动物营养学报 >

2026 , Vol. 38 >Issue 4: 2599 - 2610

DOI: https://doi.org/10.12418/CJAN2026.209

研究论文

复合益生菌对肉鸡生长性能、肉品质、免疫功能及抗氧化能力的影响

  • 孙盼平 ,
  • 李凤华 ,
  • 段木春 ,
  • 刘璇 ,
  • 张利环 , *
展开
  • 山西农业大学生命科学学院, 太谷 030801
*张利环,教授,硕士生导师,E-mail:

孙盼平(2001—),女,山西运城人,硕士研究生,从事动物营养研究。E-mail:

Office editor: 陈燕

收稿日期: 2025-10-11

  网络出版日期: 2026-04-14

基金资助

山西省重点研发计划项目(201803D221023-2)

山西农业大学科技创新提升工程项目(CXGC202402)

山西农业大学科技创新基金项目(2016ZZ07)

收起

Effects of Compound Probiotics on Growth Performance, Meat Quality, Immune Function and Antioxidant Capacity of Broilers

  • SUN Panping ,
  • LI Fenghua ,
  • DUAN Muchun ,
  • LIU Xuan ,
  • ZHANG Lihuan , *
Expand
  • College of Life Sciences, Shanxi Agricultural University, Taigu 030801, China
*professor, E-mail:

Received date: 2025-10-11

  Online published: 2026-04-14

Fold

摘要

本试验旨在探讨不同比例配制的复合益生菌对肉鸡生长性能、肉品质、免疫功能及抗氧化能力的影响。选取400只健康状况良好的1日龄雄性黄麻肉鸡,随机分为4个组,每组包含5个重复,每个重复20只肉鸡。对照组肉鸡正常饮水,试验组在饮用水中添加1%的复合益生菌,3个试验组的复合益生菌分别由干酪乳杆菌、嗜酸乳杆菌和双歧杆菌按照2∶1∶1(益生菌Ⅰ组)、1∶2∶1(益生菌Ⅱ组)和1∶1∶2(益生菌Ⅲ组)的比例配制而成。试验期42 d,分为1~21日龄和22~42日龄2个阶段。结果表明:1)3个试验组肉鸡在1~21日龄、22~42日龄和1~42日龄的平均日增重均显著高于对照组(P<0.05)。2)与对照组相比,在21日龄时,3个试验组肉鸡血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)、碱性磷酸酶(ALP)、超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性及免疫球蛋白A(IgA)、免疫球蛋白G(IgG)和白细胞介素-10(IL-10)含量与总抗氧化能力(T-AOC)显著提高(P<0.05),同时血清白蛋白(ALB)、甘油三酯(TG)、尿酸(UA)和丙二醛(MDA)含量显著降低(P<0.05);在42日龄时,3个试验组血清IgA和IgG含量及SOD活性与T-AOC显著提高(P<0.05),同时血清ALB和TG含量及ALP活性均显著降低(P<0.05)。3)3个试验组之间,在21日龄时,益生菌Ⅲ组胸腺指数显著高于益生菌Ⅰ组和Ⅱ组(P<0.05),益生菌Ⅰ组血清IgA含量显著高于益生菌Ⅱ组和Ⅲ组(P<0.05),益生菌Ⅲ组血清SOD活性显著高于益生菌Ⅱ组(P<0.05);在42日龄时,益生菌Ⅱ组血清ALP活性及UA含量显著低于益生菌Ⅰ组和Ⅲ组(P<0.05),益生菌Ⅲ组血清ALT和AST活性显著低于益生菌Ⅰ组和Ⅱ组(P<0.05),益生菌Ⅱ组和Ⅲ组血清IgG含量与SOD、GSH-Px活性及T-AOC均显著高于益生菌Ⅰ组(P<0.05)。综上所述,由干酪乳杆菌、嗜酸乳杆菌与双歧杆菌按不同比例配制的复合益生菌均可促进肉鸡的生长,提高机体免疫功能和抗氧化能力;其中,以干酪乳杆菌、嗜酸乳杆菌和双歧杆菌按照1∶1∶2比例配制的复合益生菌使用效果最佳。

关键词： 益生菌; 肉鸡; 生长性能; 免疫功能; 抗氧化能力

本文引用格式

孙盼平 , 李凤华 , 段木春 , 刘璇 , 张利环 . 复合益生菌对肉鸡生长性能、肉品质、免疫功能及抗氧化能力的影响[J]. 动物营养学报, 2026 , 38(4) : 2599 -2610 . DOI: 10.12418/CJAN2026.209

