RESEARCH PAPER

Effects of Gallocatechin Gallate on Growth Performance, Slaughter Performance, Antioxidant Capacity and Meat Quality of Hu Sheeps

  • XU Qian , 1, 2 ,
  • WU Xianfeng 1, 2 ,
  • LI Wenyang 1, 2 ,
  • LIU Yuan , 1, 2, *
Expand
  • 1 Institute of Animal Husbandry and Veterinary, Fujian Academy of Agricultural Science, Fuzhou 350013, China
  • 2 Fujian Key Laboratory of Animal Genetics and Breeding, Fuzhou 350013, China
* associate professor, E-mail:

Received date: 2025-06-08

  Online published: 2025-12-13

Abstract

This experiment aimed to investigate the effects of epigallocatechin gallate (EGCG) on growth performance, slaughter performance, antioxidant capacity and meat quality of Hu sheep. Fifty-four healthy 4-month-old Hu sheep with similar body weight [(23.50±3.65) kg] were randomly divided into 3 groups with 18 replicates per group and 1 sheep per replicate. The control group (group CON) was fed a basal diet, and the experimental groups were fed the basal diets supplemented with 300 (group L) and 1 000 mg/(sheep·d) (group H) EGCG, respectively. The pre-experimental period lasted for 10 days, and the experimental period lasted for 90 days. The results showed as follows: 1) there were no significant differences in growth performance and slaughter performance among all groups (P>0.05). 2) The longissimus dorsi cooking loss of group L was significantly lower than that of group CON and group H (P<0.01), and the longissimus dorsi meat color brightness and yellowing values of group H were significantly higher than those of group CON (P<0.05). 3) The activities of total superoxide dismutase and glutathione peroxidase in serum of group L were significantly higher than those of group CON (P<0.05), and the serum malondialdehyde content was significantly lower than that of group CON (P<0.05). The longissimus dorsi glutathione peroxidase activity of group L was significantly higher than that of group CON and group H (P<0.05), and the longissimus dorsi malondialdehyde content was significantly lower than that of group CON and group H (P<0.05). 4) The contents of pentadecenoic acid and γ-linolenic acid in longissimus dorsi of group H were significantly higher than those of group CON (P<0.05), and the contents of heptadecanoic acid and stearic acid in longissimus dorsi of group L were significantly lower than those of group CON (P<0.05). The contents of cysteine and methionine in longissimus dorsi of group H were significantly higher than those of group CON (P<0.05), and the longissimus dorsi alanine content of group H was significantly lower than that of group CON (P<0.05). In summary, dietary EGCG can improve the meat quality, antioxidant capacity and muscle fatty acid and amino acid composition of Hu sheep.

Cite this article

XU Qian , WU Xianfeng , LI Wenyang , LIU Yuan . Effects of Gallocatechin Gallate on Growth Performance, Slaughter Performance, Antioxidant Capacity and Meat Quality of Hu Sheeps[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2025 , 37(12) : 8441 -8451 . DOI: 10.12418/CJAN2025.688

随着社会经济水平的提升,消费者对羊肉的需求已由数量向质量转变,更加重视其口感、风味以及营养价值。相关研究指出,羊肉的品质受到多种因素的综合影响,这些因素涵盖品种选择、饲养管理策略以及营养调控措施等。在这些影响因素中,营养调控措施由于其操作的便捷性和改善品质的显著效果,已成为提升羊肉品质的重要技术手段[1]。多酚是一种从植物中提取的8 000多种天然化合物的大家族,其结构中存在1个酚环[2]。有研究显示,饲粮中补充多酚类化合物会增加肌肉中有益脂质和肌红蛋白的氧化稳定性,并降低丙二醛(MDA)的含量[3],对羊肉品质具有提升效果。
表没食子儿茶素没食子酸酯(epigallocatechin gallate,EGCG)是绿茶中含量最高且生物效应最强的一种茶多酚,是一种常见的天然多酚[4]。EGCG已被证明影响多种生理途径,包括脂质代谢和免疫功能,以及调节肠道微生物平衡[5]。近年来的研究表明,EGCG具有改善肌肉抗氧化性能及提高肉品风味的潜力。在小鼠上的研究表明,EGCG可提高肌肉抗氧化酶活性及相关抗氧化基因的表达,提升小鼠肌肉抗氧化性能[6];在猪上的研究表明,饲粮中添加茶多酚可显著提高肌肉抗氧化能力,降低脂质过氧化水平,从而改善猪肉贮藏的稳定性[7];在蛋鸭上的研究表明,饲粮中添加不同水平的EGCG可有效缓解热应激对蛋鸭生长性能、蛋品质和抗氧化能力的影响[8]。此外,EGCG已被证实能够提升育肥猪的饲料转化效率,并通过减少背膘厚度和降低滴水损失改善猪肉品质,同时EGCG还可增强血清脂质代谢和抗氧化能力[9]。这些研究为EGCG在畜禽生产中的应用提供了重要参考。
鉴于EGCG在单胃动物肉品质提升上的应用潜力,而反刍动物相较于单胃动物,有更复杂的瘤胃消化系统,目前EGCG在反刍动物中的研究较少。因此,本研究以湖羊为研究对象,旨在探讨饲粮中添加EGCG对其生长性能、屠宰性能、抗氧化能力及肉品质的影响,以期为EGCG在肉羊肉品质提升中的应用提供理论依据和技术支持。

