Chinese Journal of Animal Nutrition >

2026 , Vol. 38 >Issue 9: 6950 - 6962

DOI: https://doi.org/10.12418/CJAN2026.555

RESEARCH PAPER

Effects of Rabbit Blood Protein Peptides on Growth Performance, Blood Parameters and Hair and Skin Health of Dogs and Cats

  • LIU Xiaojing , 1 ,
  • JIAO Huiying 2 ,
  • CHEN Jianyang 3 ,
  • LIU Ce , 1, *
Expand
  • 1 Key Laboratory of Livestock and Poultry Multiomics of Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Institute of Animal Science and Veterinary Medicine, Shandong Academy of Agricultural Sciences, Ji’nan 250100, China
  • 2 Kangda Deyuan (Qingdao) Biotechnology Co., Ltd., Qingdao 266427, China
  • 3 Qingdao Kangda Food Co., Ltd., Qingdao 266427, China
* assistant professor, E-mail:

Received date: 2026-01-17

  Online published: 2026-09-12

Fold

Abstract

This experiment was conducted to study the effects of rabbit blood protein peptides on growth performance, blood parameters and hair and skin health of dogs and cats. Twenty 1 to 2 years old Linqing lion cats were selected and randomly divided into 2 groups with 10 cats in each group (half male and half female); twenty 1 to 2 years old Beagle dogs were selected and randomly divided into 2 groups with 10 dogs in each group (half male and half female). The control group was fed a basal diet, and the test group was fed the basal diet supplemented with rabbit blood protein peptides (0.3 g/d in each cat and 0.5 g/d in each dog). The experiment lasted for 30 days. The results showed as follows: 1) for cats, compared with the control group, the average daily feed intake and average daily water intake of the test group were significantly increased (P<0.05), the blood hemoglobin concentration, hematocrit, platelet number and platelet distribution width were significantly increased (P<0.05), the serum interleukin-6 (IL-6) and tumor necrosis factor-α (TNF-α) contents were significantly decreased (P<0.05), the serum total superoxide dismutase (T-SOD) activity was significantly increased (P<0.05), the fecal score was significantly increased (P<0.05), the hair gloss shine and hair smoothness were significantly increased (P<0.05), the hair fineness was significantly decreased (P<0.05), and the skin moisture and oil contents were significantly increased (P<0.05). 2) For dogs, compared with the control group, the blood mean corpuscular volume of the test group was significantly decreased (P<0.05), the serum urea nitrogen-creatinine ratio was significantly increased (P<0.05), the serum immunoglobulin M (IgM) content and glutathione peroxidase (GSH-Px) and T-SOD activities were significantly increased (P<0.05), and the serum IL-6 content was significantly decreased (P<0.05). In summary, dietary rabbit blood protein peptides supplementation can improve the blood oxygen-carrying capacity, immune performance, antioxidant function and hair and skin health of cats, and improve the immune performance and antioxidant function of dogs.

Key words： rabbit blood protein peptides; dogs; cats; growth performance; immune performance; antioxidant function; hair and skin health

Cite this article

LIU Xiaojing , JIAO Huiying , CHEN Jianyang , LIU Ce . Effects of Rabbit Blood Protein Peptides on Growth Performance, Blood Parameters and Hair and Skin Health of Dogs and Cats[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2026 , 38(9) : 6950 -6962 . DOI: 10.12418/CJAN2026.555

伴侣动物营养学已步入“精准营养”阶段,其核心目标是在保障犬和猫安全与福利的前提下,以最小有效剂量实现最大健康收益。然而,现有市售犬饲粮中,部分产品因采用植物蛋白质,存在氨基酸平衡性不足、抗原蛋白含量高等问题;猫作为专性肉食动物,其饲粮需要高比例的优质动物蛋白质,导致幼龄动物生长迟滞、免疫抑制和氧化损伤等问题。因此,亟需开发来源广泛、致敏性低且富含生物活性肽的新型蛋白质资源,以突破传统蛋白质原料在氨基酸平衡性与致敏性方面的局限[1-2]。屠宰副产物动物血液的蛋白质含量丰富,其中血浆蛋白已广泛用于饲料及食品加工[3]。前期比较绵羊、山羊及兔血浆水解物发现,兔血浆水解物的抗氧化活性最强,且对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌具有显著抑菌效果[4]。然而,兔血蛋白肽(rabbit blood protein peptides,RBPP)作为新型功能性饲料添加剂,在犬和猫饲粮中的生理效应及应用潜力尚缺乏系统评估。因此,开展兔血蛋白肽对犬和猫生长发育、免疫性能、抗氧化功能及毛皮健康的影响研究,不仅能填补该领域的研究空白,为兔血副产物的高值化利用提供新路径,还能为研发针对性的犬和猫功能性饲料添加剂、优化宠物营养配方提供科学依据。
犬和猫作为特种经济动物,其生理代谢特点、营养需求与畜禽存在显著差异,传统蛋白肽产品的参数无法直接利用。值得注意的是,犬与猫在消化生理、营养代谢及蛋白质需求上存在显著差异(猫为严格的肉食动物,犬为兼性肉食动物),二者对同一种添加剂的反应可能不同。因此,本试验同时选取犬和猫作为研究对象,旨在分别独立评估兔血蛋白肽在2种常见宠物中的生理效应,而非进行犬和猫之间的直接统计比较。本研究旨在探究饲粮中添加兔血蛋白肽对犬和猫生长性能、血液生理生化指标及毛皮健康的影响,为兔血蛋白肽在宠物功能性饲粮中的应用提供基础数据和科学依据。