Abstract

This experiment aimed to investigate the effects of compound probiotics formulated with different ratios on growth performance, meat quality, immune function and antioxidant capacity of broilers. A total of 400 healthy one-day-old male yellow-feathered broilers were randomly assigned to 4 groups with 5 replicates per group, and 20 broilers per replicate. Control group received normal drinking water, while the three experiment groups were supplemented with 1% compound probiotics in their drinking water. The probiotics consisted of Lacticaseibacillus casei, Lactobacillus acidophilus, and Bifidobacterium mixed in ratios of 2∶1∶1 (probiotics Ⅰ group), 1∶2∶1 (probiotics Ⅱ group), and 1∶1∶2 (probiotics Ⅲ group). The 42-day trial was divided into two phases: 1 to 21 days of age and 22 to 42 days of age. The results showed as follows: 1) average daily gain during 1 to 21 days of age, 22 to 42 days of age, and 1 to 42 days of age was significantly higher in the three experiment groups compared with the control group (P<0.05). 2) At 21 days of age, compared with the control group, serum activities of alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST), alkaline phosphatase (ALP), superoxide dismutase (SOD) and glutathione peroxidase (GSH-Px), and serum contents of immunoglobulin A (IgA), immunoglobulin G (IgG), interleukin-10 (IL-10), and total antioxidant capacity (T-AOC) in the three experiment groups were significantly increased (P<0.05), while serum levels of albumin (ALB), triglycerides (TG), uric acid (UA) and malondialdehyde (MDA) in the three experiment groups were significantly reduced (P<0.05). At 42 days of age, compared with the control group, serum contents of IgA and IgG, SOD activity and T-AOC in the three experiment groups remained significantly increased (P<0.05), whereas serum ALB and TG contents and ALP activity were significantly reduced (P<0.05). 3) Among the three experiment groups at 21 days, the thymus index was significantly higher in probiotics Ⅲ group compared with probiotics Ⅰ and Ⅱ groups (P<0.05), serum IgA content was significantly higher in probiotics Ⅰ group than in probiotics Ⅱ and Ⅲ groups (P<0.05), and serum SOD activity was significantly higher in probiotics Ⅲ group than in probiotics Ⅱ group (P<0.05). At 42 days, serum ALP activity and UA content were significantly lower in probiotics Ⅱ group than in probiotics Ⅰ and Ⅲ groups (P<0.05), serum ALT and AST activities were significantly lower in probiotics Ⅲ group than in probiotics Ⅰ and Ⅱ groups (P<0.05), and serum IgG content, SOD and GSH-Px activities and T-AOC were significantly higher in probiotics Ⅱ and Ⅲ groups than in probiotics Ⅰ group (P<0.05). In conclusion, compound probiotics containing Lacticaseibacillus casei, Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium in different ratios promote growth, enhance immune function and improve antioxidant capacity in broilers. Among the tested formulations, the 1∶1∶2 ratio exhibits the most favorable overall effects.

Key words： compound probiotics; broilers; growth performance; immune function; antioxidant capacity

禽肉是全球最主要的动物源性蛋白质来源之一[1]。随着消费者需求的不断增长,养殖业对肉鸡的生产也有了更高的要求。益生菌作为新型绿色无污染的饲料添加剂,因其良好的应用效果,在家禽养殖业生产中被普遍应用[2]。因此,深入研究益生菌对肉鸡的作用有助于为发挥益生菌最大效用价值提供理论参考。研究表明,益生菌可通过调节肉鸡肠道菌群结构、促进肠道内短链脂肪酸(SCFAs)生成,并改善肉鸡对营养物质利用效率,进而维持和改善机体健康状态[3]。嗜酸乳杆菌和干酪乳杆菌等乳酸杆菌属的成员能够在动物肠道内定植,通过产生SCFAs等代谢产物来改善肠道环境,促进动物生长;而双歧杆菌能够降解肠黏膜上皮细胞中的复杂多糖,这一过程可以竞争性阻断致病菌及其毒素与肠道受体的结合,有助于维持肠道菌群的平衡与稳定[4]。本课题组前期研究也发现,干酪乳杆菌与乳双歧杆菌通过协作可增强肉鸡肠道消化酶活性,提高机体营养物质吸收效率[5]。此外,已有研究证实,多个益生菌的联合作用效果比单个益生菌的作用效果更好[6]。然而,由于国内益生菌产品种类繁杂且标准体系尚不完善,其在动物生产中的应用效果仍有待提升。因此,本试验旨在探讨嗜酸乳杆菌、干酪乳杆菌和双歧杆菌以不同比例配制的复合益生菌对黄麻肉鸡生长性能、肉品质、免疫功能及抗氧化能力的影响,并确定复合益生菌的最佳配制比例,以期为益生菌在家禽生产中应用提供科学参考。

1 材料与方法

1.1 试验材料

试验所用干酪乳杆菌(LC-12)、嗜酸乳杆菌(JYLA-16)和双歧杆菌(JYBR-190)冻干益生菌粉均购自陕西瑞茂生物科技有限责任公司,经测定,上述菌株对应的活菌数分别为3.0×109、4.4×109和4.2×109 CFU/g。

1.2 试验设计

动物试验方案通过了山西农业大学实验动物伦理委员会的审查(批准编号:SXAU-EAW-2021C.YZ.002013001)。选取400只健康状况良好的1日龄雄性黄麻肉鸡,随机分为4个组,每组包含5个重复,每个重复20只肉鸡。对照组肉鸡正常饮水,试验组在饮用水中添加1%的复合益生菌(1 kg水添加10 g复合益生菌),3个试验组的复合益生菌分别由干酪乳杆菌、嗜酸乳杆菌和双歧杆菌按照2∶1∶1(益生菌Ⅰ组)、1∶2∶1(益生菌Ⅱ组)和1∶1∶2(益生菌Ⅲ组)的比例配制而成。试验期42 d,分为1~21日龄和22~42日龄2个阶段。基础饲粮参考NRC(1994)配制而成,其组成及营养水平见表1。
表1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of basic diets (air-dry basis) %