1 材料与方法

1.1 试验材料

EGCG购自福建某生物技术公司,产品为粉红色粉末,纯度为98%。

1.2 试验设计

本研究所用试验动物及试验设计方案通过了福建省农业科学院畜牧兽医研究所实验动物伦理委员会的伦理审查,受理号为202402FJ017。
选择体重[(23.50±3.65) kg]相近、体况良好的4月龄湖羊公羊54只,采用单因素随机试验设计,随机分成3组,每组18个重复,每个重复1只羊。对照组(CON组)饲喂基础饲粮,试验组分别在基础饲粮中添加300(L组)和1 000 mg/(只·d)(H组)的EGCG。试验期100 d,其中预试期10 d,正试期90 d。基础饲粮参照《肉羊饲养标准》(NY/T 816—2021)[10]中肉用绵羊生长育肥期日增重0.1 kg营养需要量配制,其组成及营养水平见表1
表1 基础饲粮组成及营养水平(干物质基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (DM basis) %

项目Items 含量Content
原料Ingredients
豆粕Soybean meal 14.0
玉米Corn 21.0
花生秧Peanut seedling 17.0
杂交狼尾草Hybrid Penisetum 35.0
大蒜皮Garlic skin 10.5
食盐NaCl 0.5
预混料Premix1) 2.0
合计Total 100.0
营养水平Nutrient levels2)
总能GE/(MJ/kg) 15.63
代谢能ME/(MJ/kg) 9.06
粗灰分Ash 9.91
粗蛋白质CP 13.23
中性洗涤纤维NDF 46.07
酸性洗涤纤维ADF 25.69
钙Ca 0.98
总磷TP 0.54

1)预混料为每千克饲粮提供 The premix provided the following per kg of the diet:Cu 20.0 mg,Fe 80.0 mg,Mn 30.0 mg,Zn 80.0 mg,I 1 mg,Se 0.30 mg,Co 0.5 mg,VA 20 000 IU,VD 5 000 IU,VE 50.0 mg。

2)代谢能为计算值,其他均为实测值。ME was a calculated value, while the others were measured values.

1.3 饲养管理

本试验于2024年9—12月在福建省南平市延平区某湖羊养殖合作社进行,试验所用湖羊由该合作社养殖基地提供。试验前试验羊按养殖场正常免疫及驱虫。饲喂方案按照养殖场日常饲喂规定执行,每日07:00和15:00各饲喂1次。EGCG为每日晨饲前与适量精料拌匀先饲喂后再正常饲喂基础饲粮,对照组晨饲前也饲喂与试验组等量的空白精料,第2天晨饲前收集剩余饲粮并准确称量。

1.4 样品采集

试验结束后每组随机挑选5只羊进行空腹(禁食12 h,禁水2 h)采血约5 mL,静置2 h后,2 879×g离心10 min,收集血清,于-20 ℃保存,用于后续测定。采血后进行静脉放血屠宰,屠宰后快速采集约5 g背最长肌样品,液氮速冻,于-80 ℃保存,用于后续测定;采集约30 g背最长肌样品,用于蒸煮损失测定;沿肌纤维走向取约10 g长条形肉块,用于滴水损失测定。

