研究论文

桑叶提取物对断奶仔猪粪便中主要微生物数量和臭气物质生成的影响

  • 宋敏 , 1 ,
  • 王超普 1 ,
  • 崔艺燕 1 ,
  • 邓盾 1 ,
  • 余苗 1 ,
  • 刘志昌 1 ,
  • 田志梅 1 ,
  • 容庭 1 ,
  • 李贞明 1 ,
  • 马现永 , 1, 2, *
展开
  • 1 广东省农业科学院动物科学研究所,畜禽育种国家重点实验室,农业农村部华南动物营养与饲料重点实验室,广东省畜禽育种与营养研究重点实验室,广东畜禽肉品质量安全控制与评定工程技术研究中心,广州 510640
  • 2 岭南现代农业科学与技术广东省实验室茂名分中心,茂名 525000
* 马现永,研究员,硕士生导师,E-mail:

宋敏(1985—),女,山东德州人,博士,从事动物营养与饲料和畜禽生态养殖研究。E-mail:

Copy editor: 田艳明

收稿日期: 2022-08-08

  网络出版日期: 2023-02-13

基金资助

广东省农业科学院低碳农业与碳中和研究中心(XTXM202204)

广东省现代农业产业技术体系饲料创新团队项目(2022KJ115)

广东省农业科学院农业优势产业科学团队建设项目(202118TD)

省级农业科技创新推广及农业资源与生态环境保护建设项目(2021KJ266)

科技创新战略专项资金(高水平农科院建设)-杰出人才(R2020PY-JC001)

科技创新战略专项资金(高水平农科院建设)-优秀博士(R2020YJ-YB2002)

广东省农村科技特派员项目(KTP20210008)

茂名实验室科研启动项目(2021TDQD002)

Effects of Mulberry Leaf Extract on Number of Main Microbes and Production of Odorous Substances in Feces of Weaned Piglets

  • SONG Min , 1 ,
  • WANG Chaopu 1 ,
  • CUI Yiyan 1 ,
  • DENG Dun 1 ,
  • YU Miao 1 ,
  • LIU Zhichang 1 ,
  • TIAN Zhimei 1 ,
  • RONG Ting 1 ,
  • LI Zhenming 1 ,
  • MA Xianyong , 1, 2, *
Expand
  • 1 Guangdong Engineering Technology Research Center of Animal Meat Quality and Safety Control and Evaluation,Guangdong Provincial Key Laboratory of Animal Breeding and Nutrition, Key Laboratory of Animal Nutrition and Feed Science in South China, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, State Key Laboratory of Livestock and Poultry Breeding, Institute of Animal Science, Guangdong Academy of Agricultural Sciences, Guangzhou 510640, China
  • 2 Maoming Branch, Guangdong Laboratory for Lingnan Modern Agricultural Science and Technology, Maoming 525000, China
* professor, E-mail:

Received date: 2022-08-08

  Online published: 2023-02-13

摘要

本试验旨在研究饲粮中添加桑叶提取物(MLE)对断奶仔猪粪便中主要微生物数量和臭气物质生成的影响。试验选取48头健康且初始体重[(8.287±0.141) kg]相近的“杜×长×大”三元杂交去势断奶仔猪,按体重随机分为2组,每组6个重复,每个重复4头猪。对照组饲喂基础饲粮,MLE组饲喂基础饲粮+0.1%的MLE。试验期28 d。试验期最后3 d(第26~28天),采集断奶仔猪的新鲜粪便,检测其主要微生物数量和臭气物质含量。结果表明,与对照组相比:1)MLE组粪便中乳酸杆菌和双歧杆菌数量显著提高(P<0.05),粪便中大肠杆菌数量显著降低(P<0.05);2)MLE组粪便中乳酸、丁酸、戊酸以及总挥发性脂肪酸含量显著提高(P<0.05),粪便中乙酸、丙酸含量有升高的趋势(0.05≤P<0.10),粪便pH则有降低的趋势(0.05≤P<0.10);3)MLE组粪便中氨态氮(NH3-N)含量有降低的趋势(P=0.056);4)MLE组粪便中对甲酚含量显著降低(P<0.05),粪便中吲哚和粪臭素含量有降低的趋势(0.05≤P<0.10);5)MLE组粪便中尸胺、腐胺、组胺、色胺、酪胺和总生物胺含量显著降低(P<0.05)。综上所述,饲粮添加0.1%的MLE能够增加断奶仔猪粪便中碳水合物降解菌乳酸杆菌和双歧杆菌的数量,减少含氮化合物降解菌大肠杆菌的数量,从而提高粪便中乳酸及挥发性脂肪酸等有益代谢物的含量,减少NH3-N、生物胺、吲哚和粪臭素等臭气物质的生成和排放。

本文引用格式

宋敏 , 王超普 , 崔艺燕 , 邓盾 , 余苗 , 刘志昌 , 田志梅 , 容庭 , 李贞明 , 马现永 . 桑叶提取物对断奶仔猪粪便中主要微生物数量和臭气物质生成的影响[J]. 动物营养学报, 2023 , 35(2) : 823 -833 . DOI: 10.12418/CJAN2023.080