项目
Items		 1~21日龄
1 to 21
days of age		 22~42日龄
22 to 42
days of age
原料Ingredients
玉米Corn 56.49 61.42
大豆油Soybean oil 2.22 3.00
豆粕Soybean meal 30.24 25.30
棉籽粕Cottonseed meal 5.00 5.00
鱼粉Fish meal 2.43 1.98
磷酸氢钙CaHPO4 1.60 1.39
石粉Limestone 1.16 1.10
食盐NaCl 0.30 0.35
预混料Premix1) 0.22 0.22
胆碱Choline 0.19 0.19
蛋氨酸Met 0.15 0.05
合计Total 100.00 100.00
营养水平Nutrient levels2)
代谢能ME/(MJ/kg) 12.15 12.54
粗蛋白质CP 21.42 20.46
赖氨酸Lys 1.22 1.18
蛋氨酸+胱氨酸Met+Cys 0.71 0.69
钙Ca 1.01 1.04
总磷TP 0.62 0.60
有效磷AP 0.47 0.41

1)预混料为每千克饲粮提供 Premix provided the following per kg of diets:VA 12 000 IU,VD3 3 000 IU,VE 30 IU,VK3 1 mg,VB1 2 mg,VB12 0.01 mg,VB2 6 mg,烟酸 niacin 30 mg,泛酸 pantothenic acid 9 mg,生物素 biotin 0.1 mg,叶酸 folic acid 0.3 mg,吡哆醇 pyridoxine 5 mg,Fe 80 mg,Zn 80 mg,Mn 80 mg,Cu 8 mg,I 0.35 mg,Se 0.15 mg。

2)粗蛋白质(GB/T 6432—2018)、钙(GB/T 6436—2018)、总磷(GB/T 6437—2018)及氨基酸(GB/T 18246—2019)为实测值,其余参考《中国饲料成分及营养价值表(2020年第31版)》计算得出。CP (GB/T 6432—2018), Ca (GB/T 6436—2018), TP (GB/T 6437—2018) and amino acids (GB/T 18246—2019) were measured values, while the others were calculated according to the Tables of Feed Composition and Nutritive Values in China (31st edition, 2020).

1.3 饲养管理

饲养试验在山西农业大学生命科学学院动物房进行。所有肉鸡均采用3层立笼式饲养模式,严格按照规定程序进行疫苗接种,每天定时饲喂,确保肉鸡可自由采食和饮水。鸡舍内初始温度设定为33 ℃,随后每天下调1 ℃,待温度逐步降至23 ℃后维持恒定。

1.4 样品收集

在21和42日龄,每组随机选取10只肉鸡(每个重复2只),通过翅下静脉采血,随后采用戊巴比妥钠(50 mg/kg BW)麻醉并解剖。采集的血液在4 ℃条件下倾斜放置过夜,然后经低温1 006×g离心20 min,得到血清并置于-80 ℃待测。

1.5 指标测定及方法

1.5.1 生长性能

在1、21和42日龄,经过12 h的禁食后,以每个重复为单位对肉鸡称重,计算平均日增重(ADG);试验期间,以重复为单位统计采食量,计算平均日采食量(ADFI);根据ADG和ADFI计算料重比(F/G)。

1.5.2 肉品质

在42日龄,解剖肉鸡后取胸肌样本,按照Zhang等[7]的方法检测肉品质,包括pH45 min、pH24 h、肌内脂肪(IMF)含量、滴水损失和蒸煮损失。

1.5.3 器官指数

在21和42日龄,解剖肉鸡后取器官(肝脏、脾脏、法氏囊和胸腺)并称重,根据以下公式计算器官指数:
器官指数(%)=(器官重量/屠宰前体重)×100。

1.5.4 血清生化指标

血清天冬氨酸氨基转移酶(AST)、丙氨酸氨基转移酶(ALT)和碱性磷酸酶(ALP)活性以及尿酸(UA)、白蛋白(ALB)、甘油三酯(TG)、葡萄糖(GLU)含量均由全自动生化分析仪测定。

1.5.5 血清免疫和抗氧化指标

试验测定的血清免疫指标包括免疫球蛋白A(IgA)、免疫球蛋白G(IgG)、白细胞介素-2(IL-2)和白细胞介素-10(IL-10)含量,血清抗氧化指标包括总抗氧化能力(T-AOC)和丙二醛(MDA)含量以及超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化酶(GSH-Px)活性。这些指标均通过试剂盒(上海酶联生物科技有限公司)测定,检测流程按照试剂盒说明书进行。

1.6 数据统计分析

试验原始数据由Excel 2019整理后,通过SPSS 26.0统计软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA),方差分析显著者使用Duncan氏法进行组间多重比较,结果以平均值和均值标准误表示,P<0.05为差异显著。

2 结果

2.1 复合益生菌对肉鸡生长性能的影响

由表2可知,在1~21日龄、22~42日龄和1~42日龄,3个试验组肉鸡ADG均显著高于对照组(P<0.05),但3个试验组间ADG无显著差异(P>0.05);而各组ADFI和F/G均未表现出显著差异(P>0.05)。
表2 复合益生菌对肉鸡生长性能的影响

