antioxidant capacity, immune function and cecal microbiota structure of yellow-feathered broilers. A total of 900 one-day-old medium-growing yellow-feathered broilers were randomly allocated into 5 groups, with 6 replicates per group and 30 birds per replicate. The control group (CON group) was fed a basal diet; the four experimental groups were fed the basal diet supplemented with 0.15% acidifiers+300 mg/kg enzymes (AE group), 0.15% acidifiers+200 mg/kg probiotics (AP group), 300 mg/kg enzymes+200 mg/kg probiotics (EP group) and 0.15% acidifiers+300 mg/kg enzymes+200 mg/kg probiotics (AEP group), respectively. The trial lasted for 30 days. The results showed as follows: 1) no significant differences were observed among groups in final body weight, average daily feed intake, average daily gain, feed to gain ratio and mortality (P>0.05). 2) Compared with the CON group, the activities of glutathione peroxidase and total superoxide dismutase, as well as total antioxidant capacity in the jejunum, were significantly increased in the EP, AP and AEP groups (P<0.05). 3) The plasma immunoglobulin G content in the EP group was significantly higher than that in the CON group and other experimental groups (P<0.05); compared with the CON group, the jejunal immunoglobulin G content was significantly increased in the AE, AP and EP groups (P<0.05). 4) Compared with the CON group, the EP group showed increased relative abundances of Bacteroidota and Faecalibacterium, and decreased relative abundance of Campylobacterota in the cecal microbiota. In conclusion, combined supplementation of acidifiers, enzymes and probiotics in two-way or three-way combinations can improve intestinal antioxidant capacity and immune function, and optimize cecal microbiota structure of yellow-feathered broilers, with the combination of enzymes and probiotics exhibiting the best effects.

Key words： acidifier enzyme probiotic synergy; yellow-feathered broilers; growth performance; antioxidant capacity; immune function; cecal microbiota

随着畜牧业向现代化转型,饲料资源供给正面临严峻挑战,尤其是以玉米、豆粕为主的传统原料短缺问题日益突出。在此背景下,推动饲粮配方中玉米和豆粕的减量替代,对保障国家粮食安全和促进畜牧业高质量发展具有重要意义。然而,小麦、高粱、菜籽粕等非常规原料中普遍含有非淀粉多糖等抗营养因子,不仅影响养分消化吸收,还可能损害肠道健康,抑制畜禽生长[1-2]。酸化剂、酶制剂和益生菌作为3类低剂量添加、绿色安全的饲料添加剂,分别通过降低消化道pH、提高养分降解率以及调控肠道微生态平衡发挥作用,能够有效消减多种抗营养因子的负面影响,促进畜禽生长,因而成为实现玉米豆粕减量替代、提升非常规饲料资源利用效率并改善肠道健康的重要手段。Yi等[3]研究表明,在肉鸡饲粮中添加复合酶制剂可提高饲料利用率,促进营养物质的消化吸收。Hou等[4]研究显示,饲粮中添加包被丁酸钠可以显著提高黄羽肉鸡的平均日增重和平均日采食量,并降低料重比。Gao等[5]研究发现,饲粮中添加酸化剂可降低肉鸡胃肠道pH,提高消化酶活性,同时减少肠道中大肠杆菌和沙门氏菌的数量。Yin等[6]研究指出,饲粮中添加植物乳杆菌显著提高了黄羽肉鸡的平均日采食量和饲料转化率,并在第7天显著提升新城疫疫苗抗体水平;空肠绒毛高度/隐窝深度比值在42日龄时显著升高,并伴随空肠屏障相关基因表达上调。其他益生菌同样被证实对家禽免疫调节、组织发育及细胞因子分泌方面具有积极作用,有助于增强肠黏膜抵御病原体的能力[7]。当前,关于酸化剂、酶制剂和益生菌作为单一添加剂在肉鸡饲粮中应用的研究已有较多报道,关于其协同效应的研究也多集中于工艺优化及剂量配比调控等方面,而有关三者联合在肉鸡饲粮中应用的研究仍较缺乏,其实际应用效果及潜在机制尚不清楚,亟待系统探索。因此,本试验以中速型黄羽肉鸡为对象,探讨在低玉米-低豆粕的杂粕型饲粮中联合添加酸化剂、酶制剂和益生菌对黄羽肉鸡生长性能、抗氧化能力、免疫功能及盲肠菌群结构的影响,旨在为生产实践中选用高效菌酶酸复合添加剂提供科学依据与理论指导。

1 材料与方法

1.1 伦理申明

本试验已由广东省农业科学院动物科学研究所实验动物伦理委员会批准,伦理批准编号为2025038。

1.2 试验材料

试验所用酶制剂、酸化剂和益生菌均由珠海某生物科技有限公司提供。其中,酶制剂包含木聚糖酶(≥80 000 U/g)、纤维素酶(≥9 000 U/g)、β-葡聚糖酶(≥6 000 U/g)、蛋白酶(≥1 700 U/g)和淀粉酶(≥400 U/g);酸化剂主要成分为乳酸(≥18%)、甲酸(≥14%)和丙酸(≥28%);益生菌由枯草芽孢杆菌(≥2×108 CFU/g)和屎肠球菌(≥2×108 CFU/g)组成。

1.3 试验设计

选择健康、体重相近的1日龄中速型黄羽肉鸡(优黄鸡)母雏900只,随机分为5个组,每组6个重复,每个重复30羽。对照组(CON组)饲喂基础饲粮;4个试验组分别在基础饲粮中添加0.15%酸化剂+300 mg/kg酶制剂(AE组)、0.15%酸化剂+200 mg/kg益生菌(AP组)、300 mg/kg酶制剂+200 mg/kg益生菌(EP组)及0.15%酸化剂+300 mg/kg酶制剂+200 mg/kg益生菌(AEP组)。酸化剂、酶制剂、益生菌的添加量均依据前期试验结果[3,5,8]设定。试验期为30 d。

