研究论文

MCC950通过抑制核苷酸结合寡聚化结构域样受体3炎症小体改善高蛋白质饮食雏鹅生长性能、尿酸代谢和肾脏损伤

  • 朱道仙 , 1 ,
  • 刘莉 , 1, * ,
  • 王璟琨 1 ,
  • 郝福星 1 ,
  • 吴植 2 ,
  • 卢劲晔 3
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  • 1 江苏农牧科技职业学院动物医学院,泰州 225300
  • 2 江苏省兽用生物制药高技术研究重点实验室,泰州 225300
  • 3 江苏农牧科技职业学院宠物科技学院,泰州 225300
* 刘 莉,副教授,E-mail:

朱道仙(1978—),女,安徽寿县人,讲师,硕士,主要从事动物临床营养及代谢病研究。E-mail:

收稿日期: 2022-07-07

  网络出版日期: 2023-01-11

基金资助

江苏省高校教师青蓝工程学科带头人项目(苏教师函[2021]11号)

江苏农牧科技职业学院校级课题(NSF2021ZR17)

江苏省大学生创新创业项目(202112806008Y)

MCC950 Improves Growth Performance, Uric Acid Metabolism and Kidney Injury of Goslings Fed High Protein Diet by Inhibiting Nucleotide Binding Oligomerization Domain-Like Receptor 3 Inflammasome

  • ZHU Daoxian , 1 ,
  • LIU Li , 1, * ,
  • WANG Jingkun 1 ,
  • HAO Fuxing 1 ,
  • WU Zhi 2 ,
  • LU Jinye 3
Expand
  • 1 Department of Animal Medicine, Jiangsu Agri-Animal Husbandry Vocational College, Taizhou 225300, China
  • 2 Jiangsu Provincial Key Laboratory of Veterinary Bio-Pharmaceutical High Tech Research, Taizhou 225300,China
  • 3 Department of Pet Science and Technology, Jiangsu Agri-Animal Husbandry Vocational College, Taizhou 225300, China
* associate professor, E-mail:

Received date: 2022-07-07

  Online published: 2023-01-11

摘要

本试验通过评估MCC950对高蛋白质饮食雏鹅生长性能、尿酸代谢、血清炎症因子含量和肾脏损伤的影响,探讨核苷酸结合寡聚化结构域样受体3(NLRP3)/半胱氨酸天冬氨酸酶-1(Caspase-1)信号通路在雏鹅痛风中的可能作用机制。试验选取1日龄扬州雏鹅120只,随机分为3个组,分别为对照组、高蛋白质组(HP组)和高蛋白质+MCC950组(HP+MCC950组),每组5个重复,每个重复8只。对照组饲喂粗蛋白质为16.5%的正常蛋白质饲粮,HP组和HP+MCC950组均饲喂粗蛋白质为24.0%的高蛋白质饲粮,且HP+MCC950组每3 d按10 mg/kg BW剂量腹腔注射1次MCC950,其他2组注射等量生理盐水。试验期15 d。结果表明:1)与对照组相比,HP组雏鹅15日龄时的平均体重显著降低(P<0.05);HP组血清尿酸(UA)、肌酐(Cr)、尿素氮(UN)、C-反应蛋白(CRP)、白细胞介素-1β(IL-1β)、白细胞介素-18(IL-18)、白细胞介素-6(IL-6)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)和转化生长因子-β1(TGF-β1)含量均显著提高(P<0.05);HP组肾脏组织中NLRP3、Caspase-1、IL-1βIL-18的mRNA相对表达量显著提高(P<0.05),肾脏组织中NLRP3、Caspase-1及IL-1β蛋白相对表达量显著提高(P<0.05)。2)与HP组比较,HP+MCC950组雏鹅10和15日龄平均体重均显著提高(P<0.05);HP+MCC950组血清UA、Cr、UN、CRP、IL-1β、IL-18、IL-6、TNF-α和TGF-β1含量均显著降低(P<0.05);HP+MCC950组肾脏组织中NLRP3、Caspase-1、IL-1βIL-18的mRNA相对表达量显著降低(P<0.05),肾脏组织中NLRP3、Caspase-1及IL-1β蛋白相对表达量显著降低(P<0.05)。3)HP组雏鹅肾小管扩张,发生空泡变性、坏死,而HP+MCC950组肾小管结构较为清晰;HP组雏鹅肾脏组织中尿酸盐沉积面积显著大于对照组(P<0.05),HP+MCC950组肾脏组织中尿酸盐沉积面积显著小于HP组(P<0.05);雏鹅肾脏组织尿酸盐沉积面积与NLRP3蛋白相对表达量呈显著正相关(r=0.681,P<0.05)。综上所述,MCC950可促进高蛋白质饮食雏鹅生长,降低血清尿酸含量,可能与其抑制NLRP3/Caspase-1信号通路减轻炎症反应和肾脏损伤有关。

