动物营养学报 >

2023 , Vol. 35 >Issue 2: 1298 - 1307

DOI: https://doi.org/10.12418/CJAN2023.122

研究论文

大麻二酚对脂多糖诱导的小鼠乳腺上皮细胞氧化损伤的保护作用

  • 范港 , 1 ,
  • 黄鑫 , 1, 2, * ,
  • 张伟伟 1, 2 ,
  • 邵淑丽 1, 2 ,
  • 杨清竹 1, 2
展开
  • 1 齐齐哈尔大学生命科学与农林学院，齐齐哈尔 161006
  • 2 齐齐哈尔大学寒区麻及制品教育部工程研究中心，齐齐哈尔 161006
* 黄鑫，讲师，E-mail：

范港（1997—），女，黑龙江齐齐哈尔人，硕士研究生，研究方向为动物乳腺功能调控。E-mail：

Copy editor: 菅景颖

收稿日期: 2022-08-03

  网络出版日期: 2023-02-13

基金资助

黑龙江省省属高等学校基本科研业务费科研项目(135409428)

收起

Protective Effects of Cannabidiol on Oxidative Damage of Mouse Mammary Epithelial Cells Induced by Lipopolysaccharide

  • FAN Gang , 1 ,
  • HUANG Xin , 1, 2, * ,
  • ZHANG Weiwei 1, 2 ,
  • SHAO Shuli 1, 2 ,
  • YANG Qingzhu 1, 2
Expand
  • 1 College of Life Sciences， Agriculture and Forestry， Qiqihar University， Qiqihar 161006， China
  • 2 Engineering Research Center of Hemp and Hemp Products in Cold Regions， Ministry of Education， Qiqihar University， Qiqihar 161006， China
* lecturer， E-mail：

Received date: 2022-08-03

  Online published: 2023-02-13

Fold

摘要

本试验旨在探究大麻二酚（CBD）对脂多糖（LPS）诱导的小鼠乳腺上皮细胞氧化损伤的保护作用及其分子机制。以小鼠乳腺上皮细胞系HC11作为培养细胞。利用MTT法筛选CBD的最佳作用浓度，最终选择2、4、6 μmol/L CBD作为后续试验的作用浓度。分别用1 μg/mL LPS单独处理，2、4、6 μmol/L CBD与1 μg/mL LPS共处理HC11细胞，并设不进行药物处理的对照组，处理24 h后分别检测氧化应激相关指标、抗氧化相关基因mRNA和蛋白表达的变化。结果显示：1）与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内活性氧（ROS）大量生成，丙二醛（MDA）含量显著增加（P<0.05）；与LPS组相比，2、4、6 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内ROS含量明显下降，MDA含量显著降低（P<0.05），其中以6 μmol/L CBD的效果最为显著。2）与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）、超氧化物歧化酶（SOD）活性和总抗氧化能力（T-AOC）均极显著降低（P<0.01）。与LPS组相比，2 μmol/L CBD预处理显著或极显著提高HC11细胞内SOD活性和T-AOC（P<0.05或P<0.01），而GSH-Px活性则无显著变化（P>0.05）；4、6 μmol/L CBD预处理则均能极显著提高HC11细胞内GSH-Px、SOD活性和T-AOC（P<0.01）。3）与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内转录因子E2相关因子2（Nrf2）、NAD（P）H醌氧化还原酶1（NQO1）、血红素加氧酶-1（HO-1）和超氧化物歧化酶1（SOD1）的mRNA相对表达量均显著或极显著下调（P<0.05或P<0.01）；加入不同浓度CBD与LPS共处理时，与LPS组相比，Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1的mRNA相对表达量均极显著上调（P<0.01）。4）与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1的蛋白相对表达量显著或极显著下降（P<0.05或P<0.01）；加入不同浓度CBD与LPS共处理时，与LPS组相比，Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1的蛋白相对表达量显著或极显著上调（P<0.05或P<0.01）。综上所述，在LPS诱导的小鼠乳腺上皮细胞氧化损伤模型中，适宜浓度的CBD可以通过激活Nrf2信号通路促进抗氧化酶HO-1、NQO1和SOD1的表达，清除细胞内过多的ROS和MDA，从而对LPS诱导的细胞氧化损伤起到保护作用。

关键词： 大麻二酚; 脂多糖; 乳腺上皮细胞; 氧化损伤; Nrf2信号通路

本文引用格式

范港 , 黄鑫 , 张伟伟 , 邵淑丽 , 杨清竹 . 大麻二酚对脂多糖诱导的小鼠乳腺上皮细胞氧化损伤的保护作用[J]. 动物营养学报, 2023 , 35(2) : 1298 -1307 . DOI: 10.12418/CJAN2023.122