1.4 试验饲粮

本试验采用低玉米-低豆粕的杂粕型饲粮为基础饲粮,其主要原料包括玉米、小麦、高粱、豆粕、菜籽粕、葵花仁粕及玉米蛋白粉。基础饲粮配方依据《中国饲料成分及营养价值表》(2022年第33版)及《黄羽肉鸡营养需要量》(NY/T 3645—2020)中中速型黄羽肉鸡的营养需求进行科学配制。基础饲粮组成及营养水平见表1。
表1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (air-dry basis)

项目Items 含量Content
原料Ingredients
玉米Corn 11.25
小麦Wheat 35.00
高粱Sorghum 16.00
豆粕Soybean meal 14.80
菜籽粕Rapeseed meal 5.00
葵花仁粕Sunflower seed meal 6.00
玉米蛋白粉Corn gluten meal 3.40
豆油Soybean oil 4.20
石粉Limestone 1.03
磷酸氢钙CaHPO4 1.46
食盐NaCl 0.30
L-赖氨酸盐酸盐L-Lys·HCl (98.5%) 0.38
DL-蛋氨酸DL-Met (99%) 0.10
L-苏氨酸L-Thr (99%) 0.06
色氨酸Trp (99%) 0.02
预混料Premix1) 1.00
合计Total 100.00
营养水平Nutrient levels2)
氮校正代谢能MEn/(MJ/kg) 11.92
粗蛋白质CP 20.05
钙Ca 0.92
总磷TP 0.65
非植酸磷NPP 0.41
赖氨酸Lys 1.10
蛋氨酸Met 0.44
蛋氨酸+半胱氨酸Met+Cys 0.79
苏氨酸Thr 0.74
色氨酸Trp 0.18
异亮氨酸Ile 0.74

1)预混料为每千克饲粮提供The premix provides the following per kg of the diet:VA 12 000 IU,VD3 600 IU,VE 45 IU,VK3 2.5 mg,VB1 2.4 mg,VB2 5.0 mg,VB6 2.8 mg,VB12 0.01 mg,烟酸 nicotinic acid 42 mg,泛酸 pantothenic acid 12 mg,生物素 biotin 0.12 mg,叶酸 folic acid 1.0 mg,氯化胆碱 choline chloride 1 000 mg,Fe (as ferrous sulfate) 80 mg,Cu (as copper sulfate) 7 mg,Mn (as manganese sulfate) 60 mg,Zn (as zinc sulfate) 65 mg,I (as potassium iodide) 0.60 mg,Se (as sodium selenite) 0.15 mg。

2)粗蛋白质、钙和总磷为实测值,分别参照GB/T 6432—2018、GB/T 6436—2018和GB/T 6437—2018方法测定;氮校正代谢能、氨基酸及非植酸磷为计算值,依据《中国饲料成分及营养价值表》(2022年第33版)中各原料数据计算。CP, Ca and TP are measured values according to GB/T 6432—2018, GB/T 6436—2018 and GB/T 6437—2018, respectively. MEn, amino acids and NPP are calculated values based on the ingredient data in the Tables of Feed Composition and Nutritive Values in China (33rd edition, 2022).

1.5 饲养管理

动物试验在广东省农业科学院动物科学研究所试验场进行,试验前对鸡舍进行全面清洗和消毒。试验鸡为地面平养,试验期间自由采食及饮水,按常规肉鸡饲养管理规程进行疫苗接种。试验期间维持鸡舍清洁与卫生,全程无抗饲养。每天08:00、12:00和17:30收集鸡舍温湿度数据,每日记录死鸡数、体重和剩料量。

1.6 样品采集与制备

饲养试验结束(30日龄)后,从每个重复中选取2只体重接近该重复平均体重的试验鸡,分别进行以下样品采集:1)翅根静脉采血,使用含肝素钠的真空采血管收集血液5 mL,经2 500×g离心10 min后,分离血浆,分装标记后于-80 ℃保存,备用;2)采集空肠段约5 cm,经磷酸盐缓冲液(PBS)润洗后置于RNase-Free冻存管中,于-80 ℃保存,用于抗氧化与免疫指标测定;3)收集盲肠内容物,分装标记后于-80 ℃保存,用于肠道微生物区系分析。

1.7 检测指标与方法

1.7.1 生长性能

饲养试验结束前12 h断水断料,次日08:00对各重复试验鸡逐只称重,作为终末体重;根据试验期间记录的初始体重、终末体重、死鸡数、投料量和剩料量计算平均日采食量、平均日增重、料重比及死亡率。

1.7.2 血浆和空肠中抗氧化指标

血浆和空肠中谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)与总超氧化物歧化酶(T-SOD)活性、总抗氧化能力(T-AOC)及丙二醛(MDA)含量测定所用试剂盒均购自南京建成生物工程研究所,检测时使用Thermo Scientific Varioskan LUX多功能酶标仪(Thermo Fisher Scientific,美国),严格按照各试剂盒说明书进行操作。

1.7.3 血浆和空肠中免疫指标

血浆中免疫球蛋白A(IgA)、免疫球蛋白G(IgG)和免疫球蛋白M(IgM)含量以及空肠中白细胞介素-1β(IL-1β)、白细胞介素-10(IL-10)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、分泌型免疫球蛋白A(SIgA)、IgG含量和新城疫抗体滴度(NDV-Ab)测定试剂盒均采购于江苏酶免实业有限公司,各指标严格按照说明书进行测定。

1.7.4 盲肠菌群结构

盲肠内容物样品(-80 ℃冻存)经干冰保存运送至上海美吉生物医药科技有限公司进行微生物区系分析。原始测序数据经质控与整理后,将有效序列以97%一致性聚类为操作分类单位(OTUs),并统计OTUs数量。基于OTUs注释结果,开展盲肠菌群结构分析,包括门水平和属水平的物种相对丰度、α-多样性指数,以及基于β-多样性的主坐标分析(PCoA)。

1.8 统计分析

试验数据使用SAS 9.0软件进行统计分析。采用单因素方差分析(one-way ANOVA)对组间差异进行检验,并以Duncan氏法进行多重比较,以P<0.05为差异显著性判断标准。试验数据以平均值和均值标准误(SEM)表示。