Table 2 Effects of compound probiotics on growth performance of broilers

项目
Items		 对照组
Control
group		 益生菌Ⅰ组
Probiotics Ⅰ
group		 益生菌Ⅱ组
Probiotics Ⅱ
group		 益生菌Ⅲ组
Probiotics Ⅲ
group		 均值
标准误
SEM		 P值
P-value
1~21日龄1 to 21 days of age
平均日增重ADG/g 20.75b 22.08a 22.68a 22.73a 0.252 0.006
平均日采食量ADFI/g 40.85 40.52 40.84 41.61 0.605 0.943
料重比F/G 1.97 1.84 1.80 1.83 0.030 0.167
22~42日龄22 to 42 days of age
平均日增重ADG/g 48.82b 53.89a 52.47a 52.60a 0.667 0.028
平均日采食量ADFI/g 98.92 100.14 99.41 100.34 1.094 0.966
料重比F/G 2.03 1.87 1.89 1.91 0.028 0.180
1~42日龄1 to 42 days of age
平均日增重ADG/g 34.79b 37.99a 37.58a 37.68a 0.389 0.003
平均日采食量ADFI/g 69.88 70.33 70.13 71.03 0.576 0.922
料重比F/G 2.01 1.85 1.87 1.89 0.023 0.054

同行数据肩标不同小写字母表示差异显著(P<0.05),相同或无字母表示差异不显著(P>0.05)。下表同。

In the same row, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with the same or no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05). The same as below.

2.2 复合益生菌对肉鸡肉品质的影响

由表3可知,各组间肉鸡胸肌的pH45 min、pH24 h、滴水损失、蒸煮损失和肌内脂肪含量均未表现出显著差异(P>0.05)。
表3 复合益生菌对肉鸡肉品质的影响

Table 3 Effects of compound probiotics on meat quality of broilers

项目
Items		 对照组
Control
group		 益生菌Ⅰ组
Probiotics Ⅰ
group		 益生菌Ⅱ组
Probiotics Ⅱ
group		 益生菌Ⅲ组
Probiotics Ⅲ
group		 均值
标准误
SEM		 P值
P-value
pH45 min 6.19 5.96 6.09 6.15 0.080 0.773
pH24 h 5.79 5.80 5.69 5.72 0.058 0.902
滴水损失Drip loss/% 2.52 2.58 3.46 3.26 0.241 0.422
蒸煮损失Cooking loss/% 7.50 9.27 7.79 7.44 0.315 0.131
肌内脂肪含量
Intramuscular fat content/%		 1.01 1.65 1.30 1.07 0.126 0.264

2.3 复合益生菌对肉鸡器官指数的影响

由表4可知,在21日龄时,益生菌Ⅰ组和Ⅲ组肝脏指数显著低于益生菌Ⅱ组(P<0.05),益生菌Ⅲ组胸腺指数显著高于益生菌Ⅰ组、Ⅱ组和对照组(P<0.05);在42日龄时,各组器官指数未表现出显著差异(P>0.05)。
表4 复合益生菌对肉鸡器官指数的影响

Table 4 Effects of compound probiotics on organ indexes of broilers %

项目
Items		 对照组
Control
group		 益生菌Ⅰ组
Probiotics Ⅰ
group		 益生菌Ⅱ组
Probiotics Ⅱ
group		 益生菌Ⅲ组
Probiotics Ⅲ
group		 均值
标准误
SEM		 P值
P-value
21日龄21 days of age
肝脏指数Liver index 3.26ab 2.82b 3.66a 2.96b 0.117 0.034
胸腺指数Thymus index 0.71b 0.64b 0.79b 0.99a 0.039 0.001
脾脏指数Spleen index 0.13 0.13 0.21 0.15 0.017 0.280
法氏囊指数Bursa of Fabricius index 0.36 0.34 0.33 0.29 0.012 0.288
42日龄42 days of age
肝脏指数Liver index 2.10 2.81 2.61 2.29 0.128 0.200
胸腺指数Thymus index 0.53 0.75 0.64 0.61 0.041 0.283
脾脏指数Spleen index 0.13 0.12 0.14 0.15 0.007 0.460
法氏囊指数Bursa of Fabricius index 0.20 0.26 0.24 0.19 0.017 0.356

2.4 复合益生菌对肉鸡血清生化指标的影响

由表5可知,在21日龄时,与对照组相比,3个试验组肉鸡血清ALT、AST和ALP活性显著提高(P<0.05),同时血清ALB、TG和UA含量显著降低(P<0.05);仅益生菌Ⅱ组血清GLU含量显著降低(P<0.05)。在3个试验组之间,益生菌Ⅱ组的血清ALT和AST活性显著高于益生菌Ⅰ组和Ⅲ组(P<0.05),而GLU含量显著低于益生菌Ⅰ组和Ⅲ组(P<0.05);益生菌Ⅲ组血清ALP活性显著高于益生菌Ⅰ组和Ⅱ组(P<0.05),而血清TG含量显著低于益生菌Ⅰ组和Ⅱ组(P<0.05)。
表5 复合益生菌对肉鸡血清生化指标的影响