Abstract

This study aimed to investigate the protective effects and molecular mechanism of cannabidiol （CBD） on oxidative damage of mouse mammary epithelial cells induced by lipopolysaccharide （LPS）. Mouse mammary epithelial cell line HC11 was used as culture cell. First， the optimal action concentration of CBD was screened by MTT method， and finally 2， 4 and 6 μmol/L CBD were selected as the action concentrations for subsequent experiments. The HC11 cells were treated by 1 μg/mL LPS， and 2， 4， 6 μmol/L CBD+1 μg/mL LPS， respectively. A control group without drug treatment was set. Changes of oxidative stress indexes and expression of antioxidant-related genes mRNA and proteins were detected after drug treatment for 24 h， respectively. The results showed as follows： 1） compared with the control group， a large quantity of reactive oxygen （ROS） was generated， and the content of malondialdehyde （MDA） in HC11 cells was significantly increased after treatment of 1 μg/mL LPS （P<0.05）. After pretreatment with 2， 4 and 6 μmol/L CBD， the content of ROS was obviously decreased， and the content of MDA in HC11 cells was significantly decreased compared with the LPS group （P<0.05）. Among them， 6 mol/L CBD showed the most significant effect. 2） Compared with the control group， the activities of glutathione peroxidase （GSH-Px）， superoxide dismutase （SOD） and total antioxidant capacity （T-AOC） in HC11 cells were extremely significantly decreased after treatment with 1 μg/mL LPS （P<0.01）. Compared with the LPS group， the activity of GSH-Px and T-AOC in HC11 cells were significantly or extremely significantly increased （P<0.05 or P<0.01），but the GSH-Px activity had no significant difference after pretreatment with 2 μmol/L CBD （P>0.05）. Both 4 and 6 μmol/L CBD could extremely significantly increase the activities of GSH-Px， SOD and T-AOC in HC11 cells compared with the LPS group （P<0.01）. 3） Compared with the control group， the mRNA relative levels of nuclear factor-erythroid 2-related factor 2 （Nrf2）， heme oxygenase-1 （HO-1）， NAD（P）H-quinone oxidoreductase 1 （NQO1） and superoxide dismutase 1 （SOD1） in HC11 cells were all significantly or extremely significantly downregulated after 1 μg/mL LPS treatment （P<0.05 or P<0.01）. When HC11 cells were co-treated with different concentrations of CBD and LPS， the mRNA relative expression levels of Nrf2， HO-1， NQO1 and SOD1 were extremely significantly upregulated compared with the LPS group （P<0.01）. 4） Compared with the control group， the protein relative expression levels of Nrf2， HO-1， NQO1 and SOD1 in HC11 cells were significantly or extremely significantly decreased after treatment with 1 μg/mL LPS （P<0.05 or P<0.01）. Whereas， when HC11 cells were co-treated with different concentrations of CBD and LPS， the protein relative expression levels of Nrf2， HO-1 and NQO1 were significantly or extremely significantly upregulated compared with the LPS group （P<0.05 or P<0.01）. In summary， in the oxidative damage model of mouse mammary epithelial cells induced by lipopolysaccharide， the proper concentrations of CBD show protective effects on LPS-induced cellular oxidative damage by activating the Nrf2 signal pathway to promote the expression of antioxidant enzymes HO-1， NQO-1 and SOD1 and remove the excessive ROS and MDA in cells.

Key words： cannabidiol; lipopolysaccharide; mammary epithelial cells; oxidative damage; Nrf2 signal pathway

乳腺炎是奶牛生产中最为常见的一种疾病，严重危害奶牛生产性能，制约奶牛养殖业和乳制品行业的健康发展。处于围产期和泌乳高峰期的奶牛乳腺组织由于其代谢旺盛，导致大量活性氧（ROS）蓄积，易受到氧化损伤，从而诱发乳腺炎等代谢性疾病[1]。病原微生物感染也是奶牛乳腺炎的主要致病因素之一，最为常见的致病菌就是大肠杆菌，其主要致病物质为细胞壁中的脂多糖（LPS）。LPS可诱导机体产生炎性因子，加速ROS的积累并破坏抗氧化防御机制，引发氧化应激，造成乳腺损伤。抗生素虽然对乳腺炎有一定的治疗作用，然而持续大量地使用抗生素不仅会引发病菌的耐药性，还会导致药物残留于奶牛乳腺中，危害人类健康[2-3]。因此，寻找安全高效的抗氧化物质，以缓解奶牛氧化应激造成的危害，对于提高奶牛泌乳性能具有重要意义。近年来，从植物中提取的一些天然活性成分因具有高效、安全和无药物残留等特点，已被广泛用于动物乳腺炎的相关研究，天然活性成分的开发和利用已成为治疗奶牛乳腺炎的有效途径。
大麻（Cannabis sativa L.）是桑科大麻属一年生草本植物，在我国具有悠长的栽培历史。大麻二酚（CBD）、四氢大麻酚（THC）是大麻植物中含量最高的2种大麻素类活性成分。其中，THC是一种精神活性大麻素，具有致幻作用与成瘾性，而CBD不具备精神活性作用，几乎无副作用。随着CBD提取工艺的不断提升，CBD已被广泛用于食品、化妆品和医疗等领域，具有重要的经济和医用价值[4-5]。目前，CBD在临床上已被证实具有治疗神经退行性疾病[6]、肿瘤[7-8]、病毒感染[9-10]、代谢障碍性疾病[11]、皮肤病[12]、精神病[13]和睡眠障碍[14]等功效。越来越多的研究还证实了CBD的抗氧化和抗炎作用。Johnson等[15]报道了CBD对阿片类药物诱导的炎症反应具有调节作用；Li等[16]研究发现，CBD能够保护C57BL/6N小鼠和人口腔角质形成细胞免受5-氟尿嘧啶（5-FU）诱导的口腔黏膜炎；Krzy z ̇ewska等[17]研究发现，CBD可通过提高抗氧化能力减少野百合碱诱导的肺动脉高压大鼠的肺部炎症。CBD作为从麻类作物中提取的天然活性成分，具有治疗奶牛乳腺炎的潜在能力，有待被进一步开发和应用。本研究利用1 μg/mL LPS诱导建立小鼠乳腺上皮细胞HC11氧化损伤模型，通过体外添加不同浓度CBD，检测其对氧化损伤指标[ROS、丙二醛（MDA）含量]、抗氧化指标[谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）、超氧化物歧化酶（SOD）活性和总抗氧化能力（T-AOC）]以及抗氧化相关基因[转录因子E2相关因子2（Nrf2）、NAD（P）H醌氧化还原酶1（NQO1）、血红素加氧酶-1（HO-1）、超氧化物歧化酶1（SOD1）]及其编码蛋白表达的影响，探究CBD对LPS诱导的小鼠乳腺上皮细胞氧化损伤的保护作用及最佳作用浓度，为CBD的应用研究提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 试验材料