1 材料与方法

1.1 伦理声明

动物试验方案已获得山东省农业科学院畜牧兽医研究所实验动物伦理委员会的批准(许可编号:IASVM-2025-001)。

1.2 试验设计

选取1~2岁的20只健康成年临清狮猫作为研究对象,体重为(3.50±0.51) kg,随机分成2组,每组10只(公母各占1/2)。同样,选取1~2岁的20只健康成年比格犬作为研究对象,体重为(4.11±0.41) kg,随机分成2组,每组10只(公母各占1/2)。对照组饲喂基础饲粮,试验组在基础饲粮基础上额外补饲兔血蛋白肽(猫每只补饲0.3 g/d,犬每只补饲0.5 g/d)。试验期为30 d。
参考美国饲料控制官员协会(AAFCO)宠物营养需要标准[5]分别配制基础全价猫饲粮和基础全价犬饲粮,其组成及营养水平分别见表1和表2。兔血蛋白肽的添加量参考同类动物源生物活性肽在宠物营养研究中的有效剂量范围(0.05~0.15 g/kg BW)[6]及本课题组前期预试验(0.1、0.3、0.5 g/d梯度剂量筛选)结果,最终确定猫每只补饲0.3 g/d(约为0.09 g/kg BW),犬每只补饲0.5 g/d(约为0.12 g/kg BW)。兔血蛋白肽以胶囊形式补饲,作为功能性饲料添加剂使用(而非替代饲粮蛋白质原料),添加量对饲粮蛋白质贡献极小(<1%),主要通过活性肽成分发挥生物学功能。
表1 基础全价猫饲粮组成及营养水平(干物质基础)

Table 1 Composition and nutrient levels of the basal complete cat diet (DM basis)

项目Items 含量Content
原料Ingredients
玉米Corn 27.60
鸡肉粉Chicken meal 12.30
牛肉骨粉Beef bone meal 11.20
鱼粉Fish meal 10.40
虾粉Shrimp meal 8.30
豌豆Pea 10.40
马铃薯粉Potato powder 3.50
鸡油Chicken oil 5.50
鱼油Fish oil 4.80
啤酒酵母粉Brewer’s yeast powder 3.50
预混料Premix1) 1.00
丝兰提取物Yucca extract 1.00
食盐NaCl 0.50
合计Total 100.00
营养水平Nutrient levels2)
代谢能ME/(MJ/kg) 18.52
粗蛋白质CP 33.86
粗脂肪EE 16.25
粗灰分Ash 7.12
赖氨酸Lysine 2.53
牛磺酸Taurine 0.25
钙Ca 1.87
磷P 1.16

1)预混料为每千克饲粮提供 The premix provided the following per kg of the diet: VA 16 000 IU,VD3 4 120 IU,VE 300 mg,VB1 220 mg,VB2 220 mg,VB12 50 mg,烟酸 nicotinic acid 100 mg,Fe (FeSO4·7H2O) 80 mg,Zn (ZnSO4·H2O) 75 mg,Cu (CuSO4·5H2O) 7.5 mg,Mn (MnSO4·H2O) 7.5 mg,I (KI) 0.35 mg,Se (Na2SeO3) 0.1 mg。

2)代谢能为计算值,其他营养水平为实测值。ME was a calculated value, while other nutrient levels were measured values.

表2 基础全价犬饲粮组成及营养水平(干物质基础)

Table 2 Composition and nutrient levels of the basal complete dog diet (DM basis)

项目Items 含量Content
原料Ingredients
鸡肉粉Chicken meal 24.8
豌豆Pea 20.2
木薯粉Cassava flour 17.5
鸡油Chicken fat 7.4
水解鸡肝Hydrolyzed chicken liver 4.3
鱼粉Fish meal 4.0
红薯粉Sweet potato powder 3.5
鸡肝粉Chicken liver powder 3.0
鱼油Fish oil 4.0
酿酒酵母提取物
Saccharomyces cerevisiae extract		 4.2
苹果Apple 2.4
胡萝卜Carrot 1.0
西蓝花Broccoli 1.3
预混料Premix1) 1.0
海带Kelp 0.9
丝兰Yucca 0.5
合计Total 100.0
营养水平Nutrient levels2)
代谢能ME/(MJ/kg) 16.25
粗蛋白质CP 31.11
粗脂肪EE 17.30
粗灰分Ash 6.25
赖氨酸Lysine 0.76
蛋氨酸Methionine 0.59
钙Ca 1.23
磷P 1.08