本文引用格式

朱道仙 , 刘莉 , 王璟琨 , 郝福星 , 吴植 , 卢劲晔 . MCC950通过抑制核苷酸结合寡聚化结构域样受体3炎症小体改善高蛋白质饮食雏鹅生长性能、尿酸代谢和肾脏损伤[J]. 动物营养学报, 2023 , 35(1) : 277 -286 . DOI: 10.3969/j.issn.1006-267x.2023.01.029

Abstract

The aim of this study was to evaluate the effects of MCC950 on growth performance, uric acid metabolism, serum inflammatory factor contents and kidney injury of goslings a fed high protein diet, and explore the potential mechanism of nucleotide binding oligomerization domain-like receptor 3 (NLRP3)/cysteine aspartase-1 (Caspase-1) signaling pathway in gosling gout. A total of 120 Yangzhou goslings of 1-day-old were randomly divided into 3 groups, which were control group, high protein group (HP group) and high protein+MCC950 group (HP+MCC950 group), with 5 replicates in each group and 8 goslings in each replicate. The control group was fed a normal protein diet with 16.5% crude protein, and the HP group and HP+MCC950 group were fed a high protein diet with 24.0% crude protein. The HP+MCC950 group was intraperitoneally injected with MCC950 every 3 days at a dose of 10 mg/kg BW, and the other two groups were injected with the same amount of normal saline. The experiment lasted for 15 days. The results showed as follows: 1) compared with the control group, the average body weight of goslings at 15 days of age in the HP group was significantly decreased (P<0.05); the serum contents of uric acid (UA), creatinine (Cr), urea nitrogen (UN), C-reactive protein (CRP), interleukin-1β (IL-1β), interleukin 18 (IL-18), interleukin 6 (IL-6), tumor necrosis factor α (TNF-α) and transforming growth factor β1 (TGF-β1) in the HP group were significantly increased (P<0.05); the mRNA relative expression levels of NLRP3, Caspase-1, IL-1β and IL-18 and the protein relative expression levels of NLRP3, Caspase-1 and IL-1β in kidney tissues in the HP group were significantly increased (P<0.05). 2) Compared with the HP group, the average body weight of goslings at 10 and 15 days of age in the HP+MCC950 group was significantly increased (P<0.05); the serum contents of UA, Cr, UN, CRP, IL-1β, IL-18, IL-6, TNF-α and TGF-β1 were significantly decreased (P<0.05), while the mRNA relative expression levels of NLRP3, Caspase-1, IL-1β and IL-18 and the protein relative expression levels of NLRP3, Caspase-1 and IL-1β in kidney tissues in the HP+MCC950 group were significantly decreased (P<0.05). 3) Histological findings showed that the renal tubules of goslings were dilated, and vacuolar degeneration and necrosis occurred in the HP group, while the structure of renal tubules was relatively normal in the HP+MCC950 group. The urate deposition area in kidney tissues of goslings in the HP group was significantly larger than that in the control group (P<0.05), and which in the HP+MCC950 group was significantly smaller than that in the HP group (P<0.05). Moreover, the urate deposition area in kidney tissues of goslings was significantly positively correlated with the protein relative expression level of NLRP3 (r=0.681, P<0.05). In conclusion, MCC950 can promote the growth of goslings fed a high protein diet and reduce the serum uric acid content, which may be related to the reduction of inflammatory response and kidney injury through its inhibition of NLRP3/Caspase-1 signaling pathway.

痛风是哺乳动物和鸟类的一种常见代谢病,是一种主要由于高尿酸血症导致尿酸盐结晶在关节、软骨及其他组织中异位沉积引起的炎性疾病[1]。雏鹅对痛风具有易感性,发病率为10%~50%,死亡率高达50%,这严重危害养鹅业的发展[2-5]。大量研究表明,痛风雏鹅发生的肾脏损伤及其导致的肾功能受损甚至衰竭,是雏鹅死亡的主要原因之一[6-8]。深入研究肾脏损伤的分子机制,寻找潜在靶点,对雏鹅痛风的防治具有重要意义。
核苷酸结合寡聚化结构域样受体3(NLRP3)/半胱氨酸天冬氨酸酶-1(Caspase-1)信号通路是一种重要的炎症信号通路,可诱导下游产物白细胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)和白细胞介素-18(interleukin-18,IL-18)的产生与释放,促进肾脏炎症反应[9-11]。研究发现,炎症反应参与高蛋白质饲粮诱导雏鹅痛风的肾脏损伤[12]。然而,这种炎症反应是否与NLRP3/Caspase-1信号通路相关尚不清晰。因此,本研究在饲喂雏鹅高蛋白质饲粮基础上,给予NLRP3特异性抑制剂MCC950进行干预,观察雏鹅生长性能、尿酸代谢及肾脏损伤的变化,探讨NLRP3/Caspase-1信号通路在雏鹅痛风中的作用,为将来生产中以NLRP3为靶点的防控雏鹅痛风新产品的开发提供参考。

