Changes of Rumen Internal Environmental Parameters, Serum Biochemical Indexes and Back Hair Trace Element Contents of Wool-Eating Disorder Wapitis Induced by Low Protein Diet

MU Lihong; ZHAO Yue; TUO Youlong; ZHOU Xu; HAO Xinlong; ZHAO Xilai; Gulpiyemu·Abdulkaranmu; Supi·Saidi; YU Donghui; JIA Xiaowei; QIAN Wenxi; LI Zhipeng

doi:10.12418/CJAN2026.293

2026 , Vol. 38 >Issue 5: 3660 - 3669

DOI: https://doi.org/10.12418/CJAN2026.293

RESEARCH PAPER

Changes of Rumen Internal Environmental Parameters, Serum Biochemical Indexes and Back Hair Trace Element Contents of Wool-Eating Disorder Wapitis Induced by Low Protein Diet

MU Lihong ^,¹ ,
ZHAO Yue ¹ ,
TUO Youlong ¹ ,
ZHOU Xu ¹ ,
HAO Xinlong ¹ ,
ZHAO Xilai ¹ ,
Gulpiyemu·Abdulkaranmu ¹ ,
Supi·Saidi ¹ ,
YU Donghui ² ,
JIA Xiaowei ¹ ,
QIAN Wenxi ^,¹^,³^,^* ,
LI Zhipeng ^,⁴^,^*

Expand

¹ College of Animal Science and Technology, Tarim University, Aral 843300, China
² Animal Husbandry and Veterinary Station of Qiemo County, Bazhou, Xinjiang, Qiemo 841900, China
³ Key Laboratory of Animal Husbandry Science and Technology, Xinjiang Construction Corps, Aral 843300, China
⁴ College of Science and Technology, Jilin Agricultural University, Changchun 130118, China

*QIAN Wenxi, professor, E-mail: qianwenxizj@163.com;

LI Zhipeng, professor, E-mail: zhplicaas@163.com

Received date: 2025-10-22

Online published: 2026-05-14

Fold

Abstract

This study aimed to investigate the effects of low protein diet on rumen internal environment parameters, serum biochemical indexes and back hair trace element contents during the development of wool-eating disorder in Tarim wapitis, thereby providing a theoretical basis for the prevention of wool-eating disorder in wapitis. A total of 18 healthy adult female Tarim wapitis fitted with rumen cannulas were selected and randomly assigned to 3 groups with 6 replicate per group and 1 wapiti per replicate. The dietary crude protein (CP) levels of three groups were 14.2% (normal protein group, NP group), 7.19% (50% protein group, LP₅₀ group) and 4.47% (30% protein group, LP₃₀ group), respectively. Following a 90-day feeding trial, the results showed as follows: 1) the wapitis in NP group did not exhibit wool-eating symptoms. Compared with the LP₅₀ group, the required days to reach 40% of wool-eating area of wapitis of the LP₃₀ group was shortened by 21 days (P<0.05), and the required days to reach 60% of wool-eating area was shortened by 13 days (P<0.05). 2) Compared with the NP group, the contents of ammonia nitrogen (NH₃-N), microbial crude protein (MCP), acetic acid, propionic acid, butyric acid and total volatile fatty acids (TVFA) in rumen of LP₅₀ group and LP₃₀ group were significantly decreased (P<0.05). 3) Compared with the NP group, the serum urea nitrogen (UN) and total protein (TP) contents of LP₅₀ group and LP₃₀ group were significantly decreased (P<0.05), and the serum copper and zinc contents of LP₅₀ group and LP₃₀ group were significantly increased (P<0.05). 4) Compared with the NP group, the back hair manganese content of LP₅₀ group and LP₃₀ group was significantly decreased (P<0.05). In conclusion, the low protein diet triggers a cascade reaction of “rumen NH₃-N content lack→MCP synthesis reduce→serum UN and TP contents decrease”, leading to nitrogen metabolism disorder and protein synthesis disturbance, thereby inducing wool-eating disorder in wapitis. Additionally, protein deficiency may reduce the absorption or utilization efficiency of manganese, limiting the synthesis of sulfur-containing amino acids, thereby exacerbating the occurrence of wool-eating disorder in wapitis.