Abstract

This experiment was conducted to investigate the effects of mulberry leaf extract (MLE) supplementation on the number of main microbes and the production of odorous substances in feces of weaned piglets. Forty-eight healthy Duroc×Landrace×Yorkshire cross-bred castrated weaned piglets with a similar initial body weight of (8.287±0.141) kg were randomly divided into 2 groups according to the body weight with 6 replicates per group and 4 piglets in each replicate. Piglets in the control group were fed a basal diet, and those in the MLE group were fed the basal diet+0.1% MLE. The experiment lasted for 28 days. During the last three days of the experiment (days 26 to 28), the fresh feces of weaned piglets were collected to detect the number of main microbes and the contents of odorous substances. The results showed as follows, compared with the control group: 1) the numbers of Lactobacillus and Bifidobacterium in feces in the MLE group were significantly increased (P<0.05), and the Escherichia coli number in feces was significantly decreased (P<0.05). 2) The contents of lactate, butyrate, valerate and total volatile fatty acid in feces in the MLE group were significantly increased (P<0.05), the contents of acetate and propionate in feces tended to be increased (0.05≤P<0.10), and the fecal pH had a tendency to decrease (0.05≤P<0.10). 3) The ammonia nitrogen (NH3-N) content in feces in the MLE group tended to be decreased (P=0.056). 4) The p-cresol content in feces in the MLE group was significantly reduced (P<0.05), and the contents of indole and skatole in feces tended to be reduced (0.05≤P<0.10). 5) The contents of cadaverine, putrescine, histamine, tryptamine, tyramine and total biogenic amine in feces in the MLE group were significantly decreased (P<0.05). In conclusion, 0.1% MLE supplementation can increase the number of carbon hydrate degrading bacteria as Lactobacillus and Bifidobacterium, and reduce the number of nitrogen compound degrading bacteria as Escherichia coli, thus increasing the contents of beneficial metabolites such as lactate and volatile fatty acids in feces and reducing the formation and emission of odorous substances such as NH3-N, biogenic amines, indole and skatole in feces of weaned piglets.

随着现代畜禽养殖业的规模化、集约化发展,养殖场产生的臭气污染已成为制约畜禽养殖可持续发展的瓶颈,也是畜禽生态养殖过程中亟待解决的技术难题。臭气主要是由动物胃肠道中未被利用的营养物质和内源性产物经厌氧微生物发酵生成的代谢物,因此肠道微生物在调控畜禽粪便中臭气物质生成的过程中扮演着重要角色。臭气的主要成分为氨气、挥发性含硫化物、胺类、酚类、吲哚类和挥发性脂肪酸类物质等[1]。养殖过程中产生的臭气主要来自尿液和粪便,在封闭和半封闭的养殖舍内,臭气物质不仅使畜禽易患呼吸道疾病,影响畜禽的生产性能和健康状况,还对场内管理人员的健康及周围的生态环境造成严重的危害。因此,如何治理畜禽养殖场的臭气污染成为了近年来养殖行业关注的热点问题。臭气的产生受到多种因素的影响,如饲料成分、环境因素、动物健康状况以及粪便的处理方式等。到目前为止,人们对畜禽养殖臭气的研究多集中在臭气的无害化处理上,却很少有研究关注从源头上减少臭气物质的生成。研究表明,饮食与臭气物质的产生直接相关,例如低蛋白质及高纤维饲粮能有效降低畜禽粪便中的臭气物质[2]。此外,饲料添加剂也可通过提高饲料消化率或改变粪便pH来抑制臭味物质的生成[1]。因此,通过营养手段调控肠道微生物,从源头上减少臭气物质的生成对解决畜禽养殖臭气污染问题具有重要意义。
桑叶提取物(mulberry leaf extract,MLE)是以桑叶为原料,经干燥、粉碎、提取及喷雾干燥而成的粉状物质。桑叶经提取后能有效降低桑叶中的抗营养因子含量,并富含多糖、多酚、黄酮和生物碱等多种天然活性成分,具有抗炎、抗氧化、降糖和免疫调节的功效[3-4]。以往的研究结果表明,在饲粮中添加MLE能够提高蛋鸡、肉鸡和猪等畜禽的生产性能,并提高动物机体的抗氧化能力、免疫功能及肉品质等[5-8]。此外,桑叶及MLE还能调节肠道菌群平衡。研究表明,桑叶粉可改变鸡肠道的微生物组成[9],桑叶水提物可改善肥胖大鼠脂肪代谢,增加粪便中变形杆菌、蓝藻菌和拟杆菌数量至正常水平[10]。然而MLE能否通过调节肠道微生物来减少粪便中臭气物质的生成,目前鲜有报道。因此,本试验以断奶仔猪作为研究对象,通过在饲粮中添加0.1%的MLE,探讨其对仔猪粪便中主要微生物数量以及臭气物质含量的影响,旨在为生猪生产过程中通过营养手段从源头减少粪便中臭气物质生成提供科学依据。

1 材料与方法

1.1 试验材料

本试验所用MLE是由桑叶粉的乙醇浸提物浓缩后喷雾干燥制成,由广州市某公司提供。其主要活性成分为桑叶黄酮、桑叶多酚、桑叶多糖和生物碱,其中桑叶总黄酮含量为20.51%。

1.2 试验设计

本试验设计同前期已发表文献[11],即选取48头健康的“杜×长×大”三元杂交断奶阉公猪,初始体重为(8.287±0.141) kg,随机分为2组,每组6个重复(栏),每个重复4头猪。根据NRC(2012)推荐的断奶仔猪营养需要量配制断奶前期(7~11 kg)和断奶后期(12~25 kg)2个阶段的玉米-豆粕型基础饲粮,其组成及营养水平见表1。对照组饲喂基础饲粮, MLE组在基础饲粮的基础上添加0.1%的MLE(产品企业标准制定前进行了梯度试验,推荐剂量为0.1%)。试验期28 d。
表1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of basal diets (air-dry basis)%

项目
Items
断奶前期(7~11 kg)
Early weaning period
(7 to 11 kg)
断奶后期(12~25 kg)
Late weaning period
(12 to 25 kg)
原料 Ingredients
玉米 Corn 37.56 48.88
膨化玉米 Extruded corn 16.00 13.00
豆粕 Soybean meal 14.00 15.00
膨化大豆 Extruded soybean 10.00 6.00
乳清粉 Dried whey (3.2% CP) 8.00 4.00
鱼粉 Fish meal 3.00 3.00
大豆浓缩蛋白 Soybean protein concentrate 4.00 4.00
葡萄糖 Glucose 2.50 2.00
大豆油 Soybean oil 1.00 0.80
氯化胆碱 Choline chloride 0.10 0.10
氯化钠 NaCl 0.25 0.25
氧化锌 ZnO 0.15
项目
Items
断奶前期(7~11 kg)
Early weaning period
(7 to 11 kg)
断奶后期(12~25 kg)
Late weaning period
(12 to 25 kg)
磷酸氢钙 CaHPO4 1.20 1.00
石粉 Limestone 0.65 0.65
维生素-矿物质预混料 Vitamin-mineral premix1) 0.50 0.50
L-赖氨酸盐酸盐 L-Lys·HCl 0.50 0.42
L-苏氨酸 L-Thr 0.30 0.16
DL-蛋氨酸 DL-Met 0.26 0.22
L-色氨酸 L-Trp 0.03 0.02
合计 Total 100.00 100.00
营养水平 Nutrient levels2)
消化能 DE/(MJ/kg) 14.87 14.68
粗蛋白质 CP 20.02 19.65
钙 Ca 0.81 0.74
总磷 TP 0.65 0.60
有效磷 AP 0.42 0.37
赖氨酸 Lys 1.40 1.31
蛋氨酸+半胱氨酸 Met+Cys 0.74 0.68
苏氨酸 Thr 0.81 0.76
色氨酸 Trp 1.38 1.26