Table 5 Effects of compound probiotics on serum biochemical indexes of broilers

项目
Items		 对照组
Control
group		 益生菌Ⅰ组
Probiotics Ⅰ
group		 益生菌Ⅱ组
Probiotics Ⅱ
group		 益生菌Ⅲ组
Probiotics Ⅲ
group		 均值
标准误
SEM		 P值
P-value
21日龄21 days of age
丙氨酸氨基转移酶ALT/(U/L) 88.90d 110.64b 146.56a 95.78c 3.577 <0.001
天冬氨酸氨基转移酶AST/(U/L) 190.09d 253.90b 324.90a 205.30c 8.416 <0.001
白蛋白ALB/(g/L) 17.63a 16.25b 16.53b 16.15b 0.165 0.003
碱性磷酸酶ALP/(U/L) 552.51c 1 939.72b 1 678.47b 2 554.99a 118.329 <0.001
甘油三酯TG/(mmoL/L) 1.04a 0.98b 0.98b 0.92c 0.011 0.001
葡萄糖GLU/(mmoL/L) 13.66a 13.82a 12.38b 13.82a 0.166 0.002
尿酸UA/(mmoL/L) 0.25a 0.15b 0.19b 0.19b 0.009 0.001
42日龄42 days of age
丙氨酸氨基转移酶ALT/(U/L) 94.10b 90.57c 101.53a 79.99d 1.268 <0.001
天冬氨酸氨基转移酶AST/(U/L) 193.22a 192.25a 206.40a 174.22b 3.011 0.001
白蛋白ALB/(g/L) 19.72a 18.21bc 17.61c 18.66b 0.206 0.001
碱性磷酸酶ALP/(U/L) 1 986.15a 1 564.17c 759.17d 1 941.90b 78.944 <0.001
甘油三酯TG/(mmoL/L) 1.35a 0.92d 1.01c 1.17b 0.026 <0.001
葡萄糖GLU/(mmoL/L) 15.63a 13.89b 15.94a 15.15a 0.217 0.002
尿酸UA/(mmoL/L) 0.22b 0.25a 0.18d 0.21c 0.004 <0.001
由表5可知,在42日龄时,与对照组相比,3个试验组血清ALB和TG含量及ALP活性均显著降低(P<0.05);益生菌Ⅰ组和Ⅲ组血清ALT活性显著降低(P<0.05),益生菌Ⅱ组ALT活性显著提高(P<0.05);益生菌Ⅲ组血清AST活性显著降低(P<0.05);益生菌Ⅰ组血清GLU含量显著降低(P<0.05);益生菌Ⅰ组血清UA含量显著提高(P<0.05),益生菌Ⅱ组和Ⅲ组UA含量显著降低(P<0.05)。在3个试验组之间,益生菌Ⅰ组血清TG和GLU含量显著低于益生菌Ⅱ组和Ⅲ组(P<0.05);益生菌Ⅱ组血清ALP活性及UA含量显著低于益生菌Ⅰ组和Ⅲ组(P<0.05);益生菌Ⅲ组血清ALT和AST活性显著低于益生菌Ⅰ组和Ⅱ组(P<0.05),而血清ALB含量显著高于益生菌Ⅱ组(P<0.05)。

2.5 复合益生菌对肉鸡血清免疫指标的影响

由表6可知,在21日龄时,与对照组相比,3个试验组血清IgA、IgG和IL-10含量均显著提高(P<0.05);益生菌Ⅲ组血清IL-2含量显著提高(P<0.05),而益生菌Ⅰ组与Ⅱ组血清IL-2含量则显著降低(P<0.05)。在3个试验组之间,益生菌Ⅰ组血清IgA含量显著高于益生菌Ⅱ组和Ⅲ组(P<0.05),益生菌Ⅰ组和Ⅱ组血清IL-2含量显著低于益生菌Ⅲ组(P<0.05)。
表6 复合益生菌对肉鸡血清免疫指标的影响

Table 6 Effects of compound probiotics on serum immune indexes of broilers

项目
Items		 对照组
Control
group		 益生菌Ⅰ组
Probiotics Ⅰ
group		 益生菌Ⅱ组
Probiotics Ⅱ
group		 益生菌Ⅲ组
Probiotics Ⅲ
group		 均值
标准误
SEM		 P值
P-value
21日龄21 days of age
免疫球蛋白A IgA/(μg/mL) 415.07d 546.54a 523.76b 465.71c 12.032 <0.001
免疫球蛋白G IgG/(μg/mL) 2 487.08b 3 329.07a 3 129.50a 3 328.57a 95.594 <0.001
白细胞介素-2 IL-2/(pg/mL) 383.66b 321.20c 345.17c 414.74a 9.249 <0.001
白细胞介素-10 IL-10/(pg/mL) 101.81b 116.62a 112.81a 119.04a 1.997 0.001
42日龄42 days of age
免疫球蛋白A IgA/(μg/mL) 394.72c 556.70a 533.86a 460.62b 15.437 <0.001
免疫球蛋白G IgG/(μg/mL) 2 464.31c 2 806.20b 3 557.11a 3 602.32a 116.74 <0.001
白细胞介素-2 IL-2/(pg/mL) 451.62a 352.23b 450.86a 358.90b 13.094 <0.001
白细胞介素-10 IL-10/(pg/mL) 113.27c 124.46ab 118.21bc 129.49a 2.155 0.011
由表6可知,在42日龄时,与对照组相比,3个试验组肉鸡IgA和IgG含量显著提高(P<0.05);同时,益生菌Ⅰ组与Ⅲ组血清IL-2含量显著降低(P<0.05),血清IL-10含量显著提高(P<0.05)。在3个试验组之间,益生菌Ⅰ组和Ⅱ组血清IgA含量显著高于益生菌Ⅲ组(P<0.05),而益生菌Ⅱ组和Ⅲ组血清IgG含量则显著高于益生菌Ⅰ组(P<0.05),益生菌Ⅰ组和Ⅲ组血清IL-2含量显著低于益生菌Ⅱ组(P<0.05),而益生菌Ⅱ组血清IL-10含量显著低于益生菌Ⅲ组(P<0.05)。