Key words： Tarim wapitis; wool-eating disorder; low protein diet; rumen internal environment; serum biochemical indexes

Cite this article

MU Lihong , ZHAO Yue , TUO Youlong , ZHOU Xu , HAO Xinlong , ZHAO Xilai , Gulpiyemu·Abdulkaranmu , Supi·Saidi , YU Donghui , JIA Xiaowei , QIAN Wenxi , LI Zhipeng . Changes of Rumen Internal Environmental Parameters, Serum Biochemical Indexes and Back Hair Trace Element Contents of Wool-Eating Disorder Wapitis Induced by Low Protein Diet[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2026 , 38(5) : 3660 -3669 . DOI: 10.12418/CJAN2026.293

马鹿作为新疆重点养殖的特色经济动物,约占全国马鹿存栏量的70%,是迄今新疆人工驯养、繁殖规模最大的野生动物,目前已普遍实现舍饲圈养^[1-2]。然而,从野生转为集约化养殖的模式转变,伴随生活环境、饲养管理方式及饲料种类的改变,对马鹿健康生长造成了显著的负面影响。其中,马鹿食毛癖尤为突出且发病率高,在冬季或春季换毛期的母马鹿和育成鹿中多见,且母马鹿症状表现更为严重^[3]。马鹿食毛癖不仅严重危害鹿群的健康,且食毛行为的发生易导致毛发在胃内形成毛球,引起消化道梗阻、生长迟缓、繁殖性能下降及幼鹿死亡率升高,从而造成严重的经济损失,严重制约了人工饲养马鹿的生产效率和发展前景^[4-5]。因此,有效控制马鹿食毛癖的发生,是当前马鹿养殖业中亟待解决的问题。

食毛癖的发生主要受营养、环境以及继发性疾病等因素影响。其中,营养缺乏是核心诱因,尤其是饲粮蛋白质和硫缺乏会导致含硫氨基酸的合成,从而引起食毛行为;维生素和微量元素(锰、铜、锌、钴等)的缺乏亦会加剧该症状^[3,6-7]。环境与饲养管理如饲养密度过大、圈舍卫生条件差等因素常成为诱发或加重食毛行为的因素^[8];而疥螨等体外寄生病虫病感染后不及时驱虫处理则会加重脱毛现象,从而促进食毛癖的发生^[9]。因此,蛋白质和硫的供给不足被视为马鹿食毛癖发生的关键营养因素^[10-12]。本试验拟在食毛癖高发期,通过设置针对性饲粮营养限制,研究探讨饲粮蛋白质和微量元素缺乏条件下,马鹿瘤胃内环境参数、血液生化指标及背毛微量元素含量的变化规律,为马鹿健康高效养殖和营养调控塔里木马鹿食毛癖提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

动物试验程序经塔里木大学科技伦理委员会批准(批准编号:PA20251104001)。采用完全随机试验设计,选择18只健康、体况良好并安装有瘤胃瘘管的雌性塔里木马鹿,随机分为3组,每组6个重复,每个重复1只。3组饲粮粗蛋白质(CP)水平分别为14.2%(正常蛋白质组,NP组)、7.19%(50%蛋白质组,LP₅₀组)和4.47%(30%蛋白质组,LP₃₀组)。观察并记录各组马鹿背部食毛面积达到0(未食毛期)、40%(中度食毛期)和60%(重度食毛期)时的天数,在各组最后1只马鹿背部食毛面积达到40%或60%时,整个组同时进行此阶段瘤胃液、血液样品和背毛的采集,进行各试验指标测定。