1)维生素-矿物质预混料为每千克饲粮提供 The vitamin-mineral premix provided the following per kg of diets:VA 9 600 IU,VD3 3 000 IU,VE 1 500 IU,VK3 3 mg,烟酸 nicotinic acid 30 mg,VB1 2.25 mg,VB2 7.50 mg,VB6 5 mg,VB12 0.03 mg,叶酸 folic acid 1.50 mg,生物素 biotin 0.15 mg,泛酸钙 pantothenic acid 15 mg,Cu 16 mg,Fe 120 mg,Mn 70 mg,Se 0.50 mg,Zn 80 mg,I 0.70 mg,Co 0.40 mg。

2)消化能以及赖氨酸、蛋氨酸+半胱氨酸、苏氨酸和色氨酸均为计算值,其余为实测值。DE, Lys, Met+Cys, Thr and Trp were calculated values, while the others were measured values.

1.3 饲养管理

所有试验仔猪均饲养在同一全封闭式猪舍内,猪舍内温度控制在(25±1) ℃,相对湿度控制在(50±5)%。试验期间所有仔猪自由采食和饮水,每次喂食遵循少量多次原则。每天定时清扫猪舍,并观察仔猪的健康状况。定期对猪舍进行消毒,消毒及免疫程序均按照猪场常规程序进行。

1.4 样品采集

试验期最后3 d(第26~28天),每天晨饲前进行粪样的收集,每栏至少收集3头断奶仔猪的新鲜粪样,混合后立即测定粪便pH,并以3 d的平均值作为每栏仔猪粪便的pH。然后在第28天的混合粪样中取100 g置于-80 ℃保存,用于粪便主要微生物数量及臭气物质含量等指标的检测。

1.5 指标测定

1.5.1 生长性能和腹泻率

试验开始和结束时对各组断奶仔猪进行空腹称重,试验期间记录断奶仔猪的采食量。试验结束后计算每栏断奶仔猪的平均日增重(ADG)、平均日采食量(ADFI)和料重比(F/G)。每天早晚2次观察断奶仔猪的精神状态,并仔细检查其肛门及粪便情况,观察有无腹泻情况并记录。试验结束后,根据以下公式计算每栏仔猪的腹泻率:
腹泻率(%)=100×[仔猪腹泻头次总和/(仔猪头数×试验天数)]。

1.5.2 粪便主要微生物数量的测定

采用SIMGEN粪便DNA纯化试剂盒(杭州新景生物试剂开发有限公司)提取粪便总DNA,操作步骤严格按照说明书进行。使用核酸蛋白检测仪Nanodrop 1100(Thermo Fisher Scientific,美国)测定总DNA浓度和纯度。采用Real-time PCR仪(CFX96 Real-time PCR System,Bio-Rad CFX Connect,美国)对粪便中的总菌、厚壁菌门(Firmicutes)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、瘤胃球菌属(Ruminococcus)、普雷沃氏菌属(Prevotella)、梭菌Ⅳ(Clostridium cluster Ⅳ)、乳酸杆菌(Lactobacillus)、双歧杆菌(Bifidobacterium)和大肠杆菌(Escherichia coli)的16S rRNA基因的拷贝数进行定量分析,引物序列参考Yu等[12],见表2。参照Chen等[13]的方法,通过构建标准质粒建立特定的标准曲线。PCR反应体系及扩增程序参考文献[12]提供的方法。结果均计算为每克粪便中16S rRNA基因拷贝数的对数值,以lg(拷贝数/g)表示。
表2 微生物种类及其引物序列

Table 2 Microbial species and primer sequences

细菌
Bacteria
引物序列
Primer sequences (5'—3')
产物长度
Product size/bp
总菌 Total bacteria F:GTGSTGCAYGGYYGTCGTCA
R:ACGTCRTCCMCNCCTTCCTC
123
厚壁菌门 Firmicutes F:GGAGYATGTGGTTTAATTCGAAGCA
R:AGCTGACGACAACCATGCAC
126
拟杆菌门 Bacteroidetes F:GGARCATGTGGTTTAATTCGATGAT
R:AGCTGACGACAACCATGCAG
126
瘤胃球菌属 Ruminococcus F:GAAAGCGTGGGGAGCAAACAGG
R:GACGACAACCATGCACCACCTG
301
普雷沃氏菌属 Prevotella F:GGTTCTGAGAGGAAGGTCCCC
R:TCCTGCACGCTACTTGGCTG
121
梭菌Ⅳ Clostridium cluster Ⅳ F:GCACAAGCAGTGGAGT
R:CTTCCTCCGTTTTGTCAA
240
乳酸杆菌 Lactobacillus F:AGCAGTAGGGAATCTTCCA
R:ATTCCACCGCTACACATG
345
双歧杆菌 Bifidobacterium F:TCGCGTCYGGTGTGAAAG
R:GGTGTTCTTCCCGATATCTACA
128
大肠杆菌 Escherichia coli F:CATGCCGCGTGTATGAAGAA
R:CGGGTAACGTCAATGAGCAAA
95