1.5 指标测定

1.5.1 饲粮营养水平

代谢能(ME)参照《肉羊饲养标准》(NY/T 816—2021)[10]进行计算。干物质(DM)、粗灰分(Ash)、钙、总磷含量和总能(GE)参照课题组之前的方法[11]进行测定,粗蛋白质(CP)含量参照GB/T 6432—2018[12]的方法进行测定,中性洗涤纤维(NDF)和酸性洗涤纤维(ADF)含量采用Van Soest[13]的方法进行测定。

1.5.2 生长性能

记录试验羊初始体重(IBW)和终末体重(FBW),每日按栏称量干物质投喂量以及剩余饲粮量,并计算平均日采食量(ADFI)、干物质采食量(DMI)、平均日增重(ADG)和料重比(F/G)。

1.5.3 屠宰性能

屠宰后去除头、蹄、皮、内脏(不包括肾脏及周边脂肪)后对胴体进行称重,屠宰率为胴体重占宰前活重的百分率。在屠宰后的胴体中,GR值为胴体第12~13肋骨之间,用游标卡尺测量距背脊中线11 cm处的组织厚度;背脂厚为第12~13肋骨之间眼肌中部正上方脂肪厚度;第12~13肋骨间的横截面为眼肌面积,通过硫酸绘图纸精确描绘出眼肌横切面的轮廓,依据以下公式进行眼肌面积的计算:
眼肌面积(cm2)=眼肌高度×眼肌宽度×0.7。

1.5.4 肉品质指标

pH测定:利用便携式pH计,分别于屠宰后45 min和24 h测定背最长肌pH。
滴水损失测定:取胸腰椎结合处背最长肌,剔除表面结缔组织,沿着肌纤维走向将肉修整为长条状,悬挂于一次性透明塑料杯内,保证静止状态下不与杯壁接触,置于0~4 ℃冰箱内保存24 h,后取出肉块,用滤纸轻轻吸干表面水分,用精度0.001 g的天平测定悬挂前后的肉样重量,计算滴水损失,计算公式为:
滴水损失(%)=[(悬挂前肉样重量-悬挂后肉样重量)/悬挂前肉样重量]×100。
蒸煮损失测定:取约30 g背最长肌,剔除表面脂肪和结缔组织,将样品置于5号保鲜自封袋内,挤尽袋内气体后封口,放置恒温水浴锅内100 ℃水浴45 min,在室温下冷却20 min后,取出样品用滤纸吸干表面水分,用精度0.001 g的天平测定蒸煮前后肉样重量,计算公式为:
蒸煮损失(%)=[(蒸煮前肉样重量-蒸煮后肉样重量)/蒸煮前肉样重量]×100。
剪切力测定:将背最长肌置于保鲜自封袋中挤尽空气,80 ℃水浴1 h,室温放置20 min,用直径1.27 cm的圆形取样器沿肌纤维方向取中心部肉样,采用质构仪测定。
肉色测定:采用色差仪测定,将肉样修剪为3 cm厚放置在操作台上,随机选择3个点,每个点不同角度测定3次,取平均值。

1.5.5 抗氧化指标

采用比色法测定血清和背最长肌丙二醛含量及总超氧化物歧化酶(T-SOD)、过氧化氢酶(CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性,试剂盒购自南京建成生物工程研究所。

1.5.6 肌肉脂肪酸和氨基酸含量

参照《食品中脂肪酸的测定》(GB 5009.168—2016)[14]的方法测定肌肉中脂肪酸含量。
采用液相色谱-质谱联用技术测定肌肉中氨基酸含量,并统计甜味氨基酸、鲜味氨基酸、非必需氨基酸(NEAA)、必需氨基酸(EAA)和总氨基酸(TAA)含量,其中甜味氨基酸=甘氨酸+丙氨酸+丝氨酸+脯氨酸+赖氨酸+苏氨酸,鲜味氨基酸=天冬氨酸+谷氨酸+甘氨酸+丙氨酸+异亮氨酸[15]

1.6 数据统计分析

数据的初步整理和统计使用Excel 2021软件,初步统计数据再利用SPSS 26.0软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA),差异显著者应用Duncan氏法进行多重比较。结果以平均值和均值标准误(SEM)表示,P<0.05为差异显著,P>0.05为差异不显著。

2 结果

2.1 EGCG对湖羊生长性能的影响

EGCG对湖羊生长性能的影响见表2。结果显示,EGCG对湖羊终末体重、平均日采食量、干物质采食量、平均日增重和料重比均无显著影响(P>0.05)。
表2 EGCG对湖羊生长性能的影响