小鼠乳腺上皮细胞HC11购自北京北纳创联生物技术研究院；CBD（HPLC≥98%）购自成都普瑞法科技公司；LPS（大肠杆菌O55∶B5）、BCA蛋白定量试剂盒、MTT法细胞活力检测试剂盒、RIPA裂解液、ROS检测试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司；维生素E、脱脂奶粉、二甲基亚砜（DMSO）购自北京索莱宝科技有限公司；Trizol购自Invitrogen公司；蛋白酶体抑制剂购自MCE公司；RPMI-1640干粉、胎牛血清（FBS）购自Gibco公司；T-AOC、GSH-Px检测试剂盒购自南京建成生物工程研究所；微量MDA检测试剂盒购自江苏凯基生物技术股份有限公司；SOD检测试剂盒购自合肥兰杰柯科技有限公司；逆转录试剂盒购自东洋纺（上海）生物科技公司；SYBR® Premix Ex TaqTM试剂盒购自宝生物工程（大连）有限公司；聚偏氟乙烯（PVDF）转印膜购自GE Amersham公司；Nrf2、HO-1、NQO1、SOD1和β-肌动蛋白（β-actin）一抗购自Proteintech公司；二抗（IRDye® 800CW Goat anti-Rabbit IgG）购自Abcam公司。

1.2 主要设备

CO2细胞培养箱、NanoDrop ND-2000C微量紫外分光光度计购自Thermo Fisher Scientific公司；Z32HK高速台式冷冻离心机购自Eppendorf公司；Spark 10M多功能酶标仪购自TECAN公司；倒置荧光显微镜购自Olympus公司；Mastercycler Realplex 4荧光定量PCR仪购自Eppendorf公司；Odyssey IR双红外荧光成像仪购自LI-COR公司。

1.3 试验方法

1.3.1 MTT法检测LPS、CBD对HC11细胞活力的影响

试验分为对照组（接种细胞但不加药处理）、LPS（1 μg/mL）组、不同浓度（2、4、6、8、10、20 μmol/L）CBD组以及不同浓度（2、4、6 μmol/L）CBD+LPS组（先添加CBD预处理1 h后再加入LPS），每组设置5个重复孔。将处于对数期的HC11细胞接种于96孔板中（5×103个/孔），培养过夜。药物处理24 h后，各孔加入10 μL MTT（5 mg/mL），继续培养4 h后吸出培养液，各孔加入100 μL DMSO，10 min后检测各孔在490 nm的吸光度（OD）值并进行计算，试验重复3次。

1.3.2 CBD对LPS诱导的HC11细胞内ROS和MDA含量的影响

试验分为对照组、LPS组、2 μmol/L CBD+LPS组、4 μmol/L CBD+LPS组、6 μmol/L CBD+LPS组和维生素E+LPS组（10 mmol/L维生素E预处理1 h后，与LPS共处理24 h，作为阳性对照）。药物处理24 h后弃培养基，使用无血清培养基洗涤细胞2~3遍，加入稀释的DCFH-DA，37 ℃孵育20 min后洗涤细胞3次，使用倒置荧光显微镜对各组细胞样品进行拍照。MDA含量检测方法参照试剂盒说明书进行操作。