1.5.3 粪便pH的测定

采用pH计(HI 9024C,HANNA Instruments,Woonsocket,美国)测定断奶仔猪粪便的pH。

1.5.4 粪便中乳酸含量的测定

粪便中乳酸的含量采用南京建成生物工程研究所的试剂盒,按照说明书的步骤进行测定。

1.5.5 粪便中挥发性脂肪酸含量的测定

粪便中乙酸、丙酸、丁酸、异丁酸、戊酸和异戊酸等的含量采用气相色谱仪(7890B,Agilent Technologies Inc,美国)进行测定,并计算总挥发性脂肪酸的含量。具体步骤参照Yu等[14]的方法。

1.5.6 粪便中氨态氮(NH3-N)含量的测定

采用靛蓝酚蓝分光光度法测定粪便中NH3-N含量,具体操作步骤参照蒲万霞等[15]的方法。

1.5.7 粪便中生物胺、酚和吲哚类物质含量的测定

采用高效液相色谱(HPLC)法测定断奶仔猪粪便中甲胺、色胺、酪胺、腐胺、尸胺、精胺和亚精胺的含量,然后计算总生物胺含量,具体操作步骤参照Yang等[16]的方法;采用HPLC法测定粪便中酚和吲哚类物质主要检测甲酚、苯酚、吲哚和粪臭素的含量,具体操作步骤参照Jensen等[17]的方法。

1.6 数据处理

本试验中所有试验数据采用SPSS 23.0软件进行独立样本t检验(t test),试验结果用“平均值±标准误”(mean±SE)表示,0.05≤P<0.10时表示差异有显著趋势,P<0.05时表示差异显著,P<0.01时表示差异极显著。

2 结果与分析

2.1 MLE对断奶仔猪生长性能和腹泻率的影响

2组断奶仔猪的ADFI和F/G无显著差异(P>0.05),但MLE组的ADG(0.350 kg)与对照组(0.316 kg)相比有提高的趋势(P=0.059)。此外,MLE组的腹泻率(1.464%)显著低于对照组(3.571%)(P<0.05)。详细结果请查阅前期已发表文献[11]

2.2 MLE对断奶仔猪粪便主要微生物数量的影响

图1可知,饲粮添加MLE对粪便中总菌、厚壁菌门和拟杆菌门的数量无显著影响(P>0.05),但显著提高了粪便中乳酸杆菌和双歧杆菌的数量(P<0.05),显著降低了粪便中大肠杆菌的数量(P<0.05)。上述结果表明,MLE能够增加肠道中有益菌的数量,降低有害菌的数量,从而有助于维持肠道微生物的平衡状态。
图1 MLE对断奶仔猪粪便主要微生物数量的影响

数据柱标记*表示差异显著(P<0.05)。

Fig.1 Effects of MLE on number of main microbes in feces of weaned piglets (n=6)

Data columns with * mean significant difference (P<0.05).

2.3 MLE对断奶仔猪粪便pH及乳酸、挥发性脂肪酸含量的影响

表3可知,与对照组相比,饲粮添加MLE后,断奶仔猪粪便pH有降低的趋势(P=0.061),粪便中乳酸含量显著升高(P<0.05);此外,MLE组断奶仔猪粪便中乙酸、丙酸含量有升高的趋势(0.05≤P<0.10),粪便中丁酸、戊酸和总挥发性脂肪酸含量显著提高(P<0.05)。
表3 MLE对断奶仔猪粪便pH及乳酸、挥发性脂肪酸含量的影响

Table 3 Effects of MLE on fecal pH and contents of lactic acid and volatile fatty acids of weaned piglets (n=6)

项目
Items
对照组
Control group
MLE组
MLE group
P
P-value
pH 6.392±0.042 6.288±0.023 0.061
乳酸 Lactate/(μmol/g) 6.948±0.173b 7.733±0.248a 0.027
总挥发性脂肪酸 Total volatile fatty acid/(μmol/g) 190.344±8.577b 216.734±6.810a 0.044
乙酸 Acetate/(μmol/g) 112.692±3.511 123.651±3.971 0.072
丙酸 Propionate/(μmol/g) 42.262±4.506 52.690±2.982 0.082
丁酸 Butyrate/(μmol/g) 19.275±1.229b 22.827±0.912a 0.043
异丁酸 Isobutyrate/(μmol/g) 3.601±0.431 3.774±0.427 0.781
戊酸 Valerate/(μmol/g) 6.606±1.003b 9.429±0.618a 0.038
异戊酸 Isovalerate/(μmol/g) 4.779±0.622 5.104±0.635 0.722

同行数据肩标不同字母表示差异显著(P<0.05)。下图同。

Values in the same row with different letter superscripts mean significant difference (P<0.05). The same as below.

2.4 MLE对断奶仔猪粪便中NH3-N含量的影响

表4可知,与对照组相比,MLE组断奶仔猪粪便中NH3-N含量有降低的趋势(P=0.056)。
表4 MLE对断奶仔猪粪便中NH3-N含量的影响

Table 4 Effects of MLE on NH3-N content in feces of weaned piglets (n=6)mg/g

项目
Item
对照组
Control group
MLE组
MLE group
P
P-value
氨态氮 NH3-N 1.159±0.071 0.983±0.044 0.056

2.5 MLE对断奶仔猪粪便中酚类和吲哚类物质含量的影响

表5可知,2组断奶仔猪粪便中苯酚含量无显著差异(P>0.05);但与对照组相比,MLE组断奶仔猪粪便中对甲酚含量显著降低(P<0.05),粪便中吲哚和粪臭素含量有降低的趋势(0.05≤P<0.10)。
表5 MLE对断奶仔猪粪便中酚类和吲哚类物质含量的影响

Table 5 Effects of MLE on contents of phenols and indoles in feces of weaned piglets (n=6)μg/g

项目
Items
对照组
Control group
MLE组
MLE group
P
P-value
苯酚 Phenol 13.729±2.162 11.036±0.996 0.284
对甲酚 p-cresol 173.137±10.564a 130.825±11.235b 0.034
吲哚 Indole 21.185±1.058 18.689±0.595 0.067
粪臭素 Skatole 44.612±3.812 30.336±5.613 0.062