Table 2 Effects of EGCG on growth performance of Hu sheep

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
初始体重IBW/kg 22.86 24.75 22.81 0.760 0.508
终末体重FBW/kg 32.12 34.71 32.66 0.900 0.484
平均日采食量ADFI/(kg/d) 1.62 1.57 1.55 0.369 0.720
干物质采食量DMI/(g/d) 875.88 846.05 835.25 19.940 0.720
平均日增重ADG/(g/d) 102.90 110.64 109.46 3.236 0.611
料重比F/G 9.15 8.11 8.36 0.190 0.066

同行数据肩标不同小写字母表示差异显著(P<0.05),相同或无字母表示差异不显著(P>0.05)。下表同。

In the same row, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with the same or no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05). The same as below.

2.2 EGCG对湖羊屠宰性能的影响

EGCG对湖羊屠宰性能的影响见表3。结果显示,EGCG对湖羊宰前活重、胴体重、屠宰率、眼肌面积、GR值和背脂厚均无显著影响(P>0.05)。
表3 EGCG对湖羊屠宰性能的影响

Table 3 Effects of EGCG on slaughter performance of Hu sheep

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
宰前活重Live weight/kg 32.12 34.71 32.66 0.900 0.484
胴体重Carcass weight/kg 17.00 18.66 17.13 3.170 0.266
屠宰率Slaughter rate/% 52.93 53.76 52.45 5.110 0.365
眼肌面积Loin-eye area/cm2 11.35 11.12 11.20 0.352 0.970
GR值GR value 1.10 1.06 0.94 0.056 0.515
背脂厚Back-fat thickness/mm 0.38 0.41 0.35 0.022 0.561

2.3 EGCG对湖羊肉品质的影响

EGCG对湖羊肉品质的影响见表4。结果显示,EGCG对湖羊背最长肌剪切力、pH及滴水损失均无显著影响(P>0.05);L组背最长肌蒸煮损失显著低于CON组和H组(P<0.05),H组背最长肌肉色亮度(L*)和黄度(b*)值显著高于CON组(P<0.05)。
表4 EGCG对湖羊肉品质的影响

Table 4 Effects of EGCG on meat quality of Hu sheep

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
剪切力Shear force/N 36.36 33.82 34.96 0.501 0.112
pH45 min 6.41 6.23 6.20 0.061 0.331
pH24 h 5.57 5.63 5.62 0.013 0.162
滴水损失Drip loss/% 5.85 6.29 7.78 0.456 0.199
蒸煮损失Cooking loss/% 42.35a 38.75b 42.63a 0.629 0.007
肉色Meat color 亮度L* 34.09b 36.46ab 37.56a 0.613 0.047
红度a* 15.51 15.59 16.05 0.249 0.670
黄度b* 5.49b 5.89ab 6.58a 0.189 0.045

2.4 EGCG对湖羊血清和背最长肌抗氧化指标的影响

EGCG对湖羊血清抗氧化指标的影响见表5。结果显示,L组血清总超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶活性显著高于CON组(P<0.05),血清丙二醛含量显著低于CON组(P<0.05);EGCG对血清过氧化氢酶活性无显著影响(P>0.05)。
表5 EGCG对湖羊血清抗氧化指标的影响

Table 5 Effects of EGCG on serum antioxidant indexes of Hu sheep

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
丙二醛MDA/(nmol/mL) 6.36a 4.59b 5.54ab 1.056 0.039
总超氧化物歧化酶T-SOD/(U/mL) 122.34b 137.35a 131.87ab 9.789 0.041
过氧化氢酶CAT/(U/mL) 12.36 13.44 13.12 2.189 0.872
谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px/(U/mL) 237.55b 253.49a 245.33ab 21.110 0.039
EGCG对湖羊背最长肌抗氧化指标的影响见表6。结果显示,L组背最长肌谷胱甘肽过氧化物酶活性显著高于CON组和H组(P<0.05),背最长肌丙二醛含量显著低于CON组和H组(P<0.05);EGCG对背最长肌总超氧化物歧化酶和过氧化氢酶活性均无显著影响(P>0.05)。
表6 EGCG对湖羊背最长肌抗氧化指标的影响