1 材料与方法

1.1 试验设计和饲养管理

选取1日龄扬州雏鹅120只,随机分为3个组,分别为对照组(CON组)、高蛋白质组(HP组)和高蛋白质+MCC950组(HP+MCC950组),每组5个重复,每个重复8只。对照组饲喂粗蛋白质为16.5%的正常蛋白质饲粮,HP组和HP+MCC950组均饲喂粗蛋白质为24.0%的高蛋白质饲粮,且HP+MCC950组参考廖勇等[13]的方法按10 mg/kg BW剂量腹腔注射MCC950(一种高效的NLRP3抑制剂,购于美国Abmole公司),每3 d注射1次,其他2组注射等量生理盐水。试验采取双层笼养,试验鹅自由采食与饮水,按正常免疫程序免疫,试验期为15 d。试验饲粮参考NRC(1994)[14]建议的鹅营养需要量标准配制,其组成及营养水平见表1
表1 试验饲粮组成及营养水平(风干基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis)%

项目
Items
正常蛋白质饲粮
Normal protein diet
高蛋白质饲粮
High protein diet
原料Ingredients
玉米Corn 52.0 52.0
豆粕Soybean meal 20.0 20.0
鱼粉Fish meal 12.0
麸皮Bran 8.0 8.0
米糠Rice bran 12.0
构树叶粉Paper mulberry leaf powder 3.0 3.0
碳酸钙CaCO3 2.5 2.5
氯化钠NaCl 0.5 0.5
预混料Premix1) 2.0 2.0
合计Total 100.0 100.0
营养水平Nutrient levels2)
代谢能ME/(MJ/kg) 11.2 11.1
粗蛋白质CP 16.5 24.0
钙Ca 1.2 1.2
总磷TP 0.8 0.8

1)预混料为每千克饲粮提供 The premix provided the following per kg of diets:VA 4 800 IU,VD 1 100 IU,VE 35 IU,VK 1.3 mg,VB1 2.0 mg,VB2 8 mg,泛酸 pantothenic acid 6.6 mg,烟酸 nicotinic acid 20 mg,吡哆醇 pyridoxine 3.3 mg,生物素 biotin 0.05 mg,叶酸 folic acid 0.5 mg,钴胺素 cobalamin 0.05 mg,Fe 60 mg,Mn 110 mg,Cu 7.5 mg,Zn 65 mg,I 1.7 mg,Se 0.15 mg。

2)计算值 Calculated values。

1.2 测定指标及方法

1.2.1 生长性能

分别于5、10和15日龄时,以重复为单位对试验雏鹅进行空腹称重,计算平均体重,同时记录采食量,计算平均日采食量。

1.2.2 血清生化指标

试验结束时,每个重复随机选取3只接近平均体重的雏鹅,颈静脉采血后分离血清并置于4 ℃冰箱中保存,次日检测。血清尿酸(uric acid,UA)含量采用酶比色法测定,血清肌酐(creatinine,Cr)含量采用改良苦味酸法测定,血清尿素氮(urea nitrogen,UN)含量采用脲酶-谷氨酸脱氢酶法测定。

1.2.3 血清炎症因子含量

参考1.2.3方法采血制备血清。按照酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒操作说明,检测血清C-反应蛋白(C-reactive protein,CRP)、IL-1β、IL-18、白细胞介素-6(interleukin-6,IL-6)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)和转化生长因子-β1(TGF-β1)含量,试剂盒均购于Abcam公司。

1.2.4 肾脏组织样本采集

试验结束时,每组每个重复选取1只雏鹅,颈静脉放血致死后,取新鲜肾脏组织若干块,一部分放入4%多聚甲醛溶液中固定用于苏木精-伊红(HE)染色,另一部分放入无水乙醇溶液中用于尿酸盐染色,余下部分装入冻存管置于液氮中用于实时荧光定量PCR(RT-qPCR)和Western blot检测。

1.2.5 RT-qPCR检测

采用TRIzol法提取总RNA,定量后使用UEIris RT mix with DNase(All-in-One)试剂盒在37 ℃ 15 min、85 ℃ 5 s条件下逆转录合成cDNA,然后用QuickKing one step RT-qPCR kit(probe)试剂盒按如下条件进行扩增:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,循环35次。以磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)为内参基因,目的基因mRNA相对表达量采用2-ΔΔCt法计算。目的基因NLRP3、Caspase-1、IL-1βIL-18的引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物序列见表2
表2 RT-qPCR引物序列