2.6 MLE对断奶仔猪粪便中生物胺含量的影响

表6可知,与对照组相比,MLE组断奶仔猪粪便中尸胺、腐胺、组胺、色胺、酪胺和总生物胺含量显著降低(P<0.05),粪便中精胺、亚精胺和甲胺含量无显著差异(P>0.05)。
表6 MLE对断奶仔猪粪便中生物胺含量的影响

Table 6 Effects of MLE on biogenic amine content in feces of weaned piglets (n=6)μg/g

项目
Items
对照组
Control group
MLE组
MLE group
P
P-value
尸胺 Cadaverine 91.617±4.362a 69.547±8.397b 0.042
腐胺 Putrescine 76.615±7.598a 53.436±6.214b 0.046
精胺 Spermine 24.208±3.666 18.114±3.634 0.265
组胺 Histamine 20.731±2.338a 12.309±2.370b 0.034
色胺 Tryptamine 25.316±4.738a 12.304±2.719b 0.039
亚精胺 Spermidine 15.980±3.442 14.486±2.272 0.717
甲胺 Methylamine 14.108±1.614 16.048±2.337 0.510
酪胺 Tyramine 8.538±1.596a 3.935±0.663b 0.028
总生物胺 Total biogenic amine 267.673±12.932a 202.285±19.274b 0.018

3 讨论

3.1 MLE对断奶仔猪生长性能和腹泻率的影响

新鲜的桑叶难以消化,通常要经过微生物发酵来提高其消化率。然而,新鲜和发酵的桑叶中纤维素含量高,其添加量不能超过一定的阈值,这因此限制了其作为畜禽饲料添加剂的适用性[18]。此外,桑叶中还含有单宁、植物凝集素等抗营养因子,影响饲粮的适口性。研究表明,在生长育肥猪饲粮中添加发酵桑叶,猪的ADG随发酵桑叶添加比例的提高而出现显著下降[19]。因此,从桑叶中提取活性成分作为饲料添加剂效果会更好。MLE中含有的黄酮类化合物、多糖类、生物碱和甾醇类等多种天然活性物质,具有促进动物生长和提高免疫力等功能[3]。Zhao等[20]研究发现,饲粮添加桑叶多糖能够促进肠道微生态平衡,从而降低断奶仔猪的腹泻率,提高其生长性能。此外,有报道称,在饲粮中添加0.3%的MLE和杜仲提取物(MLE∶杜仲提取物=1∶1)能够提高育肥猪的生长性能,并改善其肉品质[7]。唐佳希等[8]研究表明,在生长猪饲粮中分别添加0.10%和0.15%MLE能够显著提高生长猪的ADFI和ADG。然而Chen等[18]研究发现,在断奶仔猪饲粮中添加150和300 g/t的MLE对断奶仔猪体重影响不大,但能显著降低断奶仔猪的腹泻率。MLE对猪生长性能的不同影响可能跟猪所处的生长阶段有关,对于断奶仔猪来说,仔猪腹泻是影响仔猪健康发育的重要原因。因此,降低腹泻对于提高断奶仔猪的机体健康意义重大。与Chen等[18]的研究结果相似,在本研究中,MLE组断奶仔猪ADG有升高的趋势,但其腹泻率显著降低,这可能跟MLE中的多种活性物质促进了有益菌的生长,改善了仔猪肠道微生态环境,促进了肠道健康,提高了机体抗氧化能力和免疫力有关。

3.2 MLE对断奶仔猪粪便微生物数量的影响

在本研究中,饲粮添加MLE能够增加断奶仔猪粪便中乳酸杆菌和双歧杆菌的数量,降低大肠杆菌的数量。乳酸杆菌和双歧杆菌是常见的肠道益生菌,不仅能参与碳水化合物的发酵产生乳酸、乙酸和挥发性脂肪酸,还能产生抗菌因子,通过调节炎症因子的平衡和抑制有害菌的增殖,对维持肠道健康具有重要作用[21-22]。大肠杆菌是一种条件致病菌,也是一种含氮化合物降解菌,被认为是引起猪腹泻和胃肠道疾病的最常见原因[23]。与本研究结果相一致,邝哲师等[24]研究发现,饲粮中添加5%和10%桑叶粉能够降低肉鸡盲肠中大肠杆菌数量,增加有益菌的数量。另外,MLE的多种活性物质也均被报道对肠道菌群有类似的影响。Zhao等[20]研究发现,桑叶多糖能促进早期断奶仔猪肠道中乳酸杆菌和双歧杆菌的生长,同时抑制肠道中大肠杆菌的生长。Liao等[25]研究表明,MLE中的酚类物质和纤维能够提高乳酸菌等有益菌的数量,改善高脂饮食导致的大鼠肠道菌群多样性的下降。此外,体外试验结果也证实,MLE中的生物碱和黄酮类物质对大肠杆菌、沙门氏菌、金黄色葡萄球菌和绿脓杆菌等致病菌有较好的抑菌效果[26-27]。在本试验中,MLE能够促进断奶仔猪肠道中有益菌群的生长并抑制潜在病原菌的生长,从而改善肠道微生态,降低腹泻率。因此,推测MLE对粪便微生物的这种调控作用可能来源于MLE中桑叶多糖、酚类、生物碱和黄酮类等生物活性物质的影响。