Table 6 Effects of EGCG on longissimus dorsi antioxidant indexes of Hu sheep

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
丙二醛MDA (nmol/mg prot) 0.55a 0.41b 0.58a 0.097 0.048
总超氧化物歧化酶T-SOD/(U/mg prot) 110.53 121.27 108.27 15.258 0.084
过氧化氢酶CAT/(U/mg prot) 14.57 16.89 15.23 1.536 0.125
谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px/(U/mg prot) 198.24b 209.56a 188.98b 25.110 0.037

2.5 EGCG对湖羊背最长肌脂肪酸和氨基酸组成的影响

EGCG对湖羊背最长肌脂肪酸组成的影响见表7。结果显示,H组背最长肌十五烯酸和γ-亚麻酸含量显著高于CON组(P<0.05),L组背最长肌十七碳酸和硬脂酸含量显著低于CON组(P<0.05);EGCG对背最长肌其他脂肪酸含量均无显著影响(P>0.05)。
表7 EGCG对湖羊背最长肌脂肪酸组成的影响

Table 7 Effects of EGCG on composition of fatty acids in longissimus dorsi of Hu sheep μg/g

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
辛酸C8∶0 8.57 8.34 9.15 0.245 0.416
癸酸C10∶0 25.30 22.34 27.29 3.298 0.848
十一酸C11∶0 15.68 15.46 17.53 0.467 0.136
月桂酸C12∶0 23.74 17.07 21.05 2.578 0.603
十三碳酸C13∶0 8.67 8.37 8.36 0.210 0.820
肉豆蔻酸C14∶0 510.37 386.24 465.28 51.148 0.639
肉豆蔻烯酸C14∶1 24.87 17.87 20.67 2.361 0.510
十五烷酸C15∶0 44.18 31.64 50.76 4.784 0.270
十五烯酸C15∶1 0.25b 0.37ab 0.48a 0.036 0.033
棕榈酸C16∶0 5 259.08 3 747.66 5 343.23 389.110 0.204
棕榈油酸C16∶1 358.42 299.72 357.53 31.941 0.722
十七碳酸C17∶0 160.28a 98.97b 153.94a 11.840 0.048
硬脂酸C18∶0 3 448.48a 2 148.00b 2 949.47ab 220.758 0.048
油酸C18∶1n9c 8 169.98 8 128.87 8 719.84 764.940 0.947
反亚油酸C18∶2n6t 44.03 33.64 43.49 3.066 0.305
亚油酸C18∶2n6c 842.90 845.22 867.72 33.358 0.952
γ-亚麻酸C18∶3n6 14.16b 15.12b 18.20a 0.676 0.024
α-亚麻酸C18∶3n3 39.33 34.75 41.10 2.220 0.518
花生酸C20∶0 16.35 13.07 14.43 1.187 0.541
花生油酸C20∶1 12.62 11.30 13.05 1.000 0.785
二十碳二烯酸C20∶2 8.52 7.18 9.16 0.571 0.380
花生四烯酸甲酯C20∶4n6 32.09 33.69 33.01 0.612 0.599
二十一碳酸C21∶0 501.19 499.10 491.48 11.786 0.948
二十碳三烯酸C20∶3n6 1.35 1.41 0.94 0.121 0.236
二十碳五烯酸C20∶5n3 11.02 12.46 12.73 0.476 0.336
山嵛酸C22∶0 2.03 1.87 2.13 0.097 0.598
芥酸C22∶1n9 13.19 10.86 14.90 2.137 0.769
二十二碳二烯酸C22∶2 9.95 10.12 10.44 0.525 0.941
二十三碳酸C23∶0 56.83 55.09 52.69 1.299 0.472
二十二碳六烯酸C22∶6n3 (DHA) 10.27 9.88 7.79 0.512 0.093
木蜡酸C24∶0 1.21 1.39 1.06 0.106 0.466
二十四碳一烯酸C24∶1 1.40 1.63 1.37 0.080 0.391
EGCG对湖羊背最长肌氨基酸组成的影响见表8。结果显示,H组背最长肌胱氨酸和蛋氨酸含量显著高于CON组(P<0.05),H组背最长肌丙氨酸含量显著低于CON组(P<0.05);EGCG对背最长肌其他氨基酸含量均无显著影响(P>0.05)。
表8 EGCG对湖羊背最长肌氨基酸组成的影响

Table 8 Effects of EGCG on composition of amino acids in longissimus dorsi of Hu sheep μg/g