2 结果与分析

2.1 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对1~30日龄黄羽肉鸡生长性能的影响

由表2可知,各组间的终末体重、平均日采食量、平均日增重、料重比和死亡率均无显著差异(P>0.05),但EP组的终末体重和平均日增重均是最高的。
表2 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对1~30日龄黄羽肉鸡生长性能的影响

Table 2 Effects of combined supplementation of acidifiers, enzymes and probiotics on growth performance of yellow-feathered broilers aged 1 to 30 days

项目
Items		 组别Groups SEM P值
P-value
CON AE AP EP AEP
初始体重IBW/g 29.10 29.12 29.09 29.11 29.09 0.009 0.720
终末体重FBW/g 618.94 625.52 615.67 631.67 612.19 5.474 0.083
平均日采食量ADFI/g 38.16 38.26 38.66 38.71 38.30 0.383 0.769
平均日增重ADG/g 19.66 19.82 19.55 20.09 19.44 0.249 0.083
料重比F/G 1.94 1.95 1.98 1.93 1.97 0.023 0.366
死亡率Mortality/% 0.00 1.67 1.11 0.56 0.56 0.577 0.334

同行数据肩标无字母或相同字母表示差异不显著(P>0.05),不同字母表示差异显著(P<0.05)。下表同。

In the same row, values with no letter or the same letter mean no significant difference (P>0.05), while with no identical letter mean significant difference (P<0.05). The same as below.

2.2 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对30日龄黄羽肉鸡血浆和空肠中抗氧化指标的影响

由表3可知,各组间血浆中GPx与T-SOD活性及T-AOC和MDA含量均无显著差异(P>0.05);与CON组相比,AE、AP、EP和AEP组空肠中T-AOC均显著提高(P<0.05);EP、AP和AEP组空肠中GPx和T-SOD活性显著高于CON组(P<0.05),且AE组空肠中GPx活性显著低于其他试验组(P<0.05)。
表3 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对30日龄黄羽肉鸡血浆和空肠中抗氧化指标的影响

Table 3 Effects of combined supplementation of acidifiers, enzymes and probiotics on antioxidant indices in plasma and jejunum of yellow-feathered broilers aged 30 days

项目
Items		 组别Groups SEM P值
P-value
CON AE AP EP AEP
血浆Plasma
谷胱甘肽过氧化物酶GPx/(U/mL) 5 154.4 5 270.0 4 683.0 4 970.6 5 254.5 189.16 0.185
总超氧化物歧化酶T-SOD/(U/mL) 22.34 21.25 21.41 22.15 21.60 0.476 0.316
总抗氧化力T-AOC/(U/mL) 9.18 10.30 8.85 10.69 11.13 0.836 0.272
丙二醛MDA/(nmol/mL) 2.48 3.18 3.12 3.86 3.31 0.356 0.259
空肠Jejunum
谷胱甘肽过氧化物酶GPx/(U/mg prot) 51.57b 47.58b 63.65a 68.33a 64.24a 3.652 <0.001
总超氧化物歧化酶T-SOD/(U/mg prot) 56.51b 63.70ab 73.86a 69.38a 74.91a 4.189 0.039
总抗氧化力T-AOC/(U/mg prot) 0.21b 0.30a 0.33a 0.34a 0.33a 0.025 0.005
丙二醛MDA/(nmol/mg prot) 2.12 1.83 1.78 1.74 1.85 0.119 0.189

2.3 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对30日龄黄羽肉鸡血浆和空肠中免疫指标的影响

由表4可知,EP组血浆中IgG含量较CON组和其他试验组显著提高(P<0.05);与CON组相比,AE、AP和EP组空肠中IgG含量显著提高(P<0.05);EP组空肠中IL-10含量显著高于CON和AP组(P<0.05);各组间血浆中IgA和IgM含量以及空肠中IL-1β、TNF-α、sIgA含量和NDV-Ab均无显著差异(P>0.05)。
表4 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对30日龄黄羽肉鸡血浆和空肠中免疫指标的影响

Table 4 Effects of combined supplementation of acidifiers, enzymes and probiotics on immune indices in plasma and jejunum of yellow-feathered broilers aged 30 days

项目
Items		 组别Groups SEM P值
P-value
CON AE AP EP AEP
血浆Plasma
免疫球蛋白A IgA/(ng/mL) 8 253.06 8 248.33 8 516.11 9 659.17 8 246.11 246.221 0.300
免疫球蛋白G IgG/(μg/mL) 47.55b 45.00b 45.99b 59.79a 48.47b 1.501 0.003
免疫球蛋白M IgM/(ng/mL) 3 133.47 3 241.94 3 292.92 3 988.61 3 375.69 132.715 0.276
空肠Jejunum
白细胞介素-1β IL-1β/(pg/mg prot) 57.85 59.72 58.55 56.60 57.27 4.376 0.892
白细胞介素-10 IL-10/(pg/mg prot) 30.23b 35.57ab 32.73b 40.77a 37.07ab 2.896 0.026
肿瘤坏死因子-α TNF-α/(pg/mg prot) 49.04 48.67 47.91 48.24 47.14 4.375 0.858
分泌型免疫球蛋白A sIgA/(μg/mg prot) 428.51 480.67 474.17 486.21 498.49 32.828 0.485
免疫球蛋白G IgG/(μg/mg prot) 7.59b 10.13a 10.27a 9.64a 8.54ab 0.636 0.009
新城疫抗体滴度NDV-Ab/(pg/mg prot) 266.53 300.93 305.23 329.46 300.38 18.220 0.089

2.4 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对30日龄黄羽肉鸡盲肠菌群结构的影响

2.4.1 盲肠菌群的α-多样性分析

由表5可知,各样品Good’s覆盖度均大于0.99,表明测序数据量充足,可满足后续多样性分析要求。各试验组的各α-多样性指数均与CON组无显著差异(P>0.05),这说明酸化剂、酶制剂和益生菌的联用未对盲肠菌群多样性产生显著影响。
表5 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对30日龄黄羽肉鸡盲肠菌群α-多样性的影响