Table 2 Primer sequences for RT-qPCR

基因
Genes
登录号
Accession ID
引物序列
Primer sequences (5'—3')
片段长度
Fragment length/bp
核苷酸结合寡聚化结构域样受体3
NLRP3
XM_005029959 F:ACCAGGGGTTTGCCTGTCG
R:AGGACGGTAAATGCACTCCC
184
半胱氨酸天冬氨酸酶-1
Caspase-1
XM_038165654 F:CCGTGGAGATACCGTCTCCT
R:ACGTTGGACCTTTCGGAACA
127
白细胞介素-1β
IL-1β
XM_038166869 F:CTGTACCCACCGAAGAAGC
R:ATGTTGAGCCTCACTTTGCG
401
白细胞介素-18
IL-18
XM_013187166 F:GCGGAGAGCTGCTTCAGAAT
R:CAAATGGTCGCCACTTGCTC
214
磷酸甘油醛脱氢酶
GAPDH
XM_013199522 F:AGCAACATCAAGTGGGCAGA
R:CACCCATCACGAACATGGGA
157

1.2.6 Western blot检测

将100 mg肾脏组织在4 ℃的放射免疫沉淀试验(RIPA)裂解缓冲液中裂解20 min后,在12 000 r/min下离心15 min,收集上清液,并使用二喹啉甲酸(BCA)试剂盒进行蛋白定量。然后取50 μg蛋白用10%的十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)胶将蛋白样品进行电泳分离,再转印至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上,分别加入兔抗NLRP3(1∶1 000)、Caspase-1(1∶1 000)、IL-1β(1∶1 000)和GAPDH(1∶1 000)抗体在4 ℃摇床中孵育过夜。次日,加入山羊抗家兔免疫球蛋白G(IgG)抗体(1∶5 000)室温下孵育1 h后在化学发光成像仪中显影成像。利用Image J软件(1.45)通过光密度测定法对蛋白含量进行量化,以GAPDH作为内部对照将其标准化。所用抗体均购于赛默飞世尔科技(中国)有限公司。

1.2.7 肾脏病理组织学检测

HE染色如下:样本从4%多聚甲醛溶液中取出,脱水,包埋在石蜡中,HE染色,并用中性胶密封,然后在显微镜下观察图像并拍照。参考冯学轩等[15]的方法,采用Gomori六胺银法对肾脏中尿酸盐进行染色,主要步骤为:从无水乙醇溶液取出肾脏组织样本,常规石蜡包埋后制成厚度为5 μm切片,然后浸入Gomori六胺银溶液(60 ℃)30 min,冲洗,浸入氯化金溶液1 min,冲洗,再浸入海波溶液5 min,冲洗,伊红染色液淡染30 s,冲洗后常规脱水透明,中性树胶封固。在普通显微镜下观察图像(尿酸盐呈黑色),用Image J软件(1.45)计算尿酸盐沉着面积。

1.3 数据处理

试验结果数据以“平均值±标准差”表示,组间数据差异采用SPSS 23.0中的t检验进行比较,采用Pearson相关分析肾脏组织中尿酸盐沉积面积与NLRP3蛋白相对表达量的相关性,P<0.05表示差异显著。

2 结果与分析

2.1 雏鹅生长性能

表3可知,随着日龄的增长,对照组、HP组和HP+MCC950组雏鹅的平均日采食量均呈上升趋势,3组同日龄时的平均日采食量之间均无显著差异(P>0.05)。15日龄时,HP组雏鹅的平均体重显著低于对照组(P<0.05);10和15日龄时,HP+MCC950组雏鹅的平均体重均显著高于HP组(P<0.05)。
表3 雏鹅生长性能

Table 3 Growth performance of goslingsg

项目
Items
日龄
Days of age
对照组
CON group
高蛋白质组
HP group
高蛋白质+MCC950组
HP+MCC950 group
平均日采食量
Average daily feed intake
5 27.52±0.52 28.71±1.12 28.32±0.98
10 34.25±1.55 36.14±1.87 36.02±1.62
15 41.77±2.14 39.15±1.83 39.43±1.35
平均体重
Average body weight
5 135.52±3.65 138.36±3.11 140.81±5.85
10 237.62±8.14 241.13±7.14 252.23±7.71Δ
15 402.22±8.33 374.58±5.87* 397.68±7.85Δ

*表示与对照组相比差异显著(P<0.05),Δ表示与高蛋白质组相比差异显著(P<0.05)。下表同。

* mean significant difference compared with the CON group (P<0.05), and Δ mean significant difference compared with the HP group (P<0.05). The same as below.