3.3 MLE对断奶仔猪粪便pH及乳酸、挥发性脂肪酸含量的影响

粪便pH是肠道pH的反映。仔猪断奶时,其胃肠道尚未发育成熟,肠道微生物群落极易受周围环境等因素的影响而发生变化。断奶仔猪肠道pH升高会使大肠杆菌等有害菌大量繁殖,从而抑制乳酸杆菌等有益菌的生长,而低肠道pH环境则能抑制大肠杆菌等病原菌的繁殖,肠道中的微生物酶活性也会提高[28]。在本试验中,饲粮添加MLE后断奶仔猪的粪便pH有降低的趋势,这主要跟粪便中增加的乳酸和总挥发性脂肪酸含量有关。乳酸是由多种肠道细菌如乳酸杆菌和双歧杆菌在碳水化合物发酵过程中产生的代谢物。挥发性脂肪酸也称为短链脂肪酸,是肠道微生物发酵碳水化合物、膳食纤维和蛋白质而产生的一系列代谢物,主要包括乙酸、丙酸、丁酸、戊酸、异戊酸和异丁酸。在本试验中,MLE提高了断奶仔猪粪便中乳酸、丁酸、戊酸以及总挥发性脂肪酸的含量,粪便中乙酸和丙酸的含量也有提高的趋势,表明MLE能够促进肠道中碳水化合物的发酵。由于挥发性脂肪酸的恶臭阈值远高于含氮化合物发酵产生的臭气物质,对动物机体的危害程度较小[29]。相反,肠道中产生的挥发性脂肪酸不仅有助于形成肠道酸性pH环境,还能通过多种途径影响宿主代谢,对动物肠道及机体的健康有着非常重要的作用[30-31]。因此,本试验结果表明,MLE能够通过促进乳酸杆菌和双歧杆菌等碳水化合物降解菌的增殖,提高肠道中乳酸和挥发性脂肪酸的含量,从而形成酸性pH环境,促进肠道中碳水化合物的发酵。

3.4 MLE对断奶仔猪粪便NH3-N、生物胺、酚类和吲哚类物质含量的影响

NH3-N、生物胺、酚类和吲哚类物质等是动物后肠中含氮化合物发酵产生的主要臭气物质,具有潜在毒性,不仅会促进肠道上皮细胞产生炎症反应,还可诱导致病菌增加,对动物肠道及机体健康产生不利影响[32-33]。NH3-N是氨基酸在肠道微生物作用下脱氨形成的代谢物[34],极不稳定,容易转化为氨气释放到空气中。氨气的臭气检测阈值较低,猪群吸入后易患呼吸道病和眼病,抗病力降低,对动物机体产生较大危害[21,35]。生物胺是由相应氨基酸经脱羧反应生成的一类臭气物质[34]。研究表明,体内低浓度的生物胺对细胞生长和机体发育有益,但高浓度的生物胺会引起恶心、头痛、皮疹和血压变化等不良反应,危害动物的健康[36-38]。肠道微生物降解苯丙氨酸、酪氨酸和色氨酸等芳香族氨基酸产生一系列酚类和吲哚类臭气物质,主要包括苯酚、对甲酚、吲哚和粪臭素等,其臭气阈值均较低,具有强烈的恶臭味[39]。其中,吲哚和粪臭素(3-甲基吲哚)是色氨酸发酵产生的吲哚类物质,而苯酚、对甲酚则是酪氨酸发酵的主要产物[21]。在本试验中,MLE组断奶仔猪粪便中NH3-N的含量有降低的趋势,粪便中尸胺、腐胺、组胺、色胺、酪胺和总生物胺的含量以及对甲酚的含量显著降低,粪便中吲哚和粪臭素的含量也有降低的趋势。以上结果表明,饲粮添加MLE能够减少断奶仔猪后肠中含氮化合物的发酵,从而减少粪便中NH3-N、生物胺、酚类和吲哚类物质等臭气物质的生成和排放。本课题组前期研究发现,粪便中NH3-N、生物胺、酚类和吲哚类物质的含量与蛋白质降解菌大肠杆菌的数量呈正相关[40]。而在本试验中,断奶仔猪粪便中NH3-N、生物胺、酚类和吲哚类物质含量的降低也伴随着粪便中大肠杆菌数量的减少。此外,肠道pH是影响含氮化合物的主要环境参数之一。中性或微碱性的pH有利于含氮化合物的发酵,而酸性的肠道pH环境不仅能使细菌分泌的蛋白酶活性降低[41],而且有利于乳酸杆菌、双歧杆菌等有益菌的繁殖,同时抑制大肠杆菌等有害菌的繁殖。因此,肠道中pH的降低减弱了细菌蛋白酶的活性,抑制大肠杆菌等蛋白质降解菌的繁殖,从而减少了后肠中含氮化合物的发酵,减少了NH3-N、生物胺、酚类和吲哚类化合物等臭气物质的产生。

4 结论

饲粮添加MLE能够增加断奶仔猪粪便中碳水合物降解菌乳酸杆菌和双歧杆菌的数量,减少含氮化合物降解菌大肠杆菌的数量,从而降低断奶仔猪的腹泻率,提高粪便中乳酸及挥发性脂肪酸的含量,减少粪便中NH3-N、生物胺、吲哚和粪臭素等臭气物质的生成和排放。
[1]
LE P D, AARNINK A J A, OGINK N W M, et al. Odour from animal production facilities:its relationship to diet[J]. Nutrition Research Reviews, 2005, 18(1):3-30.

DOI

[2]
SUTTON A L, KEPHART K B, VERSTEGEN M W, et al. Potential for reduction of odorous compounds in swine manure through diet modification[J]. Journal of Animal Science, 1999, 77(2):430-439.

DOI PMID

[3]
夏鑫, 余曼荣, 曾青华, 等. 桑叶提取物及其在动物生产上的应用研究进展[J]. 中国饲料, 2019(7):4-8.

XIA X, YU M R, ZENG Q H, et al. The research of mulberry leaf extract and its application in animal production[J]. China Feed, 2019(7):4-8. (in Chinese)

[4]
朱琳, 赵金鸽, 范作卿, 等. 桑叶的主要营养成分及其药理作用的研究进展[J]. 北方蚕业, 2017, 38(2):9-15,23.

ZHU L, ZHAO J G, FAN Z Q, et al. Research progress on nutrient components,biological activity and application of mulberry leaves[J]. North Sericulture, 2017, 38(2):9-15,23. (in Chinese)

[5]
雷春龙, 李娟, 吴永胜, 等. 桑枝叶提取物对蛋鸡生产性能、血清免疫指标与抗氧化能力的影响[J]. 中国畜牧杂志, 2019, 55(8):118-122.