2.6 复合益生菌对肉鸡血清抗氧化指标的影响

由表7可知,在21日龄时,与对照组相比,3个试验组血清SOD、GSH-Px活性及T-AOC显著提高(P<0.05),而血清MDA含量则显著降低(P<0.05)。在3个试验组之间,益生菌Ⅲ组血清SOD活性显著高于益生菌Ⅱ组(P<0.05)。
表7 复合益生菌对肉鸡血清抗氧化指标的影响

Table 7 Effects of compound probiotics on serum antioxidant indexes of broilers

项目
Items		 对照组
Control
group		 益生菌Ⅰ组
Probiotics Ⅰ
group		 益生菌Ⅱ组
Probiotics Ⅱ
group		 益生菌Ⅲ组
Probiotics Ⅲ
group		 均值
标准误
SEM		 P值
P-value
21日龄21 days of age
超氧化物歧化酶SOD/(U/mL) 96.02c 147.97ab 144.25b 151.69a 5.227 <0.001
谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px/(U/mL) 193.66b 240.37a 239.35a 253.67a 5.630 <0.001
总抗氧化能力T-AOC/(U/mL) 32.03b 36.75a 37.68a 37.11a 0.844 0.014
丙二醛MDA/(nmoL/mL) 4.12a 1.93b 1.93b 1.93b 0.229 <0.001
42日龄42 days of age
超氧化物歧化酶SOD/(U/mL) 123.87c 147.79b 161.95a 168.46a 4.182 <0.001
谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px/(U/mL) 224.97b 224.51b 254.77a 265.43a 5.844 0.003
总抗氧化能力T-AOC/(U/mL) 35.46c 38.16b 42.51a 40.91a 0.730 <0.001
丙二醛MDA/(nmoL/mL) 3.51a 2.37b 2.81ab 2.37b 0.128 0.010
由表7可知,在42日龄时,与对照组相比,3个试验组血清SOD活性及T-AOC显著提高(P<0.05),益生菌Ⅱ与Ⅲ组血清GSH-Px活性显著提高(P<0.05),益生菌Ⅰ和Ⅲ组血清MDA含量显著降低(P<0.05)。在3个试验组之间,益生菌Ⅱ组和Ⅲ组血清SOD、GSH-Px活性及T-AOC均显著高于益生菌Ⅰ组(P<0.05)。

3 讨论

3.1 复合益生菌对肉鸡生长性能的影响

禽类的生长性能指标能够反映其生产的经济效益。研究表明,益生菌能够调节肉鸡肠道健康,增强营养物质的吸收效率,改善畜禽对饲料的利用效率和整体健康水平[8]。本试验发现,整个试验期间,与对照组相比,复合益生菌可提高肉鸡各阶段的ADG,但对ADFI和F/G没有影响,这与已有研究类似。Zhou等[9]同样发现,在饮水中补充1.0×108 CFU/mL的鸡乳杆菌可提高肉鸡ADG。Sun等[10]发现,饲粮补充3.6×108 CFU/kg的枯草芽孢杆菌可有效促进肉鸡的生长,如提高ADG,但对ADFI和F/G无影响。Vimon等[11]报道,饲粮补充活菌数为1.0×108 CFU/g的未胶囊化植物乳杆菌和微胶囊化植物乳杆菌均可有效增加肉鸡的ADG,同样也对ADFI无显著影响。而这一现象可能源于益生菌在肉鸡肠道定植后,会对抑菌素、消化酶的分泌产生刺激作用,从而改善肠道菌群环境,使肉鸡可以更高效地吸收饲粮中的营养物质,进而推动了其生长性能的提升[5]。

3.2 复合益生菌对肉鸡肉品质的影响

禽类的肌肉品质通常通过pH、滴水损失和蒸煮损失等理化指标进行评价[12]。pH的变化影响着肉质的嫩度、风味和持水性[13]。而持水力则是衡量肉质的重要指标,一般而言,滴水损失和蒸煮损失越低,肌肉的持水力越强[14]。本试验发现,各组胸肌的肉品质指标均无显著差异。前人研究显示,益生菌对肉鸡肉质的改善作用存在差异。张瑞琨等[15]研究发现,添加1.0×109 CFU/kg丁酸梭菌对肉鸡胸肌的滴水损失和pH均无显著影响。Al-Abdullatif等[16]研究表明,多菌株益生菌可显著降低肉鸡的蒸煮损失,提高肌肉的弹性和内聚性,从而改善肉的嫩度和持水性。Wang等[17]研究了枯草芽孢杆菌对爱拔益加肉鸡肉品质的影响,发现枯草芽孢杆菌可显著提高肉鸡胸肌的pH、改善肉色,并降低滴水损失与蒸煮损失。Liu等[18]研究指出,在罗斯308肉鸡饮水中添加植物乳杆菌可以提高胸肌的pH和肌内脂肪含量,降低滴水损失和蒸煮损失,推测胸肌肉品质的改善可能与益生菌对肠道菌群及其代谢物的调控密切相关。由此可见,益生菌对肉鸡胸肌肉品质的调控效果存在差异,推测这可能与益生菌菌种、使用剂量和方式及肉鸡品种等相关。