2.2 雏鹅血清生化指标

图1-A所示,HP组雏鹅血清UA含量显著高于对照组(P<0.05),HP+MCC950组血清UA含量显著低于HP组(P<0.05)。以人的高尿酸血症临界值420 μmol/L为标准,计算雏鹅的高尿酸血症发病率(图1-B),可以看出HP组高尿酸血症发病率显著高于对照组(P<0.05),HP+MCC950组高尿酸血症发病率显著低于HP组(P<0.05)。如图1-C、图1-D所示,HP组雏鹅血清Cr和UN含量显著高于HP组(P<0.05),HP+MCC950组血清Cr和UN含量显著低于HP组(P<0.05)。
图1 雏鹅血清生化指标

*表示与对照组相比差异显著(P<0.05),Δ表示与高蛋白质组相比差异显著(P<0.05)。下图同。

Fig.1 Serum biochemical indices of goslings

* mean significant difference compared with the CON group (P<0.05), and Δ mean significant difference compared with the HP group (P<0.05). The same as below.

2.3 雏鹅血清炎症因子含量

表4可知,HP组雏鹅血清CRP、IL-1β、IL-18、IL-6、TNF-α和TGF-β1含量均显著高于对照组(P<0.05),HP+MCC950组血清CRP、IL-1β、IL-18、IL-6、TNF-α和TGF-β1含量均显著低于HP组(P<0.05)。
表4 雏鹅血清炎症因子含量

Table 4 Serum inflammatory factor contents of goslings

项目
Items
对照组
CON group
高蛋白质组
HP group
高蛋白质+MCC950组
HP+MCC950 group
C-反应蛋白CRP/(mg/L) 6.21±0.69 15.61±1.62* 12.32±1.31Δ
白细胞介素-1β IL-1β/(ng/L) 141.15±10.27 306.47±23.11* 266.84±22.85Δ
白细胞介素-18 IL-18/(ng/L) 29.62±2.27 49.15±3.31* 41.57±3.26Δ
白细胞介素-6 IL-6/(ng/L) 31.36±3.44 65.79±5.91* 55.82±5.73Δ
肿瘤坏死因子-α TNF-α/(ng/L) 227.55±24.18 493.69±35.77* 425.82±38.35Δ
转化生长因子-β1 TGF-β1/(ng/L) 32.32±4.04 51.47±4.92* 45.75±4.16Δ

2.4 雏鹅肾脏中NLRP3/Caspase-1信号通路相关分子mRNA相对表达量

表5可知,HP组雏鹅肾脏中NLRP3、Caspase-1、IL-1βIL-18的mRNA相对表达量显著高于对照组(P<0.05),分别约为对照组的2.1、2.6、3.6和3.7倍;HP+MCC950组肾脏中NLRP3、Caspase-1、IL-1βIL-18的mRNA相对表达量显著低于HP组(P<0.05)。
表5 雏鹅肾脏中NLRP3/Caspase-1信号通路相关分子mRNA相对表达量

Table 5 mRNA relative expression levels of NLRP3/Caspase-1 signaling pathway related molecules in kidney of goslings

项目
Items
对照组
CON group
高蛋白质组
HP group
高蛋白质+MCC950组
HP+MCC950 group
核苷酸结合寡聚化结构域样受体3 NLRP3 1.000±0.052 2.130±0.167* 1.656±0.135Δ
半胱氨酸天冬氨酸酶-1 Caspase-1 1.000±0.044 2.614±0.191* 1.823±0.186Δ
白细胞介素-1β IL-1β 1.000±0.018 3.552±0.227* 1.967±0.203Δ
白细胞介素-18 IL-18 1.000±0.063 3.726±0.233* 2.011±0.219Δ

2.5 雏鹅肾脏中NLRP3/Caspase-1信号通路相关分子蛋白相对表达量

图2所示,HP组雏鹅肾脏组织中NLRP3、Caspase-1及IL-1β的蛋白相对表达量显著高于对照组(P<0.05),HP+MCC950组肾脏组织中NLRP3、Caspase-1及IL-1β的蛋白相对表达量显著低于HP组(P<0.05)。
图2 雏鹅肾脏中NLRP3/Caspase-1信号通路相关分子蛋白相对表达量

Fig.2 Protein relative expression levels of NLRP3/Caspase-1 signaling pathway related molecules in kidney of goslings

2.6 雏鹅肾脏组织病理损伤

HE染色结果表明,对照组雏鹅肾脏组织结构正常,肾小管清晰(图3-A-a);HP组肾小管扩张,发生空泡变性、坏死(图3-A-b);HP+MCC950组肾组织有炎性细胞浸润,肾小管结构较为清晰(图3-A-c)。尿酸盐染色结果表明,对照组雏鹅肾脏组织中几乎无尿酸盐沉积(图3-A-d),HP组尿酸盐沉积较多(图3-A-e),HP+MCC950组有少量尿酸盐沉积(图3-A-f)。如图3-B所示,HP组雏鹅肾脏组织尿酸盐沉积面积显著大于对照组(P<0.05),HP+MCC950组肾脏组织尿酸盐沉积面积显著小于HP组(P<0.05)。Pearson相关分析表明,肾脏组织尿酸盐沉积面积与NLRP3蛋白相对表达量呈显著正相关(r=0.681,P<0.05)。
图3 雏鹅肾脏组织病理损伤