项目
Items
组别Groups SEM P
P-value
CON L H
必需氨基酸EAA
缬氨酸Val 10.533 10.476 10.148 0.093 0.195
亮氨酸Leu 14.291 15.268 14.080 0.299 0.237
异亮氨酸Ile 9.608 9.851 9.614 0.102 0.579
赖氨酸Lys 16.134 16.593 17.038 0.209 0.219
苏氨酸Thr 10.264 10.227 9.973 0.090 0.386
胱氨酸Cys 2.365b 2.278b 2.601a 0.052 0.017
苯丙氨酸Phe 8.963 9.194 8.971 0.080 0.437
色氨酸Trp 0.019 0.012 0.019 0.002 0.118
组氨酸His 7.643 7.755 7.705 0.083 0.876
蛋氨酸Met 0.399b 0.486b 1.001a 0.082 <0.001
非必需氨基酸NEAA
精氨酸Arg 11.296 11.630 11.696 0.126 0.412
丙氨酸Ala 11.690a 11.392a 10.991b 0.115 0.029
谷氨酸Glu 32.360 33.637 33.623 0.387 0.324
甘氨酸Gly 9.677 9.618 9.397 0.093 0.463
丝氨酸Ser 9.212 9.123 8.984 0.072 0.466
天冬氨酸Asp 16.547 17.560 18.196 0.353 0.159
酪氨酸Tyr 7.587 7.355 7.498 0.072 0.439
脯氨酸Pro 7.247 7.247 6.898 0.092 0.210
甜味氨基酸SAA 64.224 64.201 63.281 0.486 0.698
鲜味氨基酸DAA 79.882 82.059 81.821 0.787 0.499
必需氨基酸EAA 72.575 74.383 73.444 2.631 0.589
非必需氨基酸NEAA 113.260 115.318 114.989 3.754 0.681
总氨基酸TAA 185.835 189.701 188.433 6.057 0.624

3 讨论

3.1 EGCG对湖羊生长性能的影响

EGCG是茶多酚中含量最高且抗氧化等生物活性最强的化合物,多项研究表明,多酚类物质在动物生产中可用作促生长剂[16]。本试验结果显示,与对照组相比,EGCG添加组的湖羊终末体重、平均日采食量、干物质采食量、平均日增重和料重比均无显著差异。这一结果与反刍动物中多酚类物质的研究结论一致。吕芳等[17]研究显示,饲粮中添加0.04%茶多酚对育肥牛的生长性能没有显著影响;屈金涛[18]研究也显示,茶多酚对奶山羊的采食量无显著影响。值得注意的是,EGCG在单胃动物中的研究显示出与反刍动物不同的效果。刘冬等[7]研究显示,在生长育肥猪饲粮中添加400 mg/kg的茶多酚可以提高其生长性能;楼芳芳等[19]研究发现,EGCG能够显著降低育肥猪的料重比,提高生长性能。与单胃动物相比,反刍动物具有更复杂的消化系统和瘤胃发酵系统,酚类化合物的生物利用需先通过瘤胃发酵。目前,EGCG对瘤胃菌群、发酵及吸收的影响研究较少,不能排除酚类化合物的种类和用量所导致不同的结果,这需进一步进行研究。

3.2 EGCG对湖羊屠宰性能和肉品质的影响

屠宰性能是衡量动物产肉率的关键指标。本试验结果显示,EGCG未对湖羊屠宰性能产生显著影响,这与其他多酚类物质[20]和维生素E[21]等抗氧化添加剂在反刍动物上的研究结果一致。本研究结果显示,EGCG对肉品质的改善作用主要体现在蒸煮损失和肉色上,低剂量的EGCG可以显著降低蒸煮损失。蒸煮损失与肉的多汁性直接相关,有研究表明,多酚类物质可以通过抑制脂质氧化酶活性,减少细胞膜完整性损失,从而降低蒸煮损失[22]。此外,李立敏等[23]研究发现,茶多酚能够与肌原纤维蛋白结合,形成稳定的水合结构,提升羊肉的稳定性和保水性,这进一步支持本试验结果。肉色红度(a*)、L*和b*值是最直接反映肉品质的指标,色泽不好的肉直接影响消费者的购买欲。肉色主要与肌红蛋白的稳定性相关,本研究中,高剂量的EGCG可以显著提高肉色L*值,可能与EGCG促进肌红蛋白氧化稳定性增加有关。Dong等[24]研究表明,茶多酚能够提升肌红蛋白的稳定性,抑制血红素铁氧化并保持肌红蛋白的红色,从而保持肉色。