1.2 试验饲粮

饲粮配方参照《茸鹿生产学》^[13]和《新疆马鹿饲养技术》^[14]中马鹿营养需要进行设计,试验饲粮组成及营养水平见表1。饲粮精料主要包括玉米、麸皮、豆粕、食盐和添加剂等,通过调整精料、苜蓿、棉籽壳和稻秆水平调整饲粮CP水平,定量饲喂(平均日采食量为3.20 kg/d)。饲粮CP含量根据GB/T 6432—2018的方法测定,粗纤维(CF)含量根据GB/T 6434—2006的方法测定,钙(Ca)含量根据GB/T 6436—2018的方法测定,磷(P)含量根据GB/T 6437—2018的方法测定。

表1 试验饲粮组成及营养水平(风干基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis)

项目 Items	组别 Groups
项目 Items	NP	LP₅₀	LP₃₀
原料 Ingredients/(kg/d)
精料 Concentrate	1.20	1.20	1.00
苜蓿 Alfalfa	0.50	0.10
棉籽壳 Cottonseed hull	1.10	1.40	1.30
稻秆 Rice straw	0.40	0.50	0.90
合计 Total	3.20	3.20	3.20
营养水平 Nutrient levels
消化能 DE/(MJ/kg)	34.40	33.95	32.99
粗蛋白质 CP/%	14.20	7.19	4.47
粗纤维 CF/%	28.55	30.91	35.10
钙 Ca/%	0.55	0.54	0.55
磷 P/%	0.30	0.33	0.33

	消化能为计算值^[15],其他为实测值。
	DE was a calculated value^[15], while others were measured values.

1.3 饲养管理

试验在新疆建设生产兵团阿拉尔市塔里木大学实验养鹿场完成,预试期10 d,正试期90 d。试验前进行统一驱虫,每日08:00和19:00各饲喂1次,定量饲喂,保证平均日采食量为3.20 kg/d,自由饮水。专人管理并记录马鹿采食、行为以及健康状况,确保马鹿在试验开始前体况及健康状况一致。试验鹿圈周围设置防护栏以防导致马鹿受惊、受伤甚至淘汰。

1.4 样品采集

在各组最后1只马鹿背部食毛面积达到40%或60%时,整个组同时进行此阶段瘤胃液、血液样品和背毛的采集,食毛面积使用目测法结合整体百分比估算法(借鉴“九分法”)观测。

瘤胃液样品采集及处理:马鹿麻醉后,使用采样管在瘤胃上、中、下层采集固形物和液体等量并混匀,过4层纱布后测定pH,然后迅速转移入50 mL已灭菌的离心管(约40 g/管)中,置于-20 ℃冰箱储存备用。

血液样品采集及处理:马鹿麻醉后,使用非抗凝采血管颈静脉采血,低温静置30 min等待血清析出后,在2 400×g离心10 min,分装到2 mL离心管,置于-20 ℃冰箱储存备用。

背毛样品采集及处理:马鹿麻醉后,使用密度钳在其肩部、体侧、股部、背部各取毛发50 g,混合装袋常温保存备用。

1.5 指标测定

瘤胃内环境参数:pH使用精密酸度计(PHSJ-5,上海仪电科学仪器有限公司)测定;氨态氮(NH₃-N)含量采用酚-次氯酸钠比色法,参照冯宗慈等^[16]的方法测定;微生物蛋白(MCP)含量采用差速离心法测定,参照Broderick等^[17]的方法;挥发性脂肪酸(VFA)含量采用气相色谱仪(TRACE 1310,德国Thermo Scientific公司),参照曹庆云等^[18]的方法测定。

血清生化指标:尿素氮(UN)、总蛋白(TP)、葡萄糖(GLU)含量采用全自动生化分析仪(PHOTOMETER 5010,德国ROBERT RIELE公司)测定。

血清和背毛微量元素含量:硒含量采用荧光法测定^[19];锰、铜、锌、钴含量采用火焰原子吸收分光光度计(FP6450,上海仪电科学仪器有限公司)测定^[20]。

1.6 数据统计分析

数据采用SPSS 17.0软件进行统计分析,采用one-way ANOVA程序进行分析和Duncan氏法进行多重比较。试验数据用平均值±标准差表示;P<0.05表示差异显著,P>0.05表示差异不显著。