1.3.3 CBD对LPS诱导的HC11细胞内GSH-Px、SOD活性及T-AOC的影响

试验分为对照组、LPS组及2μmol/LCBD+LPS组、4 μmol/L CBD+LPS组、6 μmol/L CBD+LPS组。当细胞汇合度达到70%~80%时，先加入不同浓度CBD预处理1 h，然后加入LPS处理；药物处理24 h后，弃培养基，磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤细胞2~3次，胰蛋白酶消化细胞并转移至1.5 mL离心管中，之后严格按照GSH-Px、SOD及T-AOC检测试剂盒说明书进行操作。

1.3.4 实时荧光定量PCR（qRT-PCR）检测CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关基因mRNA表达的影响

试验分组及药物处理方法同1.3.3。药物处理24 h后收集细胞，提取细胞总RNA并反转录为cDNA。以β-actin作为内参基因，检测Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1的mRNA表达情况。实时荧光定量PCR引物序列见表1。采用10 μL反应体系：AceQ® qPCR SYBR® Green Master Mix 5.0 μL，上、下游引物各0.5 μL，cDNA（稀释5倍）2.0 μL，双蒸水（ddH2O）2.0 μL。反应程序：95 ℃ 30 s，95 ℃ 5 s，60 ℃ 30 s，95 ℃ 15 s，60 ℃ 30 s，进行40个循环。qRT-PCR结果采用2-△△Ct法进行处理。
表1 实时荧光定量PCR引物序列

Table 1 Primer sequences for qRT-PCR

基因
Genes		 登录号
Accession No.		 引物序列
Primer sequences （5'—3'）		 产物大小
Product size/bp
转录因子E2相关因子2
Nrf2		 NM_010902.5 F：CAGCATAGAGCAGGACATGGAG
R：GAACAGCGGTAGTATCAGCCAG		 107
血红素加氧酶-1
HO-1		 NM_010442.2 F：CCTCACTGGCAGGAAATCATC
R：CCTCGTGGAGACGCTTTACATA		 67
NAD（P）H醌氧化还原酶1
NQO1		 NM_008706.5 F：GGTTTGGAGTCCCTGCCATT
R：GCCTTCTTACTCCGGAAGGG		 112
超氧化物歧化酶1
SOD1		 XM_021209691.2 F：ATGGGTTCCACGTCCATCAGTA
R：CATTGCCCAGGTCTCCAACA		 132
β-肌动蛋白
β-actin		 NM_007393.5 F：ACCGTGAAAAGATGACCCAG
R：AGCCTGGATGGCTACGTACA		 71

1.3.5 Western blot检测CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关蛋白表达的影响

试验分组及药物处理方法同1.3.3。药物处理24 h后，每孔加预冷PBS清洗3次；每孔加入适量RIPA裂解液（含蛋白酶体抑制剂）后4 ℃摇床裂解30 min；将裂解液转移至预冷的1.5 mL离心管中，4 ℃、12 000 r/min离心10 min，留上清液；从各组样品中吸取20 μL上清液，用BCA蛋白定量试剂盒测定其蛋白浓度，其余上清中加入6×上样缓冲液，沸水变性10 min；根据蛋白浓度测定结果，用1×上样缓冲液调平各组样品的蛋白浓度。蛋白经过十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）、转膜后用含5%脱脂奶粉的封闭液封闭。蛋白条带经一抗（1∶1 000稀释）、二抗（1∶10 000稀释）孵育后，利用Odyssey红外荧光扫描仪对蛋白条带进行扫描。

1.4 数据处理与分析

使用Image J软件对Western blot结果进行灰度分析，使用GraphPad Prism 5.0软件对数据进行处理分析并作图，数据均以平均值±标准差（mean±SD）表示，P<0.05表示差异显著，P<0.01表示差异极显著。

2 结果与分析

2.1 LPS、CBD对HC11细胞活力的影响

利用MTT法检测不同浓度CBD对HC11细胞活力的影响，结果如图1-A所示。CBD浓度在20 μmol/L以内时对HC11细胞活力均无显著影响（P>0.05），且CBD浓度为2、4、6 μmol/L时HC11细胞活力与对照组相比略有上升。后续试验采用2、4、6 μmol/L CBD对HC11细胞进行预处理，以探究其对LPS诱导的HC11细胞氧化损伤是否具有保护作用。本研究进一步检测了LPS单独处理以及2、4、6 μmol/L CBD+LPS共处理对HC11细胞活力的影响，结果如图1-B所示。LPS单独处理和2、4、6 μmol/L CBD+LPS共处理对HC11细胞活力均无显著影响（P>0.05）。上述试验结果表明，LPS和CBD对HC11细胞活力无影响，后续试验结果不受细胞活力变化的影响。
图1 LPS和CBD对HC11细胞活力的影响

A：CBD对HC11细胞活力的影响；B：LPS与CBD+LPS对HC11细胞活力的影响。CON：对照组；CBD：CBD组；LPS：LPS组；CBD+LPS：CBD+LPS组；2、4、6、8、10、20：CBD作用浓度（μmol/L）。各组数据柱上的数值为与对照组相比较的P值。

Fig.1 Effects of LPS and CBD on viability of HC11 cells

A： effects of CBD on viability of HC11 cells； B： effects of LPS and CBD+LPS on viability of HC11 cells. CON： control group； CBD： CBD group； LPS： LPS group； CBD+LPS： CBD+LPS group； 2， 4， 6， 8， 10， 20： CBD action concentrations （μmol/L）. The numeric value on the data column of each group was the P-value compared with CON group.