3.3 复合益生菌对肉鸡免疫器官指数的影响

畜禽的免疫器官指数可以反映饲养效果和免疫机能状况。一般而言,免疫器官指数增加,表明畜禽机体免疫功能增强,无论是细胞免疫功能还是体液免疫功能均有所改善。益生菌作为一种健康且绿色的抗生素替代品,可以对肉鸡产生积极影响。边智尧等[19]研究发现,补充6.0×1011 CFU/g的戊糖片球菌制剂可显著提高肉鸡法氏囊指数,但对脾脏指数无显著影响。李万军[20]报道,在基础饲粮中添加0.3%活菌数为5.0×109 CFU/g的益生菌混合物(由枯草芽孢杆菌、乳酸杆菌、酵母菌等及其代谢产物组成)有助于增强肉鸡免疫器官的发育,从而有效提高其指数水平。郭欣怡等[21]的研究表明,在基础饲粮中补充1.0 mL/kg活菌数为2.0×109 CFU/mL的复合益生菌(由乳酸菌、酵母菌和枯草芽孢杆菌组成)可显著提高肉鸡的免疫器官指数。本试验发现,与对照组相比,益生菌Ⅲ组可以提高21日龄肉鸡胸腺指数。益生菌对免疫器官的促进作用可能是由于益生菌在肠道发育繁殖时,生成对机体有积极作用的代谢物质,如维生素、氨基酸等,这些营养物质能对免疫器官的发育产生积极影响;此外,益生菌可能作为一类抗原物质,通过刺激机体免疫系统,促进免疫器官发育、生长和成熟[22]。

3.4 复合益生菌对肉鸡血清生化指标的影响

已知机体可通过分解TG来获取能量,而血清GLU含量能够反映机体的能量代谢状态。本试验中,与对照组相比,复合益生菌可显著降低肉鸡血清TG含量,而益生菌Ⅰ组和Ⅱ组则分别在不同阶段降低了血清GLU含量。这与Hossain等[23]的结果类似,其研究表明,通过饮水饲喂复合益生菌(由枯草芽孢杆菌、凝结芽孢杆菌和布拉酵母菌组成)可降低肉鸡TG和胆固醇含量。Dixit等[24]研究发现,补充益生菌可以有效降低人体血液GLU含量。有研究报道,益生菌可通过增加SCFAs的生成,抑制胆固醇合成酶活性,进而减少肝脏胆固醇或TG合成[25]。此外,SCFAs可调节肠道L细胞活性,促使其释放调节血液GLU的激素,从而改善血液GLU含量[26]。
ALB由肝脏合成,其血清含量可反映机体蛋白质代谢和氨基酸利用状况,其含量增加说明蛋白质合成比较活跃。UA作为蛋白质分解的终末产物,通过肾脏排出,其含量过高往往反映肝肾功能异常。添加益生菌能够改善机体蛋白质代谢功能。Wang等[27]发现,复合益生菌(由枯草芽孢杆菌、植物乳杆菌M8和酿酒酵母组成)可提高蛋鸡血清总蛋白含量,这可能与复合益生菌通过竞争性抑制有害菌生长,从而改善肠道环境并促进营养吸收与蛋白质代谢有关。而本试验发现,复合益生菌可显著降低21和42日龄肉鸡血清ALB含量以及21日龄肉鸡血清UA含量,这与熊志伟等[28]发现类似。肉鸡血清ALB含量下降可能与益生菌调节肠道微生态环境有关。益生菌代谢过程中产生的有机酸可降低肠道pH,从而促进有益菌生长以及机体对铁、维生素B族等营养物质的吸收利用,使机体代谢趋于稳定。肉鸡血清ALB含量的正常生理范围为13.0~21.4 g/L[29]。本试验中,尽管血清ALB含量略有下降,但其数值仍处于正常范围内。此外,益生菌可能通过影响嘌呤代谢过程而降低血清UA含量。研究表明,果糖代谢通过调控腺苷一磷酸脱氨酶(AMPD)活性,从而促进嘌呤降解并生成尿酸,而益生菌可能通过抑制该代谢通路来减缓UA的产生[30]。值得注意的是,本试验中,与对照组相比,益生菌Ⅰ组42日龄肉鸡血清UA含量显著升高,这或与蛋白质分解加速、合成受限以及氨基酸利用效率下降有关。
血清ALT、AST和ALP活性常被用于评估肝脏功能。肝细胞损伤可导致氨基转移酶进入血液,引起血清中酶的活性增加。胆汁淤积或细胞损伤时,细胞膜完整性被破坏,这可能导致血液中的ALP活性升高。研究发现,益生菌在维持肝脏健康方面具有潜在作用。例如,Samtiya等[31]研究发现,发酵乳杆菌能显著降低小鼠血清ALT和AST活性,有助于改善肝脏功能。Wang等[32]也指出,副干酪乳杆菌可降低小鼠血清ALT和AST活性,有效减轻肝脏炎症和损伤。而在本试验中,与对照组相比,21日龄肉鸡血清ALT和AST活性显著升高,尤其是益生菌Ⅱ组的最高,提示其可能出现轻度肝脏损伤,这种现象或与应激反应导致的肝细胞膜通透性增强及蛋白质合成受阻有关;而在42日龄,复合益生菌的血清ALT、AST和ALP活性出现下降,与对照组相比,益生菌Ⅰ组和Ⅲ组血清ALT、AST和ALP活性在一定程度上出现下降,其中,益生菌Ⅲ组ALT和AST活性最低,表明其可能有助于减轻肝细胞损伤并维持肝脏功能稳定。此外,ALP不仅来源于肝细胞,还广泛分布于骨骼等组织,肉鸡早期血清ALP含量升高还可能与骨骼发育旺盛有关[33]。