1)预混料为每千克饲粮提供 The premix provided the following per kg of the diet: VA 15 000 IU,VD3 11 000 IU,VE 380 IU,VB1 22.5 mg,VB2 52 mg,VB12 50 mg,烟酸 nicotinic acid 100 mg,Fe (FeSO4·7H2O) 80 mg,Zn (ZnSO4·H2O) 120 mg,Cu (CuSO4·5H2O) 10.0 mg,Mn (MnSO4·H2O) 40.0 mg,I (KI) 1.60 mg,Se (Na2SeO3) 0.11 mg。

2)代谢能为计算值,其他营养水平为实测值。ME was a calculated value, while other nutrient levels were measured values.

1.3 饲养管理

试验期间,试验动物单笼饲养,其中试验猫单笼规格为1.6 m×0.7 m×0.7 m,试验犬单笼规格为3 m×1 m×1 m。每日08:30统一进行饲喂,同时供给兔血蛋白肽和清洁饮水。试验正式启动前,需对所有犬和猫完成免疫和驱虫操作。饲养过程中,每日更换猫砂、清理笼舍并做好卫生保洁工作,确保饲养环境洁净。试验全程密切观察动物的采食行为和精神状态,重点记录是否出现拒食、腹泻、呕吐等不良反应,若上述异常症状持续时间较长,则终止该动物的试验进程。

1.4 指标测定

1.4.1 饲粮营养水平

犬和猫的饲粮粗蛋白质含量参照GB/T 6432—2018的方法测定,粗脂肪含量参照GB/T 6433—2006的方法测定,粗灰分含量参照GB/T 6438—2007的方法测定,牛磺酸含量参照中华人民共和国农业部2483号公告-5—2016《饲料中牛磺酸的测定-高效液相色谱法》测定,氨基酸含量参照GB/T 18246—2019的方法测定,钙含量参照GB/T 6436—2018的方法测定,磷含量参照GB/T 6437—2018的方法测定。代谢能参照中华人民共和国农业农村部公告第20号[7]附录中犬和猫用宠物饲料产品能量值计算。

1.4.2 生长性能

试验第1天和第30天,精确称量每只犬和猫的体重,计算初重和末重。体重变化数据主要用于监测动物健康状态(异常体重下降或增加)及评估兔血蛋白肽对成年动物维持期代谢的潜在影响,而非作为生长性能的主要评价指标。试验期内,记录每只犬和猫每天的采食量和饮水量,统计每只犬和猫平均日采食量(average daily feed intake,ADFI)和平均日饮水量(average daily water intake,ADWI)。计算公式如下:
平均日采食量(g/d)=试验期每个重复总采食量/试验天数;
平均日饮水量(mL/d)=试验期每个重复总饮水量/试验天数。

1.4.3 血液指标

试验第30天晨饲前,分别采集所有犬和猫的前肢静脉血,用于后续血液指标检测。血样分装后,抗凝血用于血常规检测,分离的血清则用于生化、免疫和抗氧化指标检测。
血常规指标使用全自动血细胞分析仪(IDEXX ProCyte Dx,美国)进行检测,血清生化指标使用全自动生化分析仪(IDEXX Catalyst One,美国)进行检测,血清抗氧化和免疫指标使用商业试剂盒(南京建成生物工程研究所)进行检测。

1.4.4 毛皮指标

本研究毛皮指标仅针对猫进行检测,主要原因为试验犬(比格犬)为短毛品种,毛发较短,部分理化指标(弹性回复率、伸长率等)检测受限;且预试验结果显示兔血蛋白肽对猫毛皮健康的改善效果更好。在试验第30天对猫被毛感官指标、被毛指标和皮肤指标进行测定。

1.4.4.1 被毛感官评价

在猫背中部固定位置使用宠物专用电推剪剔下被毛,装入袋中保存。由3名专业人员对被毛进行随机双盲感官评价,被毛评分标准见表3。
表3 被毛评分标准

Table 3 Hair scoring standards

评分Scores 被毛光泽度Hair gloss shine 被毛柔顺度Hair smoothness 皮肤弹性Skin elasticity
1 暗淡 打结 不回弹
2 较暗 轻微打结 回弹很慢
3 一般 粗糙分叉 一般
4 较亮 一般 恢复较快
5 光亮 柔顺 立即恢复