2.2 CBD对LPS诱导的HC11细胞内ROS、MDA含量的影响

DCFH-DA是一种荧光探针，本身无荧光，进入细胞后会被细胞内的酯酶水解生成DCFH，从而使探针装载到细胞内。细胞内的ROS可以将其氧化生成有绿色荧光的DCF，其荧光强度反映了细胞内ROS的含量。CBD对LPS诱导的HC11细胞内ROS含量的影响如图2所示。与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内生成大量ROS，绿色荧光强度较高；维生素E+LPS处理后HC11细胞内ROS含量显著降低，几乎检测不到绿色荧光，而利用2、4、6 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内ROS含量明显下降，其中以6 μmol/L CBD预处理后效果最显著。
图2 CBD对LPS诱导的HC11细胞内ROS含量的影响（标尺为20 μm）

A：对照组；B：LPS组；C：维生素E+LPS组；D：2 μmol/L CBD+LPS组；E：4 μmol/L CBD+LPS组；F：6 μmol/L CBD+LPS组。

Fig.2 Effects of CBD on ROS content in LPS-induced HC11 cells （scale bar=20 μm）

A： control group； B： LPS group； C： VE+LPS group； D： 2 μmol/L CBD+LPS group； E： 4 μmol/L CBD+LPS group； F： 6 μmol/L CBD+LPS group.

CBD对LPS诱导的HC11细胞内MDA含量的影响如表2所示。与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内MDA含量显著上升（P<0.05）；与LPS相比，2、4、6 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内MDA含量均显著下降（P<0.05），其中以6 μmol/L CBD+LPS组MDA含量最低。
表2 CBD对LPS诱导的HC11细胞内MDA含量的影响

Table 2 Effects of CBD on MDA content in LPS-induced HC11 cellsnmol/mg prot

项目
Item		 组别 Groups
对照
Control		 LPS 2 μmol/L
CBD+LPS		 4 μmol/L
CBD+LPS		 6 μmol/L
CBD+LPS
丙二醛 MDA 0.86±0.19 1.94±0.07* 1.50±0.05# 1.19±0.06# 0.85±0.07#

“*”表示与对照组相比差异显著（P<0.05），“#”表示与LPS组相比差异显著（P<0.05）。

“*” mean significant difference compared with control group （P<0.05）， and “#” mean significant difference compared with LPS group （P<0.05）.

2.3 CBD对LPS诱导的HC11细胞内GSH-Px、SOD活性及T-AOC的影响

CBD对LPS诱导的HC11细胞内GSH-Px、SOD活性及T-AOC的影响如表3所示。与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后，HC11细胞内GSH-Px、SOD活性和T-AOC均极显著降低（P<0.01）。与LPS组相比，4、6 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内GSH-Px、SOD活性和T-AOC均极显著升高（P<0.01）；2 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内GSH-Px活性无显著变化（P>0.05），T-AOC显著升高（P<0.05），SOD活性极显著升高（P<0.01）。由以上结果可知，6 μmol/L CBD预处理对LPS诱导的HC11细胞内GSH-Px、SOD活性和T-AOC的保护作用最为明显。
表3 CBD对LPS诱导的HC11细胞内GSH-Px、SOD活性及T-AOC的影响

Table 3 Effects of CBD on activities of GSH-Px， SOD and T-AOC of LPS-induced HC11 cellsU/mg prot

项目
Items		 组别 Groups
对照
Control		 LPS 2 μmol/L
CBD+LPS		 4 μmol/L
CBD+LPS		 6 μmol/L
CBD+LPS
谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px 103.10±3.57 35.41±3.81** 46.95±2.19 64.36±7.21## 81.10±8.94##
超氧化物歧化酶SOD 17.55±0.51 6.21±0.25** 9.74±0.39## 11.10±0.70## 13.26±0.43##
总抗氧化能力 T-AOC 0.74±0.02 0.41±0.04** 0.92±0.10# 11.10±0.70## 13.26±0.43##

“**”表示与对照组相比差异极显著（P<0.01），“#”表示与LPS组相比差异显著（P<0.05），“##”表示与LPS组相比差异极显著（P<0.01）。

“**” mean extremely significant difference compared with control group （P<0.01）， “#” mean significant difference compared with LPS group （P<0.05）， and “##” mean extremely significant difference compared with LPS group （P<0.01）.