Fig.3 Pathological injury in kidney tissues of goslings

3 讨论

高尿酸血症是一种主要由尿酸合成增多或尿酸排泄障碍引起血液中尿酸含量高于正常值的代谢性疾病[16]。高蛋白质饮食能代谢产生大量嘌呤核苷酸,会增强嘌呤分解代谢,增加尿酸生成,导致高尿酸血症的发生[17]。禽类肝脏中缺乏精氨酸酶,无法将蛋白质代谢产物氨合成尿素,只能通过嘌呤核苷酸代谢途径转化为尿酸,因此高蛋白质饮食更容易增加禽类尿酸的生成,引起高尿酸血症[18]。在本研究中,HP组雏鹅血清尿酸含量显著高于对照组,说明高蛋白质饮食成功诱发雏鹅高尿酸血症,这与相关报道结果[19-21]一致。尿酸在血液中常以阴离子形式存在,饱和度较低,过量尿酸阴离子易析出,与组织中钙离子或钠离子等阳离子形成结晶并沉着在组织中,引发痛风。研究表明,肾脏损伤是雏鹅痛风最突出的器官病变[22],而且这种肾脏损伤不易康复,可导致雏鹅生长受阻,甚至死亡。本研究结果显示,高蛋白质饮食雏鹅肾小管扩张,发生空泡变性、坏死,且肾脏中尿酸盐沉积面积显著增大,这与李曼曼等[12]对痛风雏鹅的肾脏组织学检查结果相一致。
NLRP3/Caspase-1信号通路主要通过激活NLRP3炎症小体后激发机体免疫反应,清除有害刺激,在机体的固有免疫中起着关键性作用[23]。但持续过度激活可导致多种代谢性疾病(如痛风及肾衰竭)的发生发展[24-25]。研究表明,尿酸盐晶体通过模式识别受体激活NLRP3炎症小体,诱导炎症反应和组织损伤。Yin等[26]研究发现,尿酸可激活NLRP3炎症小体分泌相关炎症因子,进而影响肾脏实质细胞的形态和功能。Hutto等[27]研究表明,NLRP3炎症小体活化加剧了肾脏的炎症和纤维化。在本研究中,高蛋白质饮食雏鹅血清中IL-1β和IL-18等炎症因子含量升高,肾脏组织中NLRP3、Caspase-1、IL-1βIL-18的mRNA相对表达量以及NLRP3、Caspase-1和IL-1β蛋白相对表达量均上升,肾小管上皮细胞变性,有大量炎性浸润,而且肾脏组织中尿酸盐沉积面积与NLRP3蛋白相对表达量呈正相关。
MCC950是一种高效的NLRP3抑制剂,可抑制NLRP3/Caspase-1信号通路传导[28]。郭亚净等[29]研究发现,MCC950可以通过抑制NLRP3炎性小体介导的炎症反应和细胞焦亡改善脑出血后的神经损伤。另一项试验研究结果表明,MCC950能够显著抑制高糖环境中HK-2肾小管上皮细胞尿酸介导的NLRP3炎性小体系统效应分子释放[30]。在本研究中,与HP组比较,高蛋白质饮食雏鹅给予MCC950后,肾脏组织中NLRP3、Caspase-1和IL-1β蛋白相对表达量显著降低,肾脏组织结构及肾功能得到改善,血清IL-1β和IL-18等炎症因子以及尿酸含量降低。上述结果表明,抑制NLRP3可改善雏鹅的炎症反应和肾脏损伤,暗示NLRP3/Caspase-1信号通路通过促炎反应引起的肾脏损伤,参与高蛋白质饲粮诱导的雏鹅高尿酸血症及痛风过程。然而,MCC950成本高,给药方式特殊,很难生产实践中应用。下一步将以NLRP3靶点,从来源广、成本低的中草药中筛选出对NLRP3有抑制作用的药物,研究其对雏鹅痛风的保护作用,以便在生产中推广应用。

4 结论

NLRP3抑制剂MCC950可以通过抑制NLRP3/Caspase-1信号通路减轻高蛋白质饮食雏鹅的炎症反应,改善肾脏损伤,从而降低血清尿酸含量,提高生长性能。
[1]
YANG J, LI G X, XIONG D L, et al. The impact of natural product dietary supplements on patients with gout:a systematic review and Meta-analysis of randomized controlled trials[J]. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine eCAM, 2020, 2020:7976130.

[2]
郑凯. 荣昌部分地区鹅痛风病流行情况调查[J]. 中国畜禽种业, 2019, 15(5):6-7.