Table 5 Effects of combined supplementation of acidifiers, enzymes and probiotics on α-diversity of cecal microbiota of yellow-feathered broilers aged 30 days

项目
Items		 组别Groups SEM P值
P-value
CON AE AP EP AEP
Good’s覆盖度Good’s coverage 0.997 0.995 0.996 0.995 0.995 0.001 3 0.574
Sobs指数Sobs index 160.0 186.1 192.2 283.8 190.0 39.98 0.091
Ace指数Ace index 217.5 273.0 256.7 308.9 273.5 45.70 0.186
Chao1指数Chao1 index 209.9 253.9 253.1 308.5 258.8 47.76 0.180
Shannon指数Shannon index 2.14 2.15 2.39 2.70 2.36 0.368 0.573
Simpson指数Simpson index 0.31 0.33 0.28 0.19 0.25 0.071 0.347

2.4.2 盲肠菌群的β-多样性分析

肠道菌群β-多样性分析结果见图1。基于Bray-Curtis距离的PCoA结果显示,在OTUs水平上,各组分散于不同象限,组间菌群结构存在差异显著(R=0.098 5,P=0.007)。
图1 基于Bray-Curtis距离的盲肠菌群主坐标分析

Fig.1 PCoA of cecal microbiota based on Bray-Curtis distance

2.4.3 盲肠菌群门水平和属水平的物种组成分析

如图2-A所示,在门水平上,各组的优势菌门均为拟杆菌门(Bacteroidota)、厚壁菌门(Bacillota,曾用名Firmicutes)和弯曲杆菌门(Campylobacterota);与CON组相比,各试验组中Bacteroidota的相对丰度升高,Bacillota的相对丰度降低;此外,EP组Campylobacterota的相对丰度也降低。如图2-B所示,在属水平上,与CON组相比,AE、AP、EP和AEP组居海事城球杆菌属(Phocaeicola)、巴恩斯氏菌属(Barnesiella)的相对丰度升高,粪肠球菌属(Enterococcus)的相对丰度降低;此外,AE、AP和EP组粪杆菌属(Faecalibacterium)的相对丰度也升高。
图2 盲肠菌群在门水平(A)和属水平(B)上的物种组成与相对丰度

Bacteroidota:拟杆菌门;Bacillota:厚壁菌门;Campylobacterota:弯曲杆菌门;Pseudomonadota:假单胞菌门;Thermodesulfobacteriota:热脱硫杆菌门;Lentisphaerota:黏胶球形菌门;Actinomycetota:放线菌门;Campylobacter:弯曲杆菌属;Escherichia:埃希氏菌属;Enterococcus:肠球菌属;Bacteroides:拟杆菌属;Phocaeicola:居海事城球杆菌属;Barnesiella:巴恩斯氏菌属;Alistipes:另枝菌属;Pseudoflavonifractor:假黄铜单胞菌属;Gemmiger:芽殖菌属;Faecalibacterium:粪杆菌属;Clostridium:梭菌属;Helicobacter:螺杆菌属;Anaerotignum:厌氧菌属;Butyricicoccus:丁酸球菌属;Blautia:布劳特氏菌属;Streptococcus:链球菌属;Phascolarctobacterium:考拉杆菌属;Others:其他。

Fig.2 Species composition and relative abundance of cecal microbiota at phylum level (A) and genus level (B)

2.4.4 差异物种分析

Kruskal-Wallis秩和检验分析结果(图3)显示,酸化剂、酶制剂和益生菌单独或联合添加显著影响了Bacteroidota、Campylobacterota、弯曲杆菌属(Campylobacter)和Barnesiella等的相对丰度(P<0.05)。LEfSe分析结果(图4)显示,以线性判别分析(LDA)得分>2.0为筛选标准,各组筛选出的差异物种如下:CON组中,关键差异物种为疣微菌门(Verrucomicrobiota)、链球菌属(Streptococcus)、黄单胞菌属(Xanthomonas)及表皮葡萄球菌(Staphylococcus epidermidis);AE组中,关键差异物种为梭杆菌门(Fusobacteriota)和梭杆菌属(Fusobacterium);AP组中,关键差异物种为魏斯氏菌属(Weissella);EP组中,关键差异物种为Barnesiella、卟啉单胞菌属(Porphyromonas)及巴恩斯氏菌科(Barnesiellaceae);AEP组中,关键差异物种为摩根菌科(Morganellaceae)和生丝微菌科(Hyphomicrobiaceae)。
图3 盲肠菌群差异物种Kruskal-Wallis秩和检验

Fig.3 Kruskal-Wallis rank-sum test of different species in cecal microbiota

*:P<0.05;**:P<0.01;***:P<0.001。

图4 盲肠菌群差异物种LEfSe分析(LDA得分>2.0)

A:LEfSe分析进化分枝图 LEfSe analysis evolution cladogram;B:LDA得分分布柱状图LDA score distribution histogram。

图中各微生物名称前的字母代表其对应的分类学层级:p、c、o、f、g、s分别表示门、纲、目、科、属和种。限于篇幅,仅对各组中的关键差异物种的拉丁文进行中文注释。The letters preceding each microbial name in the figure represent their corresponding taxonomic levels: p, c, o, f, g and s denote phylum, class, order, family, genus and species, respectively. Due to space limitations, only the Latin names of key differential species in each group are annotated in Chinese.