1.4.4.2 被毛指标和皮肤指标

用色差仪(3NH NR20XE,中国)紧贴被毛测定猫背中部的被毛色差值[亮度(L*)、红度(a*)、黄度(b*)值]。详细测定步骤参照刘策等[8]的方法。
被毛长度通过手排法进行测定,测定被毛的长度,取平均值。被毛细度采用投影直径法测定,具体操作为:将被毛样本有序排列后,剪裁为1 cm长度的小段,置于显微镜下测量其直径。毛发弹性回复率和伸长率使用单纤维强力仪(YM-06d,中国)进行检测,通过定长弹性和定荷拉伸2种试验,对所得数据计算平均值作为最终结果。
采用比重法计算被毛密度。根据剃毛区域的长宽计算面积,记为S;用精密天平(精度0.1 mg)准确称量采集的被毛重量,记为M;随机选取1~3 mg毛样,精确称取其重量,记为m1;在放大镜下,使用眼科镊子对样品中的毛纤维进行逐根计数,记录总数,记为W1;根据以下公式计算被毛密度:
被毛密度(根/cm2)=(W1×M)/(m1×S)。
利用皮肤水分测定仪(RBX-916,中国)测定皮肤的水分和油分含量及pH。测定前,先将背部皮肤表面的毛发清理干净。测定时,使皮肤水分测定仪的探头直接接触背中部皮肤进行测定。
采用扫描电子显微镜(SEM)观察被毛样品的形貌。使用电镜(Tescan Vega3,捷克)及其二次电子(SE)探测器,样品观测前经离子镀金仪(Eiko IB-3,日本)喷金处理以消除荷电效应。样品制备选用直径12.7 mm的钉型样品台,表面贴有导电碳胶带。将被毛均匀分散于胶带上形成单层附着,并用洗耳球吹去多余样品及碎屑。喷金条件为:真空度低于3×10-6 Torr,溅射电流10 mA,时间60~90 s,金膜厚度5~10 nm。SEM观测在高真空(<1×10-4 Pa)下进行,加速电压20.0 kV,工作距离约9 mm。通过调节焦距与对比度,于不同倍数下获取形貌图像。由于本研究被毛样本采集及SEM分析属于探索性观察,SEM图像来自每组各1只代表性猫的被毛样本,图像结果与各组整体被毛指标统计结果趋势一致,仅作形态学辅助参考。本研究局限之一在于SEM样本量有限(n=1),后续研究将扩大SEM观察样本量以增强结论可靠性。

1.4.5 粪便评分

每日于饲喂前对每只犬和猫的粪便外观形态进行评分。粪便评分标准见表4。
表4 粪便评分标准

Table 4 Fecal scoring criteria

评分Scores 外观形态Appearance form
1 完全液状(无实质固体结构),不成形
2 柔软,不成形
3 柔软、湿润条状,部分成形
4 干结,但软硬适中,成形
5 坚硬,干片状或小石头样,成形

1.5 数据处理

采用Excel 2019软件对所有测定数据进行统计分析,试验组和对照组之间的比较采用独立样本t检验。结果以平均值±标准差表示,P>0.05表示无显著差异,0.05≤P<0.10表示呈升高或降低趋势,P<0.05表示差异显著。

2 结果

2.1 兔血蛋白肽对犬和猫采生长性能的影响

由表5可知,与对照组相比,试验组犬和猫的初重和末体重均无显著差异(P>0.05),试验组猫的平均日采食量和平均日饮水量显著升高(P<0.05),试验组犬的平均日采食量和平均日饮水量均无显著差异(P>0.05)。
表5 兔血蛋白肽对犬和猫生长性能的影响

Table 5 Effects of rabbit blood protein peptides on growth performance of dogs and cats

项目
Items		 猫Cats P值
P-value		 犬Dogs P值
P-value
试验组
Test group		 对照组
Control group		 试验组
Test group		 对照组
Control group
初重Initial weight/kg 3.37±0.58 3.56±0.45 0.430 4.14±0.30 4.08±0.51 0.735
末重Final weight/kg 3.55±0.60 3.67±0.43 0.606 4.30±0.31 4.21±0.51 0.635
平均日采食量
Average daily feed intake/(g/d)		 81.85±8.20a 68.25±13.22b 0.013 141.36±32.92 139.2±35.87 0.890
平均日饮水量
Average daily water intake/(mL/d)		 172.73±4.30a 156.50±5.37b <0.001 372.27±14.63 374.13±14.63 0.779

同行数据肩标不同小写字母表示差异显著(P<0.05),无字母表示差异不显著(P>0.05)。下表同。

In the same row, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05). The same as below.