3.3 EGCG对湖羊抗氧化能力的影响

在肌肉组织中,总超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶和过氧化氢酶等抗氧化酶的活性对于屠宰后肉品质具有关键性作用。本研究显示,低剂量的EGCG可以显著降低湖羊血清和背最长肌丙二醛含量,同时显著提高血清总超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶活性及背最长肌谷胱甘肽过氧化物酶活性。这一结果与EGCG的化学特性紧密相关。Zhao等[25]研究指出,EGCG的酚羟基结构能够有效清除自由基,并通过核因子E2相关因子2(nuclear factor E2-related factor 2,Nrf2)/抗氧化反应元件(antioxidant response element,ARE)信号通路激活内源性抗氧化酶系统。低剂量的EGCG主要通过诱导产生少量促进细胞保护的信号转导途径所必需的活性氧(reactive oxygen species,ROS),进而起到抗氧化的作用[26]。Liu等[27]的研究揭示了植物多酚在降低羊肉中丙二醛含量、抑制脂肪氧化方面的显著作用,进而对羊肉品质的提升具有积极影响。先前的研究亦发现,EGCG能够提升热应激下肉鸡血清、肝脏和空肠中过氧化氢酶、超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶的活性[28-29]。屈金涛[18]的研究同样表明,茶多酚能够显著提升奶山羊血清总超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶活性,降低MDA含量。本研究结果表明,通过在饲粮中添加低剂量的EGCG,湖羊血清和背最长肌中过氧化氢酶和谷胱甘肽过氧化物酶活性提升,丙二醛含量降低,这表明湖羊的抗氧化能力得到了增强;高剂量的EGCG导致湖羊血清和背最长肌中抗氧化指标回落,这可能与EGCG的促氧化作用有关。研究表明,高剂量EGCG由于其自氧化作用产生过氧化氢,进而表现出促氧化作用,同时高剂量EGCG可将三价铁还原为二价铁,生成更有效的活性氧(包括羟基自由基),表现出间接的促氧化作用[30]。因此,EGCG在肉羊上的最佳使用剂量还需进一步研究。

3.4 EGCG对湖羊背最长肌脂肪酸和氨基酸含量的影响

羊肉的n-6/n-3脂肪酸比例较低,同时也是共轭亚油酸和亚麻酸及其衍生物的重要来源[31]。在反刍动物饲粮中添加抗氧化剂被认为是有效改变和改善肉类脂肪酸组成的策略。油酸和反式油酸能够有效降低人体内的胆固醇含量,对人体健康有益[32]。本研究结果表明,高剂量的EGCG能显著提高湖羊背最长肌γ-亚麻酸含量,背最长肌中含量最高的脂肪酸是油酸和硬脂酸,这与韩雪[33]的研究结果一致。十七碳酸和硬脂酸属于饱和脂肪酸(SFA),当人类摄入过多的SFA时,会增加血液中胆固醇含量,对人类健康构成威胁[34]。此外,SFA中的硬脂酸是羊肉膻味的主要来源,其含量越高,膻味越明显[35]。本研究结果表明,低剂量的EGCG可显著降低湖羊背最长肌硬脂酸和十七碳酸含量,表明EGCG在提升羊肉风味方面具有一定的作用。
在肉类食品中,氨基酸的组成及其含量对食品的营养价值具有决定性影响,特别是必需氨基酸含量直接关系到食品营养价值的高低[36]。在羊肉中,不同种类的氨基酸组成与肉品的风味特性及蛋白质的品质紧密相关,特别是含硫氨基酸以及特定的鲜味肽类,对肉品风味的积极贡献尤为显著[37]。本研究结果表明,低剂量的EGCG可显著提高湖羊背最长肌蛋氨酸和胱氨酸含量,表明EGCG能够增加背最长肌中含硫氨基酸含量,进而对肉品风味及蛋白质品质产生积极影响。

4 结论

饲粮中添加EGCG可改善湖羊肉品质、抗氧化能力以及肌肉脂肪酸和氨基酸组成。本试验条件下,建议饲粮中添加300 mg/(只·d)的EGCG。
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