Verrucomicrobiota:疣微菌门;Streptococcus:链球菌属;Xanthomonas:黄单胞菌属;Staphylococcus_epidermidis:表皮葡萄球菌;Fusobacteriota:梭杆菌门;Fusobacterium:梭杆菌属;Weissella:魏斯氏菌属;Barnesiella:巴恩斯氏菌属;Barnesiellaceae:巴恩斯氏菌科;Morganellaceae:摩根菌科;Hyphomicrobiaceae:生丝微菌科。

Fig.4 LEfSe analysis of different species in cecal microbiota (LDA score>2.0)

3 讨论

3.1 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对黄羽肉鸡生长性能的影响

酸化剂通过降低肠道pH来创造不利于有害菌生长的环境,重塑菌群结构,最终达到维护肠道健康、提高养分消化率的目的[9]。酶制剂则能补充肉鸡自身消化酶的不足,从而增强消化力,其中木聚糖酶、纤维素酶等有助于降解非淀粉多糖,蛋白酶则能促进饲粮中变性蛋白的分解[10]。益生菌通常由多种耐酸性有益菌组成,如乳酸菌和屎肠球菌等,在肠道内定植后可产生如有机酸等多种有益代谢物,改善肠道微生态环境,促进营养吸收,促进肉鸡生长发育[11]。
生长性能是评估动物生产能力的重要指标。在本试验中,酶制剂与益生菌联用使黄羽肉鸡终末体重和平均日增重表现出升高趋势,其可能原因在于:一方面,酶制剂中的木聚糖酶、纤维素酶等可有效降解非淀粉多糖等抗营养因子,促进饲料中营养素的释放;另一方面,益生菌通过竞争性排斥作用抑制肠道病原菌定植,改善肠道微生态平衡。二者协同作用,在一定程度上提高了饲料利用率,进而促进了肉鸡生长。刘沛尧等[12]的研究发现,在饲粮中添加枯草芽孢杆菌与非淀粉多糖酶制剂,提高了肉鸡的平均日增重;同样的,Yi等[3]的研究显示,在饲粮中添加由木聚糖酶、葡聚糖酶、淀粉酶、蛋白酶等多种消化酶组成的复合酶制剂后,显著改善了白羽肉鸡的饲料转化率和表观代谢能。尽管上述研究证实了菌制剂和酶制剂单用或联用对肉鸡生长性能改善作用,但酸化剂、酶制剂和益生菌联用对肉鸡生长性能影响的相关报道尚较缺乏。在本试验中,EP组的终末体重和平均日增重相比其他组有所增加,这可能与酶制剂降解非淀粉多糖后为枯草芽孢杆菌等益生菌提供了可利用的碳源有关。此外,本试验中含酸化剂的组合(AE、AP、AEP组)未显著改善黄羽肉鸡的生长性能,结合和Zhang等[13]和Cai等[14]的推测,可能与试验饲粮本身酸结合力较低或酸化剂添加剂量不足有关。本试验结果显示,各组间黄羽肉鸡的平均日采食量和料重比无显著差异,这与李万军[15]的结果不尽一致;李万军[15]在大骨鸡中的研究则显示,益生菌、酸化剂和酶制剂联用可显著提高增重并改善料重比和死亡率,肉鸡品种、饲粮组成及添加剂种类等因素可能是造成结果差异的原因。

3.2 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对黄羽肉鸡抗氧化功能的影响

自由基蓄积会对机体造成氧化损伤,动物依赖多种抗氧化体系清除自由基,以减轻其对机体的危害。MDA、T-AOC、GPx和T-SOD是衡量动物抗氧化能力的重要指标,其中,MDA是细胞膜脂质过氧化的终产物,其含量常用以评估细胞损伤程度;T-AOC反映机体总体的抗氧化水平;而GPx和T-SOD是重要的抗氧化酶,能够清除体内自由基,保护细胞免受氧化损伤[16]。已有研究表明,单一添加酸化剂、酶制剂和益生菌均可提高动物的抗氧化能力。例如,Abdeldayem等[17]研究显示,丁酸可显著提高鹌鹑的抗氧化能力;Tian等[18]报道,毕赤酵母重组人溶菌酶(rhLYZ)可显著降低肉鸡血清中γ-干扰素(IFN-γ)和TNF-α含量;Qin等[19]研究发现,地衣芽孢杆菌可显著改善肉鸡血清中免疫球蛋白及抗炎因子水平。然而,关于三者联用对肉鸡抗氧化能力影响的研究尚未见报道。
本试验创新性地探究了酸化剂、酶制剂和益生菌三者联用对黄羽肉鸡抗氧化能力的影响,结果显示,酶制剂、酸化剂和益生菌的两两组合以及三者联用均显著提高了黄羽肉鸡空肠中T-AOC;酶制剂+益生菌、酸化剂+益生菌以及三者联用均显著提高了空肠中GPx和T-SOD活性,其中酶制剂与益生菌联用组的GPx活性高于其他联用组,提示酶菌联用对肠道抗氧化酶的激活可能具有更强的协同效应。上述结果说明,在酸化剂、酶制剂和益生菌的共同作用下,黄羽肉鸡肠道抗氧化能力得到提升,这与刘沛尧等[12]的研究结果相似。刘佑明等[20]研究发现,酸化剂可提高白羽肉鸡的抗氧化能力;李紫薇等[21]对复合酸化剂的研究也得出类似结论。然而,本试验中酸化剂与酶制剂联用组仅提高了空肠中T-AOC,未显著提升抗氧化酶活性,这可能与酸化剂主要通过降低肠道pH、间接减少氧化损伤的作用机制有关,提示酸化剂在主要发挥调控肠道微环境的功能,而与酶制剂和益生菌在直接激活抗氧化酶方面的协同效应相对较弱。此外,黄羽肉鸡血浆中抗氧化指标无显著变化,提示酸化剂、酶制剂和益生菌的作用可能更集中于肠道局部,而非全身性抗氧化系统。