LEI C L, LI J, WU Y S, et al. Effects of mulberry branch and leaf extract on growth performance,serum immune indexes and antioxidant capacity of laying hens[J]. Chinese Journal of Animal Science, 2019, 55(8):118-122. (in Chinese)

[6]
宋琼莉, 周泉勇, 韦启鹏, 等. 桑叶提取物对矮脚黄鸡生长性能、屠宰性能及肉品质的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(1):191-201.

SONG Q L, ZHOU Q Y, WEI Q P, et al. Effects of mulberry leaf extract on growth performance,slaughter performance and meat quality of yellow dwarf chickens[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2018, 30(1):191-201. (in Chinese)

[7]
李婉涛, 王义翠, 徐秋良, 等. 杜仲和桑叶提取物对育肥猪生长性能及猪肉品质的影响[J]. 黑龙江畜牧兽医, 2018(10):157-160.

LI W T, WANG Y C, XU Q L, et al. Effects of eucommia and mulberry leaf extracts on the growth performance of fattening pigs and pork quality[J]. Heilongjiang Animal Science and Veterinary Medicine, 2018(10):157-160. (in Chinese)

[8]
唐佳希, 喻国均, 崔清明, 等. 桑叶提取物对生长猪生长性能、养分表观消化率及血清生化指标的影响[J]. 动物营养学报, 2022, 34(5):2862-2871.

DOI

TANG J X, YU G J, CUI Q M, et al. Effects of mulberry leaf extract on growth performance,nutrient apparent digestibility and serum biochemical indexes of growing pigs[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2022, 34(5):2862-2871. (in Chinese)

[9]
CHEN Y, NI J J, LI H W. Effect of green tea and mulberry leaf powders on the gut microbiota of chicken[J]. BMC Veterinary Research, 2019, 15(1):77.

DOI PMID

[10]
马珂, 喻凯, 何雨轩, 等. 桑叶水提物对肥胖症大鼠脂代谢及肠道菌群的影响[J]. 华西药学杂志, 2019, 34(3):249-252.

MA K, YU K, HE Y X, et al. Effects of the mulberry leaves water extract on lipid metabolism and intestinal flora in obese rats[J]. West China Journal of Pharmaceutical Sciences, 2019, 34(3):249-252. (in Chinese)

[11]
宋敏, 王超普, 邓盾, 等. 桑叶提取物对断奶仔猪生长性能、养分表观消化率、抗氧化能力和免疫功能的影响[J]. 动物营养学报, 2022, 34(6):3537-3546.

DOI

SONG M, WANG C P, DENG D, et al. Effects of mulberry leaf extract on growth performance,nutrient apparent digestibility,antioxidant ability and immune function of weaned piglets[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2022, 34(6):3537-3546. (in Chinese)

DOI

[12]
YU M, LI Z M, CHEN W D, et al. Dietary supplementation with citrus extract altered the intestinal microbiota and microbial metabolite profiles and enhanced the mucosal immune homeostasis in yellow-feathered broilers[J]. Frontiers in Microbiology, 2019, 10:2662.

DOI PMID

[13]
CHEN H, CHEN D W, MICHIELS J, et al. Dietary fiber affects intestinal mucosal barrier function by regulating intestinal bacteria in weaning piglets[J]. Communications in Agricultural and Applied Biological Sciences, 2013, 78(1):71-78.

PMID

[14]
YU M, ZHANG C J, YANG Y X, et al. Long-term effects of early antibiotic intervention on blood parameters,apparent nutrient digestibility,and fecal microbial fermentation profile in pigs with different dietary protein levels[J]. Journal of Animal Science and Biotechnology, 2018, 9(1):175-186.

[15]
蒲万霞, 魏云霞, 孟晓琴, 等. 靛酚蓝-分光光度法测定胃肠道内容物中氨态氮含量研究[J]. 甘肃农业大学学报, 2008, 43(5):13-17.

PU W X, WEI Y X, MENG X Q, et al. Determination of NH4+-N content in castrointestinal with indophenol blue spectrophotometric method[J]. Journal of Gansu Agricultural University, 2008, 43(5):13-17. (in Chinese)

[16]
YANG Y X, MU C L, ZHANG J F, et al. Determination of biogenic amines in digesta by high performance liquid chromatography with precolumn dansylation[J]. Analytical Letters, 2014, 47(8):1290-1298.

DOI

[17]
JENSEN M T, COX R P, JENSEN B B. 3-methylindole (skatole) and indole production by mixed populations of pig fecal bacteria[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1995, 61(8):3180-3184.

DOI PMID

[18]
CHEN G S, SHUI S Z, CHAI M J, et al. Effects of paper mulberry (Broussonetia papyrifera) leaf extract on growth performance and fecal microflora of weaned piglets[J]. BioMed Research International, 2020, 2020:6508494.

[19]
呼红梅, 郝丽红, 王怀中, 等. 发酵桑叶对生长育肥猪生长性能、胴体品质和肌肉营养成分的影响[J]. 动物营养学报, 2021, 33(11):6104-6113.

HU H M, HAO L H, WANG H Z, et al. Effects of fermented mulberry leaves on growth performance,carcass quality and muscle nutrients of growing-finishing pigs[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2021, 33(11):6104-6113. (in Chinese)

[20]
ZHAO X J, LI L, LUO Q L, et al. Effects of mulberry (Morus alba L.) leaf polysaccharides on growth performance,diarrhea,blood parameters,and gut microbiota of early-weanling pigs[J]. Livestock Science, 2015, 177:88-94.

DOI

[21]
WANG W, CHEN L P, ZHOU R, et al. Increased proportions of Bifidobacterium and the Lactobacillus group and loss of butyrate-producing bacteria in inflammatory bowel disease[J]. Journal of Clinical Microbiology, 2014, 52(2):398-406.

DOI

[22]
钟智康, 王燕, 吴银宝, 等. 单胃动物肠道细菌群落及其产臭机制研究进展[J]. 家畜生态学报, 2018, 39(6):5-11.