2.4 CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关基因mRNA表达的影响

CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关基因mRNA表达的影响如图3所示。与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后HC11细胞内Nrf2、NQO1、SOD1 mRNA相对表达量极显著下调（P<0.01），HO-1 mRNA相对表达量显著下调（P<0.05）；与LPS组相比，2、4、6 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1 mRNA相对表达量均极显著上调（P<0.01）。
图3 CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关基因mRNA表达的影响

“*”表示与对照组相比差异显著（P<0.05），“**”表示与对照组相比差异极显著（P<0.01），“#”表示与LPS组相比差异显著（P<0.05），“##”表示与LPS组相比差异极显著（P<0.01）。下图同。

Fig.3 Effects of CBD on expression of antioxidant-related genes in LPS-induced HC11 cells

“*” mean significant difference compared with control group （P<0.05）， “**” mean extremely significant difference compared with control group （P<0.01）， “#” mean significant difference compared with LPS group （P<0.05）， and “##” mean extremely significant difference compared with LPS group （P<0.01）. The same as below.

2.5 CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关蛋白表达的影响

CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关蛋白表达的影响如图4所示。与对照组相比，1 μg/mL LPS处理后，HC11细胞内HO-1、NQO1和SOD1蛋白相对表达量极显著下调（P<0.01），Nrf2蛋白相对表达量显著下调（P<0.05）；与LPS组相比，4、6 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1蛋白相对表达量均极显著上调（P<0.01）；2 μmol/L CBD预处理后HC11细胞内Nrf2、NQO1和SOD1蛋白相对表达量均极显著上调（P<0.01），HO-1蛋白相对表达量显著上调（P<0.05）。
图4 CBD对LPS诱导的HC11细胞内抗氧化相关蛋白表达的影响

Fig.4 Effects of CBD on expression of antioxidant-related proteins in LPS-induced HC11 cells

3 讨论

乳腺上皮细胞不仅是乳腺组织中合成乳蛋白、乳脂和乳糖等基本乳成分的主要场所，也是乳腺的天然屏障。当乳腺上皮细胞受到损伤时，其屏障功能丧失，导致机体发生氧化应激及炎症反应。本研究利用LPS诱导建立HC11细胞氧化损伤模型。在前期研究中，已筛选出建立氧化损伤细胞模型的LPS最佳作用浓度和处理时间分别为1 μg/mL和24 h。Guo等[18]利用此方法诱导原代牛乳腺上皮细胞（BMECs）发生炎症反应以探究烟酸对乳腺炎的缓解作用。Lai等[19]在研究中也采用此方法建立小鼠乳腺上皮细胞（mMECs）炎症反应模型以探究靛玉红对小鼠乳腺炎的治疗作用。许多乳腺炎的相关研究均采用类似方法建立氧化损伤或炎症反应细胞模型。
当机体内ROS产生速度大于抗氧化剂的清除速度时，过量的ROS会攻击细胞内DNA和蛋白质，从而引发细胞氧化损伤，诱发乳腺炎等代谢性疾病。此外，机体发生氧化应激时会发生脂质氧化并产生包括MDA在内的一系列复杂化合物，其过量积累会引发细胞膜结构和功能发生改变，从而损伤细胞。因此，MDA含量可间接体现机体的氧化损伤程度[20]。本研究以细胞内ROS和MDA含量作为衡量机体氧化损伤程度的2个重要指标。采用DCFH-DA探针法和TBA法分别检测了不同处理HC11细胞内ROS和MDA含量，结果显示，与LPS组相比，不同浓度CBD预处理后HC11细胞内中ROS和MDA含量均显著降低，其中以6 μmol/L CBD预处理时效果最为显著。
抗氧化酶活性是反映细胞氧化应激状态的主要指标之一。当机体内产生大量ROS时，抗氧化酶会起到防御作用，清除过多的ROS以维持机体正常生理功能[20]。GSH-Px是机体中广泛存在的一种过氧化物分解酶，能催化还原型谷胱甘肽（GSH）还原脂质氢过氧化物成羟基化合物，从而清除自由基，在保护细胞免受自由基损伤过程起着关键作用[21]。SOD是一种能够清除机体内氧自由基，尤其是超氧阴离子自由基的抗氧化酶，对机体的氧化与抗氧化平衡起到至关重要的作用[22]。机体中存在的各种抗氧化大分子、小分子和酶的总体水平即体现了该体系内的T-AOC，它是反映机体抗氧化功能综合表现的指标[23]。因此，本试验通过检测不同浓度CBD对LPS诱导的HC11细胞内GSH-Px、SOD活性和T-AOC的影响，以探究CBD对LPS诱导的乳腺上皮细胞氧化损伤的保护作用。结果显示，当利用3种不同浓度CBD预处理HC11细胞后，细胞内GSH-Px、SOD活性及T-AOC较LPS组显著或极显著升高，该结果表明，CBD能够通过提升细胞内抗氧化酶的活性清除过多的ROS和MDA，从而缓解LPS诱导的细胞氧化损伤。
Nrf2调节涉及细胞稳态的多种基因。正常情况下，Nrf2与Kelch样环氧氯丙烷相关蛋白1（Keap1）在细胞质中形成复合体呈失活状态。当发生氧化应激时，Keap1与Nrf2解离，Nrf2进入细胞核内与DNA上相应靶位点结合，可激活HO-1、NQO1和SOD1等抗氧化酶活性，维持机体氧化平衡状态[24]。Wang等[25]研究证实，2-甲基壬基酮（鱼腥草中提取的一种天然活性成分）可通过激活Nrf2信号通路产生HO-1，从而减少LPS诱导的MAC-T细胞氧化损伤。Li等[26]研究表明，姜黄素（一种天然酚类物质）通过激活Nrf2信号通路上调HO-1和NQO1的表达，从而减轻LPS诱导的MAC-T细胞氧化损伤及炎症反应。为了研究CBD对Nrf2及相关抗氧化酶基因和蛋白表达的影响，本试验通过qRT-PCR和Western blot分别检测了不同组HC11细胞内Nrf2、HO-1、NQO1和SOD1 mRNA及其编码蛋白的相对表达水平。结果显示，与LPS组相比，不同浓度CBD预处理后HC11细胞内Nrf2 mRNA及其编码蛋白的相对表达量均极显著上调，HO-1、NQO1和SOD1等抗氧化酶的mRNA和蛋白相对表达水平也均显著或极显著上调，与上述研究结果类似。综上所述，CBD可以通过激活Nrf2信号通路促进抗氧化酶HO-1、NQO-1和SOD1的表达，对LPS诱导的HC11细胞氧化损伤起到保护作用。