3.3 酸化剂、酶制剂和益生菌联用对黄羽肉鸡免疫功能的影响

白细胞介素是一类重要的免疫细胞因子,能够激活和调节免疫细胞,介导T淋巴细胞活化及B淋巴细胞增殖与分化。益生菌的摄入可持续提供抗原刺激,促进B淋巴细胞增殖活化,诱导其产生特异性抗体,从而维持较高水平的体液免疫应答[22-23]。免疫球蛋白(IgG、IgA、IgM等)是肉鸡体内重要的体液免疫效应分子,具有抑制和杀灭病原体的作用。疫苗免疫可诱导机体产生特异性抗体,是肉鸡获得针对性免疫保护的关键;检测疫苗特异性抗体水平可间接评估疫苗的免疫效力[24]。本研究发现,AE、AP及EP组空肠中IgG含量均显著提高;同时,EP组空肠中IL-10含量显著高于CON和AP组,这与姜南[25]在爱拔益加肉鸡上的研究结果一致。上述结果表明,酸化剂、酶制剂和益生菌的两两联用可显著提高黄羽肉鸡空肠中IgG含量,提示三者之间存在协同增强免疫力的作用,这可能与两两联合促进了B淋巴细胞的转化率,进而增强了IgG的分泌有关[26]。值得注意的是,EP组的空肠中IgG含量低于AE和AP组,提示酸化剂的加入可能对增强体液免疫应答具有更强的促进作用。此外,在本试验中,EP组黄羽肉鸡的NDV-Ab呈升高趋势,表明酶制剂与益生菌联用对提升特异性抗体水平具有一定作用。与AE和AP组相比,EP组的NDV-Ab更高,提示酶菌联用在特异性免疫(疫苗免疫)方面可能更具优势,而酸化剂则可能更侧重于增强非特异性免疫[27]。

3.4 酶制剂、酸化剂及益生菌联用对黄羽肉鸡盲肠菌群结构的特异性调控及最优组合分析

肠道微生物对动物生长及健康具有重要调控作用。肉鸡盲肠微生物的α-多样性反映样本中物种的丰度和多样性,β-多样性则用于比较不同样本间微生物群落组成的差异。本试验对黄羽肉鸡盲肠菌群的α-多样性及β-多样性分析结果表明,酸化剂、酶制剂和益生菌在一定程度上改善了盲肠菌群多样性,对盲肠菌群的调控具有一定的特异性,使菌群结构发生改变,但各组间仍保留一定的相似性。不同组间各α-多样性指数无显著差异,这与张李荣[28]的研究结果不一致,可能归因于试验动物品种、饲养管理条件以及添加剂种类与添加量等因素的差异。
肠道菌群平衡是保障肉鸡健康生产的关键,其机制在于促进营养物质的有效吸收并维护肠道免疫功能[29]。这一平衡状态主要体现在优势菌群上,如Bacillota与Bacteroidota可通过产生多种有益代谢物,促进能量吸收与蛋白质合成,共同维持肠道菌群平衡[30-31]。刘宗正等[32]研究发现,酶制剂与益生菌混合饲喂断奶仔猪后,肠道中Bacteroidota相对丰度增加,肠道菌群多样性提高,肠道屏障防御功能增强。Bacillota与Bacteroidota的比值常被用作病理生理标志物,影响碳水化合物代谢和短链脂肪酸的生成[33-34]。酸化剂是直接调节肠道内pH的重要添加剂。Gao等[5]报道,0.1 g/kg磷酸可显著提高肉鸡十二指肠的绒毛高度/隐窝深度比值,并降低大肠杆菌和沙门氏菌的相对丰度。上述研究证实了酸化剂、酶制剂与益生菌单用或两两联用对肠道菌群结构和肠道形态的改善作用。本试验发现,酶制剂、酸化剂和益生菌的两两组合及三者联用均能增加黄羽肉鸡盲肠菌群中Bacteroidota和Faecalibacterium的相对丰度,同时降低Bacillota与Bacteroidota的比值,这一定程度上改善了肠道菌群结构,有利于有益菌的生长与定植。魏海波等[35]研究也发现,饲喂酸制剂和益生菌后,猪肠道内Bacillota与Bacteroidota的比值降低,普雷沃菌属(Prevotella)相对丰度提高,提示其有益于减少病理性脂肪堆积。此外,Faecalibacterium是动物肠道中的常见有益菌属,可通过产生丁酸盐减轻炎症反应,促进肠道健康[36-37]。Hu等[38]在断奶仔猪中发现,粪肠球菌可有效增加有益菌(如拟杆菌门)的丰度,抑制有害菌生长,改善肠道菌群平衡。另有研究证实,饲粮中添加益生菌与益生元可增强肠道微生物群落功能,提高肉鸡生长性能,并有效减少沙门氏菌、弯曲杆菌等致病菌在肠道的附着与增殖[39-40]。
本试验对盲肠菌群结构分析结果显示,酶制剂与益生菌联用组Bacteroidota和Faecalibacterium的相对丰度均为各组最高,推测可能是因为酶制剂降解纤维类物质为Bacteroidota等多糖降解菌提供了更多可利用的底物。相比之下,酶制剂、酸化剂和益生菌三者联用组的盲肠菌群多样性未进一步提升,推测可能是酸化剂浓度较高导致肠道pH过低,抑制了部分兼性厌氧菌(如芽孢杆菌)的定植,后续需对酸化剂的添加水平进行优化。此外,仅EP组Campylobacterota的相对丰度降低,提示酶菌联用可能通过竞争性排斥或代谢产物抑制病原菌的增殖。

4 结论

本试验结果表明,在低玉米-低豆粕的杂粕型饲粮中联合添加酸化剂、酶制剂和益生菌(两两或三者联用),可协同改善黄羽肉鸡的抗氧化能力与免疫功能,并优化盲肠菌群结构。其中,酶制剂与益生菌联合添加的效果最佳。

参考文献

原文顺序 | 文献年度倒序 | 文中引用次数倒序
[1]
邱月, 田晓玲, 李易红, 等. 新型能量饲料替代玉米技术研究现状[J]. 中国饲料, 2024(11):187-192.

QIU Y, TIAN X L, LI Y H, et al. Research status of new energy feed substitution technology for corn[J]. China Feed, 2024(11):187-192. (in Chinese)

[2]
张博, 杨晓伟, 康志勇, 等. 饲用豆粕减量替代背景下杂粕型饲料蛋白资源开发应用研究进展[J]. 中国饲料, 2025(9):146-160.