2.2 兔血蛋白肽对犬和猫血液指标的影响

由表6和表7可知,与对照组相比,试验组猫的血液红细胞数目、平均血小板体积、血小板压积及血清白蛋白含量、尿素氮-肌酐比值呈升高趋势(0.05≤P<0.10),血液血红蛋白浓度、红细胞压积、血小板数目及血小板分布宽度显著升高(P<0.05),血液平均红细胞体积呈降低趋势(0.05≤P<0.10),其余血常规和血清生化指标无显著差异(P>0.05)。由表8和表9可知,与对照组相比,试验组猫的血清白细胞介素-6(IL-6)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)含量显著降低(P<0.05),血清总超氧化物歧化酶(T-SOD)活性显著升高(P<0.05),其余血清免疫和抗氧化指标无显著差异(P>0.05)。
表6 兔血蛋白肽对犬和猫血常规指标的影响

Table 6 Effects of rabbit blood protein peptides on blood routine parameters of dogs and cats

项目
Items		 猫Cats P值
P-value		 犬Dogs P值
P-value
试验组
Test group		 对照组
Control group		 试验组
Test group		 对照组
Control group
白细胞数目
WBC number/(×109个/L)		 15.91±5.67 16.79±4.70 0.711 8.63±2.78 7.55±1.88 0.325
淋巴细胞百分比
LYM percentage/%		 59.01±12.44 59.94±9.72 0.854 64.17±8.19 58.44±6.10 0.093
中性粒细胞百分比
GRA percentage/%		 28.44±10.06 28.69±8.55 0.953 22.32±7.75 28.11±5.40 0.068
单核细胞百分比
MON percentage/%		 4.81±1.38 4.34±1.39 0.458 9.13±2.45 8.83±3.23 0.818
嗜酸性粒细胞百分比
EO percentage/%		 7.64±3.99 6.94±3.40 0.678 4.23±2.06 4.41±2.29 0.855
嗜碱性粒细胞百分比
BA percentage/%		 0.10±0.07 0.09±0.06 0.722 0.15±0.20 0.21±0.19 0.491
中性粒细胞数目
GRA number/(×109个/L)		 9.67±4.71 9.90±2.67 0.895 5.66±2.40 4.48±1.45 0.198
淋巴细胞数目
LYM number/(×109个/L)		 4.24±1.51 4.99±2.66 0.451 1.83±0.54 2.06±0.36 0.280
单核细胞数目
MON number/(×109个/L)		 0.76±0.35 0.71±0.30 0.733 0.79±0.32 0.67±0.30 0.386
嗜酸性粒细胞数目
EO number/(×109个/L)		 1.22±0.81 1.18±0.66 0.891 0.28±0.14 0.33±0.22 0.540
嗜碱性粒细胞数目
BA number/(×109个/L)		 0.01±0.01 0.01±0.01 0.637 0.01±0.02 0.01±0.01 0.628
红细胞数目
RBC number/(×1012个/L)		 13.23±1.81 11.20±1.25 0.053 7.14±0.81 7.69±1.11 0.221
血红蛋白浓度
HGB concentration/(g/L)		 126.71±38.76a 107.90±11.69b 0.047 147.80±19.30 155.10±27.73 0.503
红细胞压积
HCT/%		 44.41±7.12a 41.66±3.42b 0.049 73.21±10.86 40.64±6.08 0.368
平均红细胞体积
MCV/fL		 34.75±3.33 36.81±3.60 0.058 48.96±10.84b 52.88±3.11a 0.043
平均红细胞血红蛋白含量
MCH content/pg		 10.53±0.89 10.52±0.63 0.977 20.69±0.57 20.12±1.76 0.344
平均红细胞血红蛋白浓度
MCHC/(g/L)		 286.00±8.88 286.50±12.91 0.921 380.90±3.17 380.00±19.09 0.885
红细胞分布宽度变异系数
RDWCV/%		 19.32±3.45 17.72±0.45 0.179 12.85±0.35 13.07±0.61 0.342
红细胞分布宽度标准差
RDWSD		 31.32±2.75 30.97±3.54 0.808 36.91±2.91 37.10±1.95 0.866
血小板数目
PLT number/(×109个/L)		 277.29±86.81a 252.86±38.10b 0.049 345.38±128.31 264.60±129.96 0.092
平均血小板体积
MPV/fL		 9.74±1.09 9.55±0.82 0.057 9.56±0.65 9.46±0.97 0.790
血小板分布宽度
PDW		 10.87±1.94a 9.03±1.57b 0.041 13.22±2.63 13.55±2.52 0.778
血小板压积
PCT/%		 0.24±0.12 0.22±0.04 0.051 0.40±0.12 0.25±0.13 0.055
表7 兔血蛋白肽对犬和猫血清生化指标的影响

Table 7 Effects of rabbit blood protein peptides on serum biochemical parameters of dogs and cats

项目
Items		 猫Cats P值
P-value		 犬Dogs P值
P-value
试验组
Test group		 对照组
Control group		 试验组
Test group		 对照组
Control group
白蛋白ALB/(g/L) 44.15±2.33 41.83±3.14 0.077 30.17±2.25 30.78±2.05 0.537
总蛋白TP/(g/L) 88.36±9.46 84.83±7.92 0.378 72.26±4.95 74.42±6.46 0.413
球蛋白GLOB/(g/L) 44.21±9.94 43.00±9.74 0.786 42.09±5.85 43.64±7.27 0.605
丙氨酸氨基转移酶ALT/(U/L) 58.47±15.41 67.18±54.55 0.633 41.91±14.99 45.08±10.90 0.594
碱性磷酸酶ALP/(U/L) 34.35±12.63 29.24±6.05 0.270 34.82±12.03 31.89±8.43 0.536
肌酐Cr/(μmol/L) 80.67±16.95 84.28±9.44 0.519 50.18±8.48 56.86±13.28 0.237
尿素氮UN/(mmol/L) 9.40±1.77 9.05±1.34 0.620 7.75±1.10 6.91±1.34 0.474
尿素氮-肌酐比UN-to-Cr ratio/% 116.52±6.07 107.38±1.96 0.068 154.44±31.98a 121.53±22.38b 0.022
葡萄糖GLU/(mmol/L) 3.67±1.80 3.33±0.63 0.583 3.26±0.63 3.21±0.54 0.863
表8 兔血蛋白肽对犬和猫血清抗氧化指标的影响