ZHENG K. Investigation on the prevalence of goose gout in some areas of Rongchang[J]. The Chinese Livestock and Poultry Breeding, 2019, 15(5):6-7. (in Chinese)

[3]
ZHANG X Y, REN D, LI T F, et al. An emerging novel goose astrovirus associated with gosling gout disease,China[J]. Emerging Microbes & Infections, 2018, 7(1):152.

[4]
JIN M L, WANG X Y, NING K, et al. Genetic characterization of a new astrovirus in goslings suffering from gout[J]. Archives of Virology, 2018, 163(10):2865-2869.

DOI PMID

[5]
朱道仙, 陆江, 刘莉, 等. 丁酸钠对高蛋白饲料诱导雏鹅痛风及肠道尿酸转运体蛋白表达的影响[J]. 家畜生态学报, 2021, 42(12):60-66.

ZHU D X, LU J, LIU L, et al. Effects of sodium butyrate on gout and intestinal uric acid transporter protein expression induced by high protein diet in goslings[J]. Acta Ecologae Animalis Domastici, 2021, 42(12):60-66. (in Chinese)

[6]
MA W Q, ZHOU L J, LI Y, et al. Persistent purine metabolic abnormality induces the aggravation of visceral inflammation and intestinal microbiota dysbiosis in Magang goose[J]. Frontiers in Veterinary Science, 2021, 8:737160.

DOI

[7]
XI Y M, YAN J S, LI M Y, et al. Gut microbiota dysbiosis increases the risk of visceral gout in goslings through translocation of gut-derived lipopolysaccharide[J]. Poultry Science, 2019, 98(11):5361-5373.

DOI PMID

[8]
奚雨萌, 闫俊书, 应诗家, 等. 高蛋白质高钙饲粮对雏鹅内脏型痛风发生、肾脏功能及肠道微生物区系的影响[J]. 动物营养学报, 2019, 31(2):612-621.

XI Y M, YAN J S, YING S J, et al. Effects of high protein and calcium diets on visceral gout development,kidney function and intestinal microbial community of goslings[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2019, 31(2):612-621. (in Chinese)

[9]
ZHANG C X, ZHU X W, LI L L, et al. A small molecule inhibitor MCC950 ameliorates kidney injury in diabetic nephropathy by inhibiting NLRP3 inflammasome activation[J]. Diabetes Metabolic Syndrome and Obesity:Targets and Therapy, 2019, 12:1297-1309.

DOI

[10]
WEN Y, PAN M M, LV L L, et al. Artemisinin attenuates tubulointerstitial inflammation and fibrosis via the NF-κB/NLRP3 pathway in rats with 5/6 subtotal nephrectomy[J]. Journal of Cellular Biochemistry, 2019, 120(3):4291-4300.

DOI PMID

[11]
相瑞阳, 张正菊, 杨蕾, 等. 秦苓液对尿酸性肾病大鼠肾组织NLRP3信号途径的影响[J]. 世界中西医结合杂志, 2020, 15(5):872-879.

XIANG R Y, ZHANG Z J, YANG L, et al. Effect of Qinling liquid on NLRP3 signal pathway in a rat model with uric acid nephropathy[J]. World Journal of Integrated Traditional and Wesrern Medicine, 2020, 15(5):872-879. (in Chinese)

[12]
李曼曼, 丁雪东, 荣雪路, 等. 高蛋白饲粮致雏鹅痛风的临床病理学研究[J]. 华南农业大学学报, 2019, 40(1):46-52.

LI M M, DING X D, RONG X L, et al. Clinical pathological study of gosling gout induced by high protein diet[J]. Journal of South China Agricultural University, 2019, 40(1):46-52. (in Chinese)

[13]
廖勇, 吴碧华. MCC950介导NLRP3-Caspase1-IL-1β炎症通路调控癫痫易感性[J]. 沈阳药科大学学报, 2021, 38(S2):10-11.

LIAO Y, WU B H. MCC950 regulates susceptibility to epilepsy by mediating NLRP3-Caspase1-IL-1β inflammatory pathways[J]. Journal of Shenyang Pharmaceutical University, 2021, 38(S2):10-11. (in Chinese)

[14]
National Research Council. Nutrient requirements of poultry[M]. 9th ed.Washington, D. C.:The National Academies Press,1994.

[15]
冯学轩, 刘月姝, 饶子亮, 等. 急、慢性高尿酸血症模型的建立[J]. 中国比较医学杂志, 2020, 30(1):74-80.

FENG X X, LIU Y S, RAO Z L, et al. Establishment of mouse and rat models of acute and chronic experimental hyperuricemia[J]. Chinese Journal of Comparative Medicine, 2020, 30(1):74-80. (in Chinese)

[16]
魏志林, 张杰, 李华南, 等. 单味中药降尿酸作用机制概述[J]. 中医药通报, 2021, 20(6):69-72.