ZHANG B, YANG X W, KANG Z Y, et al. Research progress on development and application of miscellaneous meal feed protein resources under the background of soybean meal reduction substitution[J]. China Feed, 2025(9):146-160. (in Chinese)

[3]
YI W Z, HUANG Q X, LIU Y J, et al. Effects of dietary multienzymes on the growth performance,digestive enzyme activity,nutrient digestibility,excreta noxious gas emission,and nutrient transporter gene expression in white feather broilers[J]. Journal of Animal Science, 2024,102:skae133.

[4]
HOU J W, LU L Z, LIAN L N, et al. Effects of coated sodium butyrate on the growth performance,serum biochemistry,antioxidant capacity,intestinal morphology,and intestinal microbiota of broiler chickens[J]. Frontiers in Microbiology, 2024, 15:1368736.

DOI

[5]
GAO C Q, SHI H Q, XIE W Y, et al. Dietary supplementation with acidifiers improves the growth performance,meat quality and intestinal health of broiler chickens[J]. Animal Nutrition, 2021, 7(3):762-769.

DOI

[6]
YIN Y Y, LIAO Y Y, LI J, et al. Lactobacillus plantarum GX17 benefits growth performance and improves functions of intestinal barrier/intestinal flora among yellow-feathered broilers[J]. Frontiers in Immunology, 2023, 14:1195382.

DOI

[7]
ABD EL-HACK M E, EL-SAADONY M T, SHAFI M E, et al. Probiotics in poultry feed:a comprehensive review[J]. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 2020, 104(6):1835-1850.

DOI

[8]
LIU Y, ZHANG S, LUO Z, et al. Supplemental Bacillus subtilis PB6 improves growth performance and gut health in broilers challenged with Clostridium perfringens[J]. Journal of Immunology Research, 2021, 2021:2549541.

[9]
JEFFREY A M, ALDRICH G C, HUSS A R, et al. Effects of a dry acidulant addition to prevent Salmonella contamination in poultry feed[J]. Translational Animal Science, 2022, 6(1):txab232.

[10]
COZANNET P, DAVIN R, JLALI M, et al. Dietary metabolizable energy,digestible lysine,available phosphorus levels and exogenous enzymes affect broiler chicken performance[J]. Animal, 2021, 15(5):100206.

DOI

[11]
CHANDRASEKARAN P, WEISKIRCHEN S, WEISKIRCHEN R. Effects of probiotics on gut microbiota:an overview[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2024, 25(11):6022.

DOI

[12]
刘沛尧, 张绍波, 李京都, 等. 酶制剂+益生菌与植物提取物协同对肉鸡生产性能、免疫能力及抗氧化能力的影响[J]. 中国粮油学报, 2022, 37(12):198-202.

LIU P Y, ZHANG S B, LI J D, et al. The synergistic effect of enzyme preparation+probiotics and allicin on broilers[J]. Journal of the Chinese Cereals and Oils Association, 2022, 37(12):198-202. (in Chinese)

[13]
ZHANG B C, DU L Y, YU T, et al. Impact of drinking water supplemented with complex acidifiers on production performance,egg quality,physiological and biochemical indicators,and microbial flora of Bian chickens[J]. Life, 2025, 15(11):1700.

DOI

[14]
CAI F, HUANG M P, LIU W, et al. Dietary addition of compound organic acids improves the growth performance,carcass trait,and body health of broilers[J]. Frontiers in Nutrition, 2025, 12:1536606.

DOI

[15]
李万军. 益生菌与酸化剂、酶制剂对大骨鸡生产性能及免疫功能的影响[D]. 博士学位论文. 哈尔滨: 东北农业大学, 2022.

LI W J. Effects of probiotics,acidifiers and enzymes on productive performance and immune function of big bone chickens[D]. Ph.D.Thesis. Harbin:Northeast Agricultural University, 2022. (in Chinese)

[16]
OKE O E, AKOSILE O A, ONI A I, et al. Oxidative stress in poultry production[J]. Poultry Science, 2024, 103(9):104003.

DOI

[17]
ABDELDAYEM F A, LESTINGI A, ABOL-ELA S S, et al. Application of butyric acid as a feed additive for improving quail performance and health[J]. Poultry Science, 2024, 103(10):104109.

DOI

[18]
TIAN X F, CAO H, YAN J T, et al. Effect of dietary supplementation with recombinant human lysozyme on growth performance,antioxidative characteristics,and intestinal health in broiler chickens[J]. Journal of Animal Science, 2024,102:skae121.

[19]
QIN S K, XIAO X, DAI Z L, et al. Effects of Bacillus licheniformis on growth performance,immune and antioxidant functions,and intestinal microbiota of broilers[J]. Poultry Science, 2024, 103(1):103210.

DOI

[20]
刘佑明, 植石全, 蓝文康, 等. 复合酸化剂对白羽肉鸡生长性能及血液生化指标的影响[J]. 中国家禽, 2019, 41(2):24-27.

LIU Y M, ZHI S Q, LAN W K, et al. Effects of compound acidifier on growth performance and serum biochemical indexes of white-feather broiler[J]. China Poultry, 2019, 41(2):24-27. (in Chinese)

[21]
李紫薇, 宋斌, 张雅文, 等. 黑水虻幼虫干、复合酸化剂对胡须鸡生长性能、免疫功能、抗氧化指标及鸡肉营养成分的影响[J]. 中国家禽, 2026, 48(1):36-44.

LI Z W, SONG B, ZHANG Y W, et al. Effects of dried black soldier fly larvae and compound acidifiers on growth performance,immune function,antioxidant indexes and nutrient components in Huxu chicken[J]. China Poultry, 2026, 48(1):36-44. (in Chinese)

[22]
单令旺. 复合益生菌对沙门菌感染珍珠鸡生长性能、免疫功能及肠道菌群的影响[J]. 中国饲料, 2025(22):21-24.

SHAN L W. The effects of compound probiotics on growth performance,immune function,and intestinal microbiota of Salmonella-infected pearl chickens[J]. China Feed, 2025(22):21-24. (in Chinese)

[23]
刘丽娟, 蒋山翊, 王开功. 中药和益生菌在鸡球虫病防治中的研究进展[J]. 贵州畜牧兽医, 2025, 49(3):32-36.