Table 8 Effects of rabbit blood protein peptides on serum antioxidant parameters of dogs and cats

项目
Items		 猫Cats P值
P-value		 犬Dogs P值
P-value
试验组
Test group		 对照组
Control group		 试验组
Test group		 对照组
Control group
总超氧化物歧化酶
T-SOD/(U/mL)		 171.05±18.57a 133.69±22.84b 0.010 90.04±13.58a 77.62±6.00b 0.044
丙二醛MDA/(μmol/mL) 0.48±0.13 0.39±0.15 0.175 0.57±0.25 0.68±0.22 0.347
总抗氧化能力
T-AOC/(U/mL)		 1.13±0.22 1.24±0.11 0.152 0.99±0.18 1.01±0.06 0.669
谷胱甘肽过氧化物酶
GSH-Px/(U/mL)		 58.71±43.08 64.37±23.22 0.719 75.85±32.12a 45.34±25.62b 0.031
过氧化氢酶CAT/(U/mL) 38.56±17.76 33.97±24.52 0.637 27.26±12.39 19.46±15.11 0.223
表9 兔血蛋白肽对犬和猫血清免疫指标的影响

Table 9 Effects of rabbit blood protein peptides on serum immune parameters of dogs and cats

项目
Items		 猫Cats P值
P-value		 犬Dogs P值
P-value
试验组
Test group		 对照组
Control group		 试验组
Test group		 对照组
Control group
免疫球蛋白A IgA/(g/L) 0.73±0.37 0.71±0.40 0.891 0.21±0.03 0.21±0.04 0.999
免疫球蛋白M IgM/(g/L) 1.03±0.27 1.10±0.32 0.630 1.80±0.31a 1.49±0.27b 0.033
免疫球蛋白G IgG/(g/L) 4.31±0.40 4.26±0.25 0.769 4.58±0.47 4.12±0.45 0.073
白细胞介素-2 IL-2/(pg/mL) 328.34±257.87 358.81±190.58 0.767 274.76±186.21 194.89±179.95 0.342
白细胞介素-6 IL-6/(pg/mL) 114.46±98.42b 289.23±199.17a 0.028 20.87±5.45b 32.61±14.30a 0.035
白细胞介素-8 IL-8/(pg/mL) 61.42±56.16 61.39±26.17 0.999 62.76±22.78 47.90±39.29 0.314
肿瘤坏死因子-α
TNF-α/(pg/mL)		 21.64±27.85b 53.36±36.18a 0.049 100.24±12.10 92.20±12.63 0.163
由表6和表7可知,与对照组相比,试验组犬的血液淋巴细胞数目、血小板数目和血小板压积呈升高趋势(0.05≤P<0.10),血液中性粒细胞百分比呈降低趋势(0.05≤P<0.10),血液平均红细胞体积显著降低(P<0.05),血清尿素氮-肌酐比值显著升高(P<0.05),其余血常规和血清生化指标无显著差异(P>0.05)。由表8和表9可知,与对照组相比,试验组犬的血清免疫球蛋白M(IgM)含量及谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、T-SOD活性显著升高(P<0.05),血清IL-6含量显著降低(P<0.05),血清免疫球蛋白G(IgG)含量呈升高趋势(0.05≤P<0.10),其余血清免疫和抗氧化指标无显著差异(P>0.05)。

2.3 兔血蛋白肽对犬和猫粪便评分的影响

由表10可知,与对照组相比,试验组猫的粪便评分显著升高(P<0.05),试验组犬的粪便评分无显著差异(P>0.05)。
表10 兔血蛋白肽对犬和猫粪便评分的影响

Table 10 Effects of rabbit blood protein peptides on fecal scores of dogs and cats

项目
Item		 猫Cats P值
P-value		 犬Dogs P值
P-value
试验组
Test group		 对照组
Control group		 试验组
Test group		 对照组
Control group
粪便评分Fecal score 3.78±0.09a 3.60±0.15b 0.004 3.78±0.19 3.82±0.17 0.683