4 结论

CBD可通过激活Nrf2信号通路促进HO-1、NQO-1和SOD1等抗氧化酶的表达，提高细胞总抗氧化能力，清除细胞内过多的ROS和MDA，对LPS诱导的HC11细胞氧化损伤起到一定的保护作用，当CBD浓度为6 μmol/L时保护效果最为显著。因此，CBD具有作为饲料添加剂应用于奶牛生产以提高奶牛乳腺组织抗氧化机能的潜力。

参考文献

原文顺序 | 文献年度倒序 | 文中引用次数倒序
[1]
KHAN M Z, MA Y L, XIAO J X, et al. Role of selenium and vitamins E and B9 in the alleviation of bovine mastitis during the periparturient period[J]. Antioxidants, 2022, 11(4):657.

DOI

[2]
ZAATOUT N. An overview on mastitis-associated Escherichia coli:pathogenicity,host immunity and the use of alternative therapies[J]. Microbiological Research, 2022, 256:126960.

DOI

[3]
KRÖMKER V, LEIMBACH S. Mastitis treatment-reduction in antibiotic usage in dairy cows[J]. Reproduction in Domestic Animals, 2017,52 (Suppl.3):21-29.

[4]
于晓瑾, 刘采艳, 杨连荣, 等. 工业大麻中大麻二酚的研究进展[J]. 中成药, 2021, 43(5):1275-1279.

YU X J, LIU C Y, YANG L R, et al. Research progress of cannabidiol in industrial hemp[J]. Chinese Traditional Patent Medicine, 2021, 43(5):1275-1279. (in Chinese)

[5]
于宛彤, 侯康鑫, 苏新堯, 等. 药用大麻活性成分、产品开发及育种研究进展[J/OL]. 中国实验方剂学杂志:1-11. https://kns.cnki.net/kcms/detail/detail.aspx?FileName=ZSFX20220606008&DbName=DKFX2022.DOI:10.13422/j.cnki.syfjx.20220556.

YU W T, HOU K X, SU X Y, et al. Active ingredients,product development and breeding of medicinal cannabis:a review[J/OL]. Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae:1-11. https://kns.cnki.net/kcms/detail/detail.aspx?FileName=ZSFX20220606008&DbName=DKFX2022.DOI:10.13422/j.cnki.syfjx.20220556. (in Chinese)

[6]
PAES-COLLI Y, AGUIAR A F L, ISAAC A R, et al. Phytocannabinoids and cannabis-based products as alternative pharmacotherapy in neurodegenerative diseases:from hypothesis to clinical practice[J]. Frontiers in Cellular Neuroscience, 2022, 16:917164.

DOI

[7]
KLECKNER A S, KLECKNER I R, KAMEN C S, et al. Opportunities for cannabis in supportive care in cancer[J]. Therapeutic Advances in Medical Oncology, 2019, 11:1758835919866362.

[8]
LUONGO M, MARINELLI O, ZEPPA L, et al. Cannabidiol and oxygen-ozone combination induce cytotoxicity in human pancreatic ductal adenocarcinoma cell lines[J]. Cancers, 2020, 12(10):2774.

DOI

[9]
DEMARINO C, COWEN M, KHATKAR P, et al. Cannabinoids reduce extracellular vesicle release from HIV-1 infected myeloid cells and inhibit viral transcription[J]. Cells, 2022, 11(4):723.

DOI

[10]
NGUYEN L C, YANG D B, NICOLAESCU V, et al. Cannabidiol inhibits SARS-CoV-2 replication through induction of the host ER stress and innate immune responses[J]. Science Advances, 2022, 8(8):eabi6110.

[11]
CHANG R C, THANGAVELU C S, JOLOYA E M, et al. Cannabidiol promotes adipogenesis of human and mouse mesenchymal stem cells via PPARγ by inducing lipogenesis but not lipolysis[J]. Biochemical Pharmacology, 2022, 197:114910.