LIU L J, JIANG S Y, WANG K G. Prevention of traditional Chinese medicine with probiotics on Eimeria tenella[J]. Guizhou Journal of Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2025, 49(3):32-36. (in Chinese)

[24]
仇薪鑫, 贾燕青, 党小俊, 等. 新城疫的流行、检测及综合预防和控制技术研究进展[J]. 江苏农业学报, 2025, 41(5):1031-1040.

QIU X X, JIA Y Q, DANG X J, et al. Research progress on the prevalence,detection and comprehensive prevention and control technologies of Newcastle disease[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences, 2025, 41(5):1031-1040. (in Chinese)

[25]
姜南. 四种绿色饲料添加剂和金霉素对肉仔鸡免疫功能及其生产性能的影响[D]. 博士学位论文. 哈尔滨: 东北农业大学, 2015.

JIANG N. Influence of four kinds of green feed additive and auromycin on immune function and production performance of broilers[D]. Ph.D.Thesis. Harbin:Northeast Agricultural University, 2015. (in Chinese)

[26]
范秋丽, 蒋守群, 苟钟勇, 等. 益生菌、低聚壳聚糖、酸化剂及复合酶对1-66 日龄黄羽肉鸡生长性能、免疫功能、胴体性能和肉品质的影响[J]. 中国畜牧兽医, 2020, 47(5):1360-1372.

DOI

FAN Q L, JIANG S Q, GOU Z Y, et al. Effects of probiotics,oligomeric chitosan,acidulant and complex enzymes on growth performance,immune function,carcass traits and meat quality of yellow-feathered chicken aged from 1 to 66 days old[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2020, 47(5):1360-1372. (in Chinese)

[27]
于瀚学, 齐娟. 复合酸化剂对仔猪生长性能、肠道菌群和血液生化与免疫指标的影响[J]. 中国饲料, 2024(12):29-32.

YU H X, QI J. Effects of compound acidifier on growth performance,intestinal flora and blood biochemical and immune indexes of piglets[J]. China Feed, 2024(12):29-32. (in Chinese)

[28]
张李荣. 三种益生菌对雏鸡生长、小肠发育及盲肠微生物区系的影响[D]. 硕士学位论文. 扬州: 扬州大学, 2018.

ZHANG L R. Effects of three probiotics on the growth,small intestinal development and cecum microorganism of chicks[D]. Master’s Thesis. Yangzhou: Yangzhou University, 2018. (in Chinese)

[29]
YANG J J, WANG X, CHEN Y, et al. ChangQing compound relieves Eimeria tenella infection symptoms by modulating intestinal probiotic and pathogenic bacteria balance[J]. Veterinary Journal, 2025, 311:106343.

DOI

[30]
ADAMS J R G, ANJUM F R, MEHAT J W, et al. Butyrate enhances antimicrobial defence in chicken macrophages through reactive oxygen species generation and autophagy activation[J]. Cells, 2025, 14(21):1742.

DOI

[31]
LI H, WANG X K, TANG M, et al. Bacteroides thetaiotaomicron ameliorates mouse hepatic steatosis through regulating gut microbial composition,gut-liver folate and unsaturated fatty acids metabolism[J]. Gut Microbes, 2024, 16(1):2304159.

DOI

[32]
刘宗正, 邹明, 檀学进, 等. 菌酶协同对里岔黑猪断奶仔猪生长性能、血清免疫指标和肠道菌群的影响[J]. 畜牧与饲料科学, 2022, 43(6):30-35.

LIU Z Z, ZOU M, TAN X J, et al. Synergistic effects of feeding bacteria and enzymes on growth performance,serum immune indexes and intestinal microflora of weaned piglets of Licha black pig[J]. Animal Husbandry and Feed Science, 2022, 43(6):30-35. (in Chinese)

[33]
GUO M Y, LIU H J, YU Y T, et al. Lactobacillus rhamnosus GG ameliorates osteoporosis in ovariectomized rats by regulating the Th17/Treg balance and gut microbiota structure[J]. Gut Microbes, 2023, 15(1):2190304.

DOI

[34]
BAEK G H, YOO K M, KIM S Y, et al. Collagen peptide exerts an anti-obesity effect by influencing the Firmicutes/Bacteroidetes ratio in the gut[J]. Nutrients, 2023, 15(11):2610.

DOI

[35]
魏海波, 刘迎春, 孙曙光, 等. 饲粮中添加益生菌和酸制剂对断奶仔猪生长性能和肠道菌群的影响[J]. 中国畜牧兽医, 2024, 51(12):5302-5316.

DOI

WEI H B, LIU Y C, SUN S G, et al. Effects of dietary probiotics and acid preparations on growth performance and intestinal flora of weaned piglets[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2024, 51(12):5302-5316. (in Chinese)

[36]
LI H B, XU M L, XU X D, et al. Faecalibacterium prausnitzii attenuates CKD via butyrate-renal GPR43 axis[J]. Circulation Research, 2022, 131(9):e120-e134.

[37]
SHI Z Z, LI M, ZHANG C, et al. Butyrate-producing Faecalibacterium prausnitzii suppresses natural killer/T-cell lymphoma by dampening the JAK-STAT pathway[J]. Gut, 2025, 74(4):557-570.

DOI

[38]
HU C J, XING W G, LIU X H, et al. Effects of dietary supplementation of probiotic Enterococcus faecium on growth performance and gut microbiota in weaned piglets[J]. AMB Express, 2019, 9(1):33.

DOI

[39]
KHAN S, MOORE R J, STANLEY D, et al. The gut microbiota of laying hens and its manipulation with prebiotics and probiotics to enhance gut health and food safety[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2020, 86(13):e00600-20.

[40]
SAYED Y, HASSAN M, SALEM H M, et al. Probiotics/prebiotics effect on chicken gut microbiota and immunity in relation to heat-stress and climate-change mitigation[J]. Journal of Thermal Biology, 2025, 129:104097.

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