2 结果

2.1 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿数量及天数比较

由表2可知,在整个试验期间,NP组马鹿未表现出食毛症状,而LP₅₀组和LP₃₀组马鹿均出现了典型食毛症状。与LP₅₀组相比,LP₃₀组马鹿达到40%食毛面积所需天数缩短了21 d(P<0.05),达到60%食毛面积所需天数缩短了13 d(P<0.05)。

表2 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿数量及天数比较

Table 2 Comparison of number of wool-eating disorder wapitis and day in each group when wool-eating area reached 40% and 60%

组别 Groups	试验马鹿数 Number of experimental disorder wapiti/ 只	食毛面积40% Wool-eating area 40%		食毛面积60% Wool-eating area 60%
组别 Groups	试验马鹿数 Number of experimental disorder wapiti/ 只	食毛马鹿数量 Number of wool-eating disorder wapiti/只	天数 Day/d	食毛马鹿数量 Number of wool-eating disorder wapiti/只	天数 Day/d
NP	6	0	未出现	0	未出现
LP₅₀	6	6	61.0±3.0^a	6	84.0±3.0^a
LP₃₀	6	6	40.5±2.5^b	6	71.0±1.5^b

	同列数据肩标不同小写字母表示差异显著(P<0.05),相同或无字母表示差异不显著(P>0.05)。
	In the same column, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with the same or no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05).

2.2 毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿瘤胃内环境参数比较

由表3可知,各组瘤胃pH均在正常范围,且组间差异不显著(P>0.05)。与NP组相比,LP₅₀组和LP₃₀组瘤胃NH₃-N、MCP、乙酸、丙酸、丁酸和总挥发性脂肪酸(TVFA)含量显著降低(P<0.05);此外,LP₃₀组瘤胃NH₃-N、MCP、乙酸、丁酸和TVFA含量显著低于LP₅₀组(P<0.05)。各组之间瘤胃丙酸含量差异不显著(P>0.05)。

表3 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿瘤胃内环境参数比较

Table 3 Comparison of rumen internal environmental parameters of wool-eating disorder wapitis in each group when wool-eating area reached 40% and 60%

项目 Items	组别 Groups			P值 P-value
项目 Items	NP	LP₅₀	LP₃₀	P值 P-value
pH	6.27±0.19	6.19±0.22	6.23±0.31	0.847
氨态氮 NH₃-N/(mg/dL)	15.89±0.51^a	6.91±0.69^b	4.99±0.54^c	<0.001
微生物蛋白 MCP/(mg/dL)	88.44±6.82^a	26.65±0.95^b	15.55±1.88^c	<0.001
乙酸 Acetic acid/(mmol/L)	49.19±1.21^a	36.07±1.09^b	34.92±1.32^b	<0.001
丙酸 Propionic acid/(mmol/L)	29.24±2.00^a	24.25±2.41^b	25.23±2.51^b	0.014
丁酸 Butyric acid/(mmol/L)	22.47±1.90^a	18.85±2.00^b	16.45±2.18^c	0.002
总挥发性脂肪酸 TVFA/(mmol/L)	100.91±1.88^a	79.17±1.99^b	76.59±1.99^c	<0.001

	同行数据肩标不同小写字母表示差异显著(P<0.05),相同或无字母表示差异不显著(P>0.05)。下表同。
	In the same row, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with the same or no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05). The same as below.

2.3 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿血清生化指标比较

由表4可知,与NP组相比,LP₅₀组和LP₃₀组血清UN和TP含量显著降低(P<0.05);此外,LP₃₀组血清UN和TP含量显著低于LP₅₀组(P<0.05)。各组之间血清GLU含量差异不显著(P>0.05)。

表4 食毛面积达到40%和60%时各试验组食毛马鹿血清生化指标比较

Table 4 Comparison of serum biochemical indexes of wool-eating disorder wapitis in each group when wool-eating area reached 40% and 60%