2.4 兔血蛋白肽对猫毛皮健康的影响

2.4.1 兔血蛋白肽对猫毛皮感官指标的影响

由表11可知,与对照组相比,试验组猫的被毛光泽度和被毛柔顺度显著升高(P<0.05),皮肤弹性无显著差异(P>0.05)。由图1可知,肉眼观察可见,试验组猫的被毛光亮,触感柔软顺滑;而对照组被毛则相对暗淡粗糙。SEM结果进一步显示,试验组猫的被毛鳞片排列整齐、扣合紧密且边缘清晰;而对照组猫的被毛鳞片则存在边界粘连、附着物较多的现象。
表11 兔血蛋白肽对猫毛皮感官指标的影响

Table 11 Effects of rabbit blood protein peptides on hair and skin sensory parameters of cats

项目
Items		 试验组
Test group		 对照组
Control group		 P值
P-value
被毛光泽度Hair gloss shine 4.70±0.42a 4.10±0.58b 0.035
被毛柔顺度Hair smoothness 4.50±0.53a 3.90±0.57b 0.025
皮肤弹性Skin elasticity 4.90±0.32 4.60±0.52 0.135
图1 试验组与对照组猫的被毛感官和SEM图

A:试验组被毛感官图;B:对照组被毛感官图;C:试验组被毛SEM图;D:对照组被毛SEM图。图像来自每组各1只代表性个体,SEM为形态学辅助参考(n=1),毛皮统计结论以感官和理化指标为准(n=10)。

Fig.1 Sensory and SEM images of hair of cats between test group and control group

A: sensory image of hair in the test group; B: sensory image of hair in the control group; C: SEM image of hair in the experimental group; D: SEM image of hair in the control group. Images were obtained from one representative animal per group, and SEM was used as a morphological auxiliary reference (n=1), and the statistical conclusions on hair and skin were according to sensory and physicochemical parameters (n=10).

2.4.2 兔血蛋白肽对猫毛皮理化指标的影响

由表12可知,与对照组相比,试验组猫的被毛细度显著降低(P<0.05),其余被毛理化性质无显著差异(P>0.05);试验组猫的皮肤水分和油分含量显著升高(P<0.05),皮肤pH有升高的趋势(0.05≤P<0.10)。
表12 兔血蛋白肽对宠物猫被毛与皮肤理化指标的影响

Table 12 Effects of rabbit blood protein peptides on hair and skin physicochemical parameters of cats

项目
Items		 试验组
Test group		 对照组
Control group		 P值
P-value
被毛长度Hair length/cm 2.73±0.87 3.04±0.76 0.408
被毛细度Hair fineness/μm 12.45±1.58b 14.14±1.62a 0.029
被毛亮度Hair L* 91.67±6.37 87.74±10.13 0.313
被毛红度Hair a* 0.47±1.17 1.14±2.16 0.400
被毛黄度Hair b* 11.59±1.74 11.54±3.01 0.960
被毛弹性回复率Hair elastic recovery rate/% 57.20±3.78 55.10±1.85 0.137
被毛伸长率Hair elongation rate/% 46.57±3.83 41.48±9.05 0.127
被毛密度Hair density/(根/cm2) 4 514.36±614.74 4 171.22±549.62 0.748
皮肤水分Skin moisture content/% 25.30±0.42a 23.80±0.54b <0.001
皮肤油分含量Skin oil content/% 54.35±0.75a 53.55±0.44b 0.009
皮肤pH Skin pH 6.80±1.30 5.82±0.61 0.051

3 讨论

3.1 兔血蛋白肽对犬和猫生长性能的影响

本试验中,试验组猫的平均日采食量和平均日饮水量显著高于对照组,而犬的平均日采食量和平均日饮水量与对照组无显著差异。该物种特异性应答可能与犬和猫的营养需求差异密切相关。猫为专性食肉动物,对蛋白质的消化吸收能力强且需求高,而兔血蛋白肽分子质量小、水溶性好,推测更易被猫肠道快速识别与吸收;其降解产物中的氨基酸和短肽可通过味觉受体介导的信号通路增强摄食动机[9-10]。同时,短肽在体内转运和代谢过程中需更多水分参与,进而导致猫的摄食和饮水行为协同升高[11]。
值得注意的是,本试验中试验组猫的平均日采食量显著升高,但终末体重与对照组无显著差异。这可能与以下因素有关:一是试验周期较短(30 d),体重改变需要更长时间积累才能显现显著差异;二是增加的摄入量可能优先支持免疫应答、毛皮生长及其他功能性代谢过程,而非体脂积累;三是成年猫具有较强的体重稳态调节机制,短期采食量的轻微增加不一定引发可见的体重变化。
从代谢指标分析,与对照组相比,试验组犬和猫的血清尿素氮-肌酐比值均呈现上升趋势,同时猫的血清白蛋白含量呈升高趋势。尿素氮-肌酐比值变化直接反映机体蛋白质代谢效率[12],该比值升高提示兔血蛋白肽中富含比例均衡的必需氨基酸(如赖氨酸、蛋氨酸),可被机体高效吸收利用,推测在促进蛋白质合成的同时减少氮排泄,未对肾脏造成额外代谢负担。然而,本研究未直接检测消化率或氮沉积等消化代谢指标,上述推测有待后续研究进一步验证。