3.5 复合益生菌对肉鸡血清免疫指标的影响

血清免疫球蛋白含量常被用于评估机体的免疫功能。吴敏燕等[34]发现,基础饲粮中添加复合益生菌制剂(由丁酸梭菌和嗜酸乳杆菌组成)可提高罗斯308肉鸡血清IgA、IgG含量。李万军[35]研究表明,在基础饲粮中添加0.3%活菌数为5.0×109 CFU/g的复合益生菌(由乳酸杆菌、枯草芽孢杆菌、酵母菌等组成)可显著提高不同日龄大骨鸡外周血IgA、IgG含量。本试验结果同样显示,与对照组相比,复合益生菌能够显著提高肉鸡血清IgA、IgG含量,其中益生菌Ⅰ组综合作用效果最优,且益生菌Ⅲ组42日龄肉鸡IgG含量最高。这可能是由于益生菌发挥了免疫佐剂的调节作用,其特定成分能够促进宿主免疫细胞的活化,从而增强其非特异性免疫反应[36];同时可诱发机体产生多种细胞因子,增进T淋巴细胞的发育和成熟,其通过对各种淋巴因子的调控作用,增强免疫器官的功能并提升B细胞产生抗体的能力[37-38]。
细胞因子作为细胞间传递信号的重要分子,在免疫调节方面发挥重要作用。本试验发现,与对照组相比,复合益生菌能够显著提高血清IL-10含量,而降低42日龄肉鸡血清IL-2含量,其中益生菌Ⅰ组和Ⅲ组作用效果显著。其作用机制可能与抑制促炎细胞因子的表达和促进抗炎细胞因子的表达有关。IL-2作为促炎细胞因子,在刺激T淋巴细胞和B淋巴细胞以及自然杀伤细胞的增殖中起着重要作用,而IL-10是发挥抗炎作用的细胞因子,可以抑制对病原体的免疫反应,从而有效保护宿主。Chon等[39]研究发现,乳酸菌可通过激活巨噬细胞、上调IL-10的分泌并抑制促炎细胞因子产生,从而抑制炎症相关信号通路。Wang等[40]报道,添加拟杆菌衍生物异戊酸可增加肉鸡肠上皮细胞IL-10的表达水平,并通过激活小肠中的哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)/过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)/信号转导与转录激活因子3(STAT3)信号通路来促进IgA介导的免疫应答,从而增强免疫能力。Shehata等[41]研究表明,卵内接种枯草芽孢杆菌可更早地建立有益菌群并调节家禽的免疫系统,对病原体定植产生抑制效果,从而抑制肉鸡回肠促炎细胞因子IL-2的表达。因此,复合益生菌可通过抑制病原菌生长、调节免疫功能、增强肠道黏膜屏障功能和产生抗菌物质等多种机制,抑制促炎细胞因子的表达并提高抗炎细胞因子含量[42]。

3.6 复合益生菌对肉鸡血清抗氧化指标的影响

当动物机体内环境的稳态受到环境或自身因素干扰时,其发生氧化应激的概率显著升高。氧化应激会导致机体自由基过度生成,引发细胞膜脂质过氧化并生成MDA。而MDA具有毒害细胞膜和细胞器膜的作用,能使其正常结构和功能遭到破坏。为应对这种毒害作用,机体同样存在由SOD、GSH-Px和CAT等抗氧化酶组成的防御系统,以维持机体的氧化还原动态平衡[43]。T-AOC是评估机体总抗氧化水平的一个重要指标。Liu等[44]的研究表明,饲喂蜡样芽孢杆菌可显著提高肉鸡在21和42日龄的血清T-AOC和SOD活性,同时降低MDA含量。谢雯琴等[45]也研究发现,在基础饲粮中补充复合益生菌(由嗜酸乳杆菌、双歧杆菌、酵母菌、粪肠球菌组成)可有效提高肉鸡血清抗氧化酶活性并降低MDA含量,且该效果呈现剂量依赖性增强。Du等[46]研究表明,膳食补充合生元可通过直接激活核因子E2相关因子2(Nrf2)信号通路缓解热应激导致的血清SOD活性下降,同时降低MDA含量。本试验结果与上述研究结果类似,与对照组相比,复合益生菌能够提升肉鸡T-AOC及SOD、GSH-Px活性并降低MDA含量,其中益生菌Ⅲ组效果最佳。研究表明,益生菌可有效清除体内过量的活性氧,并激活Nrf2信号通路,进而调节Ⅱ期代谢酶(如SOD和GSH-Px)的活性[47]。此外,益生菌可通过其金属离子螯合能力[48],以及产生的过氧化氢酶和抗氧化代谢物,调节与活性氧生成相关的酶[49],从而刺激宿主抗氧化系统,并通过介导Nrf2-Kelch样环氧氯丙烷关联蛋白1(Keap1)-抗氧化反应元件(ARE)及丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)等信号通路,发挥抗氧化作用[50]。

4 结论

综上所述,由干酪乳杆菌、嗜酸乳杆菌与双歧杆菌按不同比例配制的复合益生菌均可促进肉鸡的生长,提高机体免疫功能和抗氧化能力;其中,以干酪乳杆菌、嗜酸乳杆菌与双歧杆菌以1∶1∶2比例配制的复合益生菌使用效果最佳。

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