DOI

[12]
PEYRAVIAN N, DEO S, DAUNERT S, et al. The anti-inflammatory effects of cannabidiol (CBD) on acne[J]. Journal of Inflammation Research, 2022, 15:2795-2801.

DOI PMID

[13]
GUNASEKERA B, WILSON R, O’NEILL A, et al. Cannabidiol attenuates insular activity during motivational salience processing in patients with early psychosis[J/OL]. Psychological Medicine:1-10. https://doi.org/10.1017/S0033291722001672. DOI: 10.1017/S0033291722001672.

DOI

[14]
LAVENDER I, MCGREGOR I S, SURAEV A, et al. Cannabinoids,insomnia,and other sleep disorders[J]. CHEST, 2022, 162(2):452-465.

DOI

[15]
JOHNSON C T, BRADSHAW H B. Modulatory potential of cannabidiol on the opioid-induced inflammatory response[J]. Cannabis and Cannabinoid Research, 2021, 6(3):211-220.

DOI PMID

[16]
LI L, XUAN Y W, ZHU B, et al. Protective effects of cannabidiol on chemotherapy-induced oral mucositis via the Nrf2/Keap1/ARE signaling pathways[J]. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2022, 2022:4619760.

DOI PMID

[17]
KRZY ŻEWSKA A, BARANOWSKA-KUCZKO M, JASTRZAB A, et al. Cannabidiol improves antioxidant capacity and reduces inflammation in the lungs of rats with monocrotaline-induced pulmonary hypertension[J]. Molecules, 2022, 27(10):3327.

DOI

[18]
GUO W J, LIU J X, LI W, et al. Niacin alleviates dairy cow mastitis by regulating the GPR109A/AMPK/NRF2 signaling pathway[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2020, 21(9):3321.

DOI

[19]
LAI J L, LIU Y H, PENG Y C, et al. Indirubin treatment of lipopolysaccharide-induced mastitis in a mouse model and activity in mouse mammary epithelial cells[J]. Mediators of Inflammation, 2017, 2017:3082805.

[20]
马广明, 刘骥, 姜鑫, 等. 辣木叶多糖对过氧化氢诱导奶牛乳腺上皮细胞氧化损伤的保护作用[J]. 动物营养学报, 2021, 33(1):350-358.

MA G M, LIU J, JIANG X, et al. Protective effects of moringa leaf polysaccharide on oxidative damage of dairy cow mammary epithelial cells induced by hydrogen peroxide[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2021, 33(1):350-358. (in Chinese)

[21]
陈慧琴, 李玺, 权乾坤, 等. 龟龄集胶囊对SAMP8 小鼠不同组织MDA、SOD、GSH-PX及端粒酶的影响[J]. 现代中医药, 2022, 42(3):67-71.

CHEN H Q, LI X, QUAN Q K, et al. Effects of Guilingji capsule on MDA,SOD,GSH-PX and telomerase in different tissues of SAMP8 mice[J]. Modern Traditional Chinese Medicine, 2022, 42(3):67-71. (in Chinese)

[22]
李慧, 杨林. Nrf2抗氧化的分子调控机制[J]. 生物信息学, 2018, 16(1):1-6.

LI H, YANG L. Molecular regulatory mechanism of Nrf2 antioxidant[J]. Chinese Journal of Bioinformatics, 2018, 16(1):1-6. (in Chinese)

[23]
梅杰, 吕美, 曾佳, 等. 金银花提取物对热应激奶山羊生产性能、乳成分、血清生化指标和抗氧化能力的影响[J]. 动物营养学报, 2022, 34(9):5995-6002.

DOI

MEI J, LV M, ZENG J, et al. Effects of honeysuckle extract on performance,milk composition,serum biochemical indexes and antioxidant capacity of heat-stressed dairy goats[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2022, 34(9):5995-6002. (in Chinese)

DOI

[24]
GUO S C, YANG J Y, QIN J P, et al. Melatonin promotes in vitro maturation of vitrified-warmed mouse germinal vesicle oocytes,potentially by reducing oxidative stress through the Nrf2 pathway[J]. Animals, 2021, 11(8):2324.

DOI

[25]
WANG N, ZHU Y B, LI D D, et al. 2-Methyl nonyl ketone from Houttuynia cordata Thunb alleviates LPS-induced inflammatory response and oxidative stress in bovine mammary epithelial cells[J]. Frontiers in Chemistry, 2021, 9:793475.

DOI

[26]
LI R H, FANG H T, SHEN J L, et al. Curcumin alleviates LPS-induced oxidative stress,inflammation and apoptosis in bovine mammary epithelial cells via the NFE2L2 signaling pathway[J]. Toxins, 2021, 13(3):208.

DOI

Options
文章导航

/

〈 〉

    联系我们

  • 地址：北京市海淀区圆明园西路2号
    　　　中国农业大学动科动医大楼153室
  • 邮编：100193
  • 电话：010－62817823
  • 网址：http://www.chinajan.com
  • E-mail：cjan@chinajan.com
京公网安备 11010802041926号    京ICP备17050989号-2