WEI Z L, ZHANG J, LI H N, et al. Summary of the mechanism of single Chinese medicine in the process of lowering uric acid[J]. Traditional Chinese Medicine Journal, 2021, 20(6):69-72. (in Chinese)

[17]
张开能, 柯昌兴. 高尿酸血症导致肾结石形成机制的研究进展[J]. 老年医学研究, 2022, 3(2):41-44.

ZHANG K N, KE C X. Research progress on the mechanism of hyperuricemia leading to the formation of kidney stones[J]. Geriatrics Research, 2022, 3(2):41-44. (in Chinese)

[18]
黄远丕, 黄运茂, 闫俊书, 等. 饲粮因素诱发雏鹅痛风的机制剖析及营养调控技术[J]. 动物营养学报, 2020, 32(9):4029-4036.

HUANG Y P, HUANG Y M, YAN J S, et al. Mechanism analysis and nutritional regulation technology of gosling gout induced by dietary factors[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2020, 32(9):4029-4036. (in Chinese)

[19]
王志, 胡仲皓, 李思婷, 等. 高蛋白日粮诱发雏鹅高尿酸血症的血清代谢组学研究[J]. 南京农业大学学报, 2021, 44(6):1169-1176.

WANG Z, HU Z H, LI S T, et al. Study on serum metabonomics of goslings with hyperuricemia induced by high protein diet[J]. Journal of Nanjing Agricultural University, 2021, 44(6):1169-1176. (in Chinese)

[20]
李曼曼. 高蛋白日粮致雏鹅痛风的机理研究[D]. 硕士学位论文. 合肥: 安徽农业大学, 2019.

LI M M. Mechanism of gout in gosling induced by high protein Diet[D]. Master’s Thesis. Hefei: Anhui Agricultural University, 2019. (in Chinese)

[21]
XI Y, SHI Z. 234 alterations of cecum microbiome and kidney injuries associated with high protein diet induced gout in goslings[J]. Journal of Animal Science, 2018,96 (Suppl.3):20-21.

[22]
邵春荣, 黄远丕, 黄运茂, 等. 痛风雏鹅肾组织损伤的RNA-seq分析[J]. 畜牧兽医学报, 2020, 51(3):639-643.

SHAO C R, HUANG Y P, HUANG Y M, et al. RNA-seq analysis on the renal tissue injury in the development of goslings gout[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2020, 51(3):639-643. (in Chinese)

[23]
ZHEN Y, ZHANG H. NLRP3 inflammasome and inflammatory bowel disease[J]. Frontiers in Immunology, 2019, 10:276.

DOI PMID

[24]
齐士勇, 徐勇. NLRP3炎症小体与草酸钙肾结石形成的研究进展[J]. 医学综述, 2021, 27(19):3749-3754.

QI S Y, XU Y. Research progress in relationship between NLRP3 inflammasome and formation of calcium oxalate kidney stone[J]. Medical Recapitulate, 2021, 27(19):3749-3754. (in Chinese)

[25]
WANG Z, ZHANG S M, XIAO Y, et al. NLRP3 inflammasome and inflammatory diseases[J]. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2020, 2020:4063562.

[26]
YIN W, ZHOU Q L, OUYANG S X, et al. Uric acid regulates NLRP3/IL-1β signaling pathway and further induces vascular endothelial cells injury in early CKD through ROS activation and K+ efflux[J]. BMC Nephrology, 2019, 20(1):319.

DOI

[27]
HUTTON H L, OOI J D, HOLDSWORTH S R, et al. The NLRP3 inflammasome in kidney disease and autoimmunity[J]. Nephrology, 2016, 21(9):736-744.

DOI PMID

[28]
武康. NLRP3在小鼠肾缺血再灌注损伤中的作用及MCC950应用研究[D]. 硕士学位论文. 太原: 山西医科大学, 2018.

WU K. Role of NLRP3 in renal ischemia reperfusion injury and application of MCC950[D]. Master’s Thesis. Taiyuan: Shanxi Medical University, 2018. (in Chinese)

[29]
郭亚净, 任静, 刘寒, 等. MCC950对脑出血大鼠神经损伤的作用[J]. 中国应用生理学杂志, 2022, 38(1):11-16.

GUO Y J, REN J, LIU H, et al. Effects of MCC950 on nerve injury in rats with intracerebral hemorrhage[J]. Chinese Journal of Applied Physiology, 2022, 38(1):11-16. (in Chinese)

[30]
陈辞颖. 不同葡萄糖及尿酸浓度环境中Mcc950对人肾小管上皮细胞NLRP3炎性通路作用的研究[D]. 硕士学位论文. 广州: 暨南大学, 2019.

CHEN C Y. Effect of Mcc950 in different concentrations of glucose and uric acid on NLRP3 inflammatory pathway in human renal tubular epithelial cells[D]. Master’s Thesis. Guangzhou: Jinan University, 2019. (in Chinese)

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