项目 Items	组别 Groups			P值 P-value
项目 Items	NP	LP₅₀	LP₃₀	P值 P-value
尿素氮 UN/(mmol/L)	8.11±1.25^a	5.92±2.99^b	3.12±2.58^c	0.009
总蛋白 TP/(g/L)	71.44±7.54^a	64.56±5.22^ab	55.27±8.98^b	0.011
葡萄糖 GLU/(mmol/L)	3.55±0.21	3.74±0.33	3.91±0.29	0.124

2.4 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿血清和背毛微量元素含量比较

2.4.1 背毛微量元素含量比较

由表5可知,与NP组相比,LP₅₀组和LP₃₀组背毛锰含量显著降低(P<0.05),背毛铜和锌含量显著升高(P<0.05);此外,LP₃₀组背毛锰含量显著低于LP₅₀组(P<0.05),背毛铜和锌含量显著高于LP₅₀组(P<0.05)。各组之间背毛钴和硒含量差异不显著(P>0.05)。

表5 食毛面积达到40%和60%时各试验组食毛马鹿背毛微量元素含量比较

Table 5 Comparison of contents of trace element in back hair of wool-eating disorder wapitis in each group when wool-eating area reached 40% and 60%μg/g

项目 Items	组别 Groups			P值 P-value
项目 Items	NP	LP₅₀	LP₃₀	P值 P-value
锰 Mn	5.21±0.41^a	4.42±0.10^b	3.51±0.13^c	<0.001
铜 Cu	2.44±0.21^c	2.87±0.16^b	2.99±0.17^a	<0.001
锌 Zn	5.84±0.59^c	6.63±0.41^b	6.70±0.25^a	0.002
钴 Co	0.89±0.11	0.99±0.17	1.07±0.20	0.204
硒 Se	0.19±0.05	0.22±0.09	0.24±0.05	0.433

2.4.2 血清微量元素含量比较

由表6可知,与NP组相比,LP₅₀组和LP₃₀组血清铜和锌含量显著升高(P<0.05);此外,LP₃₀组血清铜和锌含量显著高于LP₅₀组(P<0.05)。各组之间血清锰、钴和硒含量差异不显著(P>0.05)。

表6 食毛面积达到40%和60%时各试验组食毛马鹿血清微量元素含量比较

Table 6 Comparison of contents of trace element in serum of wool-eating disorder wapitis in each group when wool-eating area reached 40% and 60%μg/L

项目 Items	组别 Groups			P值 P-value
项目 Items	NP	LP₅₀	LP₃₀	P值 P-value
锰 Mn	10.48±1.37	10.53±1.53	10.51±1.44	0.998
铜 Cu	681.23±32.31^c	798.47±42.70^b	932.18±42.02^a	<0.001
锌 Zn	602.47±23.61^c	710.33±39.17^b	828.65±38.53^a	<0.001
钴 Co	0.47±0.06	0.48±0.08	0.47±0.057	0.957
硒 Se	41.58±4.89	42.13±4.94	41.79±4.99	0.981

3 讨论

3.1 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿数量及天数比较

机体蛋白质缺乏会抑制动物体内酶和激素的合成,进而影响其正常生理代谢过程,最终成为诱发异食癖的关键因素。本试验发现,饲喂正常蛋白质水平饲粮的6只马鹿在试验期内始终保持0脱毛面积,全程未出现食毛症状,而LP₅₀组和LP₃₀组中所有马鹿均出现了食毛症状,并最终达到了40%和60%的食毛面积。这证明在蛋白质营养充足的条件下,马鹿不会自发产生异食癖,而低蛋白质营养则会引发该现象。这与研究报道中饲粮缺乏蛋白质和必需氨基酸是导致动物异食癖的直接原因的结果^[21-22]一致。本试验中,LP₃₀组的饲粮CP水平低于LP₅₀组,其马鹿食毛行为进展更快,说明饲粮CP水平越低,异食癖行为越严重,这建立了一种“剂量-效应”关系,此结果与李志静^[10]关于低蛋白质能够引起绵羊异食癖的研究结论一致。饲粮CP水平不断降低(“剂量”加大),会导致异食癖行为更早出现且更快恶化(“效应”增强)。本试验中,LP₃₀组马鹿在39~42 d即出现食毛行为,较前人报道^[23]提前21 d以上,这表明严重蛋白质缺乏会加速异食行为发展,进一步为“剂量-效应”关系提供了有利的证据。