3.2 兔血蛋白肽对犬和猫粪便性状的影响

兔血蛋白肽的添加对犬和猫的粪便评分产生了不同的影响。猫作为典型的肉食动物,肠道相对较短,食物通过速度较快。兔血蛋白肽在此环境下推测能被迅速吸收,其降解产生的短链脂肪酸(如乙酸、丙酸)可能调节菌群,有助于改善粪便成型度[13-14];这一推测有待肠道菌群检测研究进一步证实。相比之下,犬的杂食特性使其拥有更复杂且相对稳定的肠道菌群生态系统[15-16],额外补充兔血蛋白肽未观察到粪便性状的明显变化。

3.3 兔血蛋白肽对犬和猫血液生理功能的影响

本试验中,与对照组相比,试验组猫的血液血红蛋白浓度和红细胞压积分别呈升高趋势和显著升高,猫和犬的血液平均红细胞体积分别呈降低趋势和显著降低,提示机体氧运输能力增强[17-19]。兔血蛋白肽富含铁结合肽,其降解产物可能促进肠道铁吸收;而铁作为血红蛋白的核心组成成分,充足供应推测可加速红细胞成熟并提升携氧效率,这一机制有待铁代谢相关指标检测的进一步证实[20]。本试验中,与对照组相比,试验组猫的血液血小板数目和血小板压积显著升高,犬的血液血小板数目和血小板压积呈上升趋势,表明兔血蛋白肽可能优化犬和猫的血小板系统功能,增强其凝血能力和血管修复潜力[21-22]。

3.4 兔血蛋白肽对犬和猫免疫性能和抗氧化功能的影响

本试验中,与对照组相比,试验组猫和犬的血清IL-6含量均显著降低;试验组猫的血清TNF-α含量显著降低,犬的血清IgM含量显著升高,表明兔血蛋白肽兼具抗炎和体液免疫增强作用。IL-6和TNF-α作为典型促炎细胞因子[23-24],其含量降低源于兔血蛋白肽中抗菌肽片段可抑制促炎因子基因的表达;IgM作为机体初次免疫应答的主要抗体,其含量升高与短肽介导的淋巴细胞增殖分化、抗体合成促进作用相关[25]。此外,与对照组相比,试验组犬的血液中性粒细胞百分比呈降低趋势。中性粒细胞是固有免疫的核心效应细胞,也是急性炎症反应的重要标志,其比例降低可能提示机体炎症应激水平下降[26-27],与血清IgM含量升高共同构成多层次免疫防御网络。此外,与对照组相比,试验组犬和猫的血清T-SOD活性显著升高,提示其抗氧化能力得到了增强[28-29]。以上结果表明,兔血蛋白肽在本研究条件下对犬和猫具有积极的免疫调节和抗氧化作用。

3.5 兔血蛋白肽对猫被毛与皮肤健康的影响

本试验中,试验组猫的被毛光泽度和被毛柔顺度显著高于对照组,被毛细度显著低于对照组;SEM进一步证实了试验组被毛鳞片结构优于对照组。这种改善可能与兔血蛋白肽中丰富的含硫氨基酸(如半胱氨酸、蛋氨酸)有关,它们可作为角蛋白合成的直接原料,推测促进毛发纤维的成熟[30];同时,肽段中含有的组氨酸、酪氨酸等抗氧化成分,推测能帮助清除毛囊周围自由基,维护毛鳞片结构的完整性[31];而被毛细度的下降则可能与肽中类表皮生长因子促进毛囊微小化、减少皮质层厚度有关[32]。较细的毛发排列更紧密,进一步提升被毛光泽和柔顺感。本研究SEM观察样本量有限(n=1),后续研究将扩大SEM样本量(建议n≥3)以增强形态学证据的可靠性。这些机制有待后续细胞分子试验验证。
本试验中,试验组猫的皮肤水分和油分含量显著高于对照组,皮肤pH有高于对照组的趋势。小分子肽可渗透至皮肤真皮层,可能会调节成纤维细胞活性[33],进而增加皮肤水分含量。同时,肽类物质可刺激皮脂腺细胞适量分泌皮脂,避免皮肤过度干燥或油腻[34-35]。皮肤pH的轻微提升与皮脂分泌增加相关,适宜的中性pH环境可抑制有害菌繁殖,减少皮肤炎症发生,而其他皮肤理化指标无显著差异,可能与试验周期较短或指标本身稳定性较强相关,后续可通过延长干预时间进一步观察。

4 结论

饲粮补饲兔血蛋白肽可改善猫的血液携氧能力、免疫性能、抗氧化功能和毛皮健康,提高犬的免疫和抗氧化功能,说明兔血蛋白肽对犬和猫均具有积极的健康调控作用。

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