ZHONG Z K, WANG Y, WU Y B, et al. Effect of intestinal bacteria community and its mechanism on odor production in monogastric animals[J]. Acta Ecologae Animalis Domastici, 2018, 39(6):5-11. (in Chinese)

[23]
DAWANGPA A, LERTWATCHARASARAKUL P, BOONSOONGNERN A, et al. Multidrug resistance problems targeting piglets and environmental health by Escherichia coli in intensive swine farms[J]. Emerging Contaminants, 2022, 8:123-133.

DOI

[24]
邝哲师, 黄静, 廖森泰, 等. 桑叶粉和发酵桑叶粉对胡须鸡屠宰性能、肉品质及盲肠菌群的影响[J]. 中国畜牧兽医, 2016, 43(8):1989-1997.

KUANG Z S, HUANG J, LIAO S T, et al. Effects of mulberry leaf meal and fermented mulberry leaf meal on slaughter performance,meat quality and cecum microflora in Huxu chicken[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2016, 43(8):1989-1997. (in Chinese)

[25]
LIAO S T, LONG X S, ZOU Y X, et al. Mulberry leaf phenolics and fiber exert anti-obesity through the gut microbiota-host metabolism pathway[J]. Journal of Food Science, 2021, 86(4):1432-1447.

DOI

[26]
成少宁, 董文宾, 蔺毅峰, 等. 桑叶活性成分的抑菌作用及稳定性研究[J]. 中国酿造, 2021, 40(2):140-143.

CHENG S N, DONG W B, LIN Y F, et al. Antibacterial effect and stability of active components from mulberry leaf[J]. China Brewing, 2021, 40(2):140-143. (in Chinese)

[27]
高欣妍, 王海英, 刘志明. 桑叶乙醇提取物的体外抗氧化与抑菌活性[J]. 生物质化学工程, 2019, 53(2):35-40.

DOI

GAO X Y, WANG H Y, LIU Z M. in vitro antioxidant and antibacterial activity of ethanol extract from mulberry leaves[J]. Biomass Chemical Engineering, 2019, 53(2):35-40. (in Chinese)

[28]
张德明, 黄嘉訸, 李劲树, 等. 猪肠道微生物及其代谢产物与肠道屏障研究进展[J]. 畜牧兽医学报, 2022, 53(5):1334-1344.

ZHANG D M, HUANG J H, LI J S, et al. Research progress of gut microbiota,metabolites and gut barrier in pigs[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2022, 53(5):1334-1344. (in Chinese)

[29]
张信宜, 王燕, 吴银宝, 等. 规模化猪场臭气减排的营养和饲养技术研究进展[J]. 家畜生态学报, 2017, 38(4):1-7,14.

ZHANG X Y, WANG Y, WU Y B, et al. Research progress on nutrition and feeding technology in reducing odour in large-scale pig farms[J]. Acta Ecologae Animalis Domastici, 2017, 38(4):1-7,14. (in Chinese)

[30]
BARREA L, MUSCOGIURI G, ANNUNZIATA G, et al. From gut microbiota dysfunction to obesity:could short-chain fatty acids stop this dangerous course?[J]. Hormones, 2019, 18(3):245-250.

DOI

[31]
DIAO H, JIAO A R, YU B, et al. Gastric infusion of short-chain fatty acids can improve intestinal barrier function in weaned piglets[J]. Genes and Nutrition, 2019, 14:4.

DOI PMID

[32]
BLACHIER F, MARIOTTI F, HUNEAU J F, et al. Effects of amino acid-derived luminal metabolites on the colonic epithelium and physiopathological consequences[J]. Amino Acids, 2007, 33(4):547-562.

DOI PMID

[33]
LI R, CHANG L, HOU G F, et al. Colonic microbiota and metabolites response to different dietary protein sources in a piglet model[J]. Frontiers in Nutrition, 2019, 6:151.

DOI PMID

[34]
DAVILA A M, BLACHIER F, GOTTELAND M, et al. Intestinal luminal nitrogen metabolism:role of the gut microbiota and consequences for the host[J]. Pharmacological Research, 2013, 68(1):95-107.

DOI

[35]
李新建, 吕刚, 任广志. 影响猪场氨气排放的因素及控制措施[J]. 家畜生态学报, 2012, 33(1):86-93.

LI X J, LYU G, REN G Z. Influencing factors of ammonia emissions from pig houses and mitigation techniques[J]. Acta Ecologae Animalis Domastici, 2012, 33(1):86-93. (in Chinese)

[36]
SANTOS M H S. Biogenic amines:their importance in foods[J]. International Journal of Food Microbiology, 1996, 29(2/3):213-231.

DOI

[37]
FUSI E, ROSSI L, REBUCCI R, et al. Administration of biogenic amines to Saanen kids:effects on growth performance,meat quality and gut histology[J]. Small Ruminant Research, 2004, 53(1/2):1-7.

DOI

[38]
LINARES D M, DEL RIO B, REDRUELLO B, et al. Comparative analysis of the in vitro cytotoxicity of the dietary biogenic amines tyramine and histamine[J]. Food Chemistry, 2016,197, Part A:658-663.

[39]
CONE J W, JONGBLOED A W, GELDER A H V, et al. Estimation of protein fermentation in the large intestine of pigs using a gas production technique[J]. Animal Feed Science and Technology, 2005, 123/124(Part 1):463-472.

DOI

[40]
余苗, 李贞明, 陈卫东, 等. 不同淀粉类型饲粮对育肥猪盲肠食糜主要微生物及其代谢产物的影响[J]. 动物营养学报, 2020, 32(2):613-625.

YU M, LI Z M, CHEN W D, et al. Effects of different starch type diets on main microbes and their metabolites in cecal digesta of finishing Pigs[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2020, 32(2):613-625. (in Chinese)

[41]
PI Y, GAO K, PENG Y, et al. Antibiotic-induced alterations of the gut microbiota and microbial fermentation in protein parallel the changes in host nitrogen metabolism of growing pigs[J]. Animal, 2019, 13(2):262-272.

DOI PMID

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