3.2 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿瘤胃内环境参数比较

瘤胃pH是反映反刍动物瘤胃发酵稳态的关键指标,马鹿瘤胃正常pH一般为5.6~6.6^[13]。本试验中,各组瘤胃pH均在正常范围,且组间差异不显著。这与Colmenero等^[24]和王雅倩等^[25]饲喂不同CP水平饲粮对奶牛和湖羊瘤胃pH变化的影响较小,pH维持在正常区间的研究结论一致。

瘤胃NH₃-N处于动态平衡,反映了蛋白质降解与MCP合成之间的关系:一方面,饲粮蛋白质被瘤胃微生物分解产生NH₃-N;另一方面,瘤胃微生物利用降解的NH₃-N与酮酸合成MCP^[26]。本试验中,NP组瘤胃NH₃-N含量显著高于LP₅₀组和LP₃₀组,这可能是由于食毛马鹿饲粮CP水平不足,虽然瘤胃内可用于合成MCP的蛋白质总量较低,但其脱氨基后转化效率可能较高,使得NH₃-N被迅速利用于合成MCP,从而造成其含量低于健康马鹿。这一结果与李雪梅等^[27]研究结果相似。瘤胃NH₃-N和MCP含量的降低表明蛋白质缺乏导致氮代谢紊乱。LP₃₀组瘤胃NH₃-N含量(4.99 mg/dL)低于反刍动物氮代谢临界值(5~8 mg/dL)^[28],直接限制了MCP合成。血清UN和TP含量的同步下降进一步证实了宿主自身蛋白质合成障碍的连锁反应^[29-30]。本试验通过梯度蛋白质设计证实,当饲粮CP水平低于7.19%时,马鹿瘤胃NH₃-N含量低于维持MCP合成的最低需求阈值(5 mg/dL)。血清UN和TP含量的同步下降证实了“瘤胃NH₃-N含量降低→MCP含量降低→宿主蛋白质合成能力下降”这一级联反应。

VFA是反刍动物维持正常生理和生产所需的重要能量来源,其主要由乙酸、丙酸和丁酸等构成,由瘤胃微生物发酵碳水化合物产生^[31]。VFA通过瘤胃上皮被吸收进入血液,同时也随瘤胃内容物进入后部消化道^[32]。本试验发现,低蛋白质饲粮诱发的食毛马鹿,其瘤胃乙酸和丁酸含量显著低于健康马鹿,,而瘤胃丙酸含量则无显著变化。其原因可能是:食毛马鹿的饲粮CP和精料水平较低,导致易被发酵的可溶性碳水化合物不足。这使得瘤胃微生物合成MCP所需的碳源匮乏,MCP合成量下降。而MCP中包含多种纤维素降解酶,其合成量不足进而导致纤维分解受阻。这可能是健康马鹿瘤胃中乙酸和丁酸含量高于食毛马鹿的重要原因,该推断与李志静^[10]的研究结果一致。

3.3 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿血清生化指标比较

UN是反映机体氮代谢和蛋白质平衡状态的重要指标。本试验结果表明,NP组马鹿的血清UN含量显著高于LP₃₀组,约为LP₃₀组的3倍,这主要源于血液蛋白质的合成机制:肝脏利用吸收的氨基酸合成蛋白质,当饲粮CP水平降低时,氮源供给不足导致瘤胃NH₃-N含量下降,瘤胃中的NH₃-N主要被用于合成MCP,仅少部分经瘤胃壁吸收进入门静脉循环。因此,作为肝脏合成尿素的关键前体物——瘤胃来源的NH₃-N供给减少,进而导致血清UN含量显著降低^[33]。这与前人研究结果一致:Marini等^[34]证实饲粮氮水平与血浆NH₃-N含量呈正相关;Blome等^[35]也发现血清UN含量随蛋白质摄入量呈线性增长。血清UN含量的下降意味着可用于合成MCP的氮源减少,导致到达小肠、能被宿主有效利用的蛋白质来源不足。长期处于这种蛋白质缺乏状态,使得马鹿通过食毛补氮,从而引发食毛症。

TP同样是评估机体蛋白质总体状况和氮代谢平衡的关键指标。本试验结果显示,LP₃₀组血清TP含量较NP组降低了约16 g/L,差异显著,这与李志静^[10]和Akgul等^[36]的研究结果一致。本试验中,血清TP含量随饲粮CP水平的降低而下降,其主要是因为蛋白质摄入不足、吸收障碍以及消耗增加。这也进一步证实,饲粮蛋白质供给不足是诱发马鹿食毛症的核心因素。

3.4 食毛面积达到40%和60%时各组食毛马鹿血清和背毛微量元素含量比较

微量元素是动物机体生长发育和物质代谢等生命过程不可或缺的营养物质,虽然其在体内含量甚微,但具有调节酶促反应、促进常量元素转运、参与激素合成以及构成某些营养素等多种生物学功能^[37]。本试验发现,与NP组相比,LP₅₀组和LP₃₀组血清铜和锌含量显著升高。已有研究表明,动物在营养压力下会动员体储备(如肌肉和肝脏组织)以维持生命活动。由于蛋白质常与微量元素(如铜和锌)共同储存在组织中(例如金属硫蛋白)^[38],当低蛋白质饲粮引发机体分解代谢时,储存于肌肉等组织中的微量元素便会释放进入循环系统,这可能是LP₅₀组和LP₃₀组血清铜和锌含量得以维持甚至升高的重要原因。

本试验中,与NP组相比,LP₅₀组和LP₃₀组背毛锰含量显著降低,而血清锰含量无显著变化。这或许揭示了锰的“相对缺乏”状态:即在摄入量未变的情况下,蛋白质缺乏阻碍了锰的利用和转运过程,导致其无法被有效地整合到毛囊等靶向组织中^[39]。毛发属于慢速代谢组织,其微量元素含量能更稳定地反映机体的长期营养状况。因此,毛发锰含量比血液锰更能说明问题。锰是动物生长和骨骼形成所必需的物质,也是糖基转移酶等关键酶的必需辅因子^[40]。基于本试验结果,推测出“蛋白质-锰-硫代谢轴”有关联:蛋白质缺乏可能导致锰吸收或利用减少,进而限制含硫氨基酸的合成,造成角蛋白等结构蛋白质的不足,最终诱发食毛行为。但这一推测后续还需通过灌注锰标记同位素,追踪低蛋白质饲粮下锰在马鹿体内的吸收、分布来研究验证。锰的缺乏会破坏角蛋白、硫酸软骨素等富含含硫氨基酸的结构蛋白质与基质成分的正常合成^[3],这可能促使马鹿通过食毛行为补偿硫元素。本试验观察到低蛋白质饲粮条件下背毛锰含量下降与血清铜和锌含量升高的现象,可能共同反映了微量元素在机体营养应激下的代谢重分配。因此,在实践中需要重视冬季马鹿的饲粮营养平衡,建议日常饲喂饲粮时补充蛋氨酸以满足含硫氨基酸需求,并添加富含锰等微量元素的添加剂,用以预防和减少马鹿食毛癖的发生。

4 结论

① 低蛋白质饲粮能够诱发马鹿食毛癖,饲粮CP水平越低,马鹿食毛症状进展更快。

② 低蛋白质饲粮通过“瘤胃NH₃-N含量不足→MCP合成减少→血清UN和TP含量下降”的级联反应,引发氮代谢紊乱和蛋白质合成障碍,诱发马鹿食毛癖,饲粮CP水平越低,其症状越严重。

③ 蛋白质缺乏可能导致锰吸收或利用减少,进而限制含硫氨基酸的合成,加剧马鹿食毛